Спектрофотометрическое определение поступления натрий-медного хлорофиллина в лимфоциты

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Оценена возможность попадания натрий-медного хлорофиллина внутрь лимфоцитов. Для этого фотометрическим методом определено содержание хлорофиллина в лизате лимфоцитов, предварительно инкубированных в среде, содержащей 300 мкМ медного хлорофиллина. Обнаружено большое содержание хлорофиллина, что позволяет говорить о том, что он может поступать внутрь клеток. Остается открытым вопрос о том, может ли хлорофиллин проникать через ядерную мембрану. На основе анализа собственной и представленной в литературе информации сделан вывод, что через нее хлорофиллин проходит значительно хуже, чем через плазмалемму.

Об авторах

Л. А Ромодин

Государственный научный центр Российской Федерации - Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна ФМБА России;Российский биотехнологический университет (РОСБИОТЕХ)

Email: rla2904@mail.ru
Москва, Россия

Список литературы

  1. T. M. Ong, W. Z. Whong, J. Stewart, and H. E. Brockman, Mutation Res., 173 (2), 111 (1986). doi: 10.1016/0165-7992(86)90086-2
  2. M. Ozcan, D.Aydemir, M. Bacanli, et al., Biol. Trace Element Res., 199 (12), 4475 (2021). doi: 10.1007/s12011-021-02585-6
  3. J. P. Kamat, K. K. Boloor, and T. P. Devasagayam, Biochim. Biophys. Acta, 1487 (2-3), 113 (2000). doi: 10.1016/s1388-1981(00)00088-3
  4. А. В. Поздеев и В. П. Гугало, Вестн. Курской гос. с.-х. академии, № 2, 107 (2012).
  5. А. В. Поздеев и Н. П. Лысенко, Изв. Междунар. академии аграрного образования, 42 (2), 60 (2018).
  6. А. В. Поздеев, В. К. Промоненков и Н. П. Лысенко, Ветеринар. медицина, № 1, 42 (2010).
  7. P. Morales-Ramirez and M. T. Mendiola-Cruz, Mutation Res., 344 (1-2), 73 (1995). doi: 10.1016/0165-1218(95)90041-1
  8. P. Morales-Ramirez and M. C. Garcia-Rodriguez, Mutation Res., 320 (4), 329 (1994). doi: 10.1016/0165-1218(94)90085-x
  9. S. S. Kumar, B. Shankar, and K. B. Sainis, Biochim. Biophys. Acta 1672 (2), 100 (2004). doi: 10.1016/j.bbagen.2004.03.002
  10. S. Zimmering, O. Olvera, M. E. Hernandez, et al., Mutation Res., 245 (1), 47 (1990). doi: 10.1016/0165-7992(90)90024-e
  11. S. K. Abraham, L. Sarma, and P. C. Kesavan, Mutation Res., 322 (3), 209 (1994). doi: 10.1016/0165-1218(94)90008-6
  12. Л. А. Ромодин и М. А. Игнатов, Радиац. биология. Радиоэкология 63, (2023). DOI
  13. A. N.Osipov, N. M.Smetanina, M. V.Pustovalova, et al., Free Radic. Biol. Med., 73, 34 (2014). doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2014.04.027
  14. I. B. Korzeneva, S. V. Kostuyk, L. S. Ershova, et al., Mutation Res., 779, 1 (2015). doi: 10.1016/j.mrfm-mm.2015.05.004
  15. P. L. Olive, J. P. Banath, and R. E. Durand, Radiation Res., 122 (1), 86 (1990).
  16. K. D. Walsh and T. A. Kato, Methods Mol. Biol. 2519, 65 (2023). doi: 10.1007/978-1-0716-2433-3_7
  17. B. B. Gomes, S. B.Barros, E. R. Andrade-Wartha, et al., J. Sci. Food Agriculture, 89, 2003 (2009). doi: 10.1002/jsfa.3681
  18. L. F. Sciuti, L. H. Z.Cocca, A. R. L. Caires, et al., Chem. Phys. Lett., 706, 652 (2018). doi: 10.1016/j.cplett.2018.07.016
  19. A. G. Favinha, D. S. Barreiro, J. N. Martins, et al., Spectrochim. Acta. Part A - Mol. Biomol. Spectroscopy, 241, 118644 (2020). doi: 10.1016/j.saa. 2020.118644
  20. К. Р. Григорян и А. А. Шиладжян, Биоорганич. химия, 43 (3), 257 (2017). DOI: 10.7868/ S0132342317020038
  21. Г. Б. Постникова и Е. А. Шеховцова, Биохимия, 83 (2), 269 (2018). doi: 10.1134/S0006297918020098
  22. Y. Yao, B. Zhang, H. Pang, et al., Food Chem., 398, 133875 (2023). doi: 10.1016/j.foodchem.2022.133875
  23. A. M. A. al. Alamein, H. M. Elwy, and S. H. S. El-Din, Spectrochim. Acta. Part A - Mol. Biomol. Spectroscopy, 206, 37 (2019). doi: 10.1016/j.saa.2018.07.073
  24. М. Б. Березин и О. И. Койфман, Рос. химич. журн., 61 (4), 42 (2017).
  25. M. Shayeghi, G. O. Latunde-Dada, J. S. Oakhill, et al., Cell, 122 (5), 789 (2005). doi: 10.1016/j.cell. 2005.06.025
  26. A. Qiu, M. Jansen, A. Sakaris, et al., Cell, 127 (5), 917 (2006). doi: 10.1016/j.cell.2006.09.041
  27. N. C. Andrews, Cell Metabolism, 5 (1), (2007). doi: 10.1016/j.cmet.2006.12.004
  28. M. Sakiyama, H. Matsuo, Y. Toyoda, et al., Human Cell, 34 (4), 1082 (2021). doi: 10.1007/s13577-021-00534-y
  29. F. Sun, Z. Zhao, M. M. Willoughby, et al., Nature, 610 (7933), 768 (2022). doi: 10.1038/s41586-022-05347-z
  30. M. Hayes and M. G. Ferruzzi, Nutrition Res., 81, 19 (2020). doi: 10.1016/j.nutres.2020.06.010
  31. U. Kutay and M. W. Hetzer, Curr. Opin. Cell Biol., 20 (6), 669 (2008). doi: 10.1016/j.ceb.2008.09.010
  32. V. Archambault, J. Li, V. Emond-Fraser, and M. Larouche, Front. Cell Devel. Biol., 10, 1012768 (2022). doi: 10.3389/fcell.2022.1012768
  33. S. Y. van der Zanden, M. L. M. Jongsma, A. C. M. Neefjes, et al., Trends Cell Biol., 33, 18 (2022). doi: 10.1016/j.tcb.2022.06.002
  34. J. Bergonie and L. Tribondeau, Comptes Rendus Hebdomadaires des Seances de l'Academie des Science. 143, 983 (1906).

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2023