Клиническая и биологическая эффективность использования микрожидкостных чипов для селекции сперматозоидов при лечении бесплодия методами вспомогательных репродуктивных технологий

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность: В современной лаборатории вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) для обработки эякулята перед оплодотворением и выделения фракции морфологически нормальных подвижных сперматозоидов широко используются только два метода: центрифугирование в градиенте плотностей и метод «всплытия» (swim-up). Оба этих способа требуют центрифугирования образца спермы при высоких скоростях вращения (300g), что может оказывать негативное влияние на целостность ДНК мужских половых клеток, а также способствовать формированию в образце активных форм кислорода, которые могут снижать оплодотворяющую способность сперматозоидов, вызывая фрагментацию ДНК. В качестве перспективного метода селекции мужских половых клеток в программах лечения бесплодия микрофлюидные системы привлекают внимание исследователей из-за своей способности отбирать сперматозоиды с повышенным репродуктивным потенциалом.

Цель: Оценка клинической эффективности использования микрожидкостных чипов для селекции сперматозоидов в программах лечения бесплодия методами ВРТ, а также анализ морфофункциональных характеристик мужских гамет, отобранных с помощью микрофлюидики.

Материалы и методы: В настоящее исследование были включены 94 супружеские пары, проходящие лечение бесплодия методами ВРТ, которые были разделены на две когорты: основная группа (n=47), где оплодотворение осуществляли сперматозоидами, выделенными на микрофлюидных чипах; группа сравнения (n=47), где проводили стандартную пробоподготовку эякулята в градиенте плотностей. Проводили оценку клинических и эмбриологических показателей. На втором этапе эякулят мужчин основной группы был разделен на три части: натив, группа основная (микрожидкостные чипы Fertile Plus, Турция), группа сравнения (градиент, 300g, протокол производителя, «ПанЭКО», Россия). Оценивали концентрацию (С), подвижность (PR%), морфологию (N, %) и зрелость хроматина сперматозоидов (%). Анализ сперматозоидов на ядерный белок (зрелость/конденсацию хроматина) выполняли посредством окрашивания анилиновым синим (Sperm Processor, Индия). Статистическую обработку данных проводили с помощью пакета программ SPSS Statistics (США), для выявления различий между группами применяли U-тест Манна–Уитни. Уровень p<0,05 считали пороговым.

Результаты: Оценка результатов программ ВРТ при использовании микрофлюидных технологий показала статистически значимое увеличение числа бластоцист отличного и хорошего качества на 5–6-е сутки культивирования. По частоте оплодотворения, частоте наступления клинической беременности и ранним репродуктивным потерям до 12 недель гестации группы между собой не различались. Результаты оценки биологических параметров мужских гамет на втором этапе исследования показали, что по концентрации и подвижности группы между собой не различались. Отличия по выделению морфологически нормальных сперматозоидов оказались статистически значимыми (p<0,05): натив – 2 (2; 3); основная группа (микрожидкостные чипы) – 3 (3; 4) и группа градиента (группа сравнения) – 3 (3; 3). Также значимо отличалось качество хроматина выделенных сперматозоидов: доля незрелых сперматозоидов в нативном эякуляте составляла 14% (8; 20), в группе чипов – 3% (5,5; 12) и в группе градиента – 8% (5; 10) при норме не более 15%.

Заключение: Полученные в настоящем исследовании результаты указывают на увеличение не только морфологически нормальных сперматозоидов, отобранных на микрожидкостных чипах, но и на повышение доли мужских половых клеток с нормально упакованным хроматином, что крайне важно для пролонгирования беременности, полученной в результате лечения методами ВРТ. Также возможно ожидать улучшения эмбриологических показателей при селекции сперматозоидов без центрифугирования, только с использованием устройств с микрофлюидикой (в том числе пассивной). Для оценки клинической результативности требуется дальнейший набор данных.

Вклад авторов: Макарова Н.П. – систематизация и анализ литературы, разработка концепции статьи, обработка данных, написание текста рукописи; Сысоева А.П. – проведение эмбриологического этапа программ лечения бесплодия методами ВРТ, оценка показателей оплодотворения и бластуляции, редактирование рукописи статьи; Чернышев В.С. – участие в разработке дизайна эксперимента, критические замечания к рукописи статьи; Гаврилов М.Ю. – сбор литературы, обработка эякулята на микрожидкостных чипах, анализ показателей сперматогенеза, редактирование рукописи; Лобанова Н.Н. – оценка зрелости хроматина, выполнение пробоподготовки эякулята к ДНК-фрагментации, редактирование рукописи статьи; Кулакова Е.В. – критический обзор рукописи статьи, внесение исправлений и замечаний; Калинина Е.А. – критические замечания к рукописи статьи, утверждение публикации.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Наталья Петровна Макарова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: np_makarova@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0003-1396-7272

доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Анастасия Павловна Сысоева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: a_sysoeva@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-6502-4498

кандидат биологических наук, эмбриолог отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Василий Сергеевич Чернышев

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: v_chernyshev@oparina4.ru

кандидат технических наук, заведующий лабораторией биофотоники

Россия, Москва

Наталия Николаевна Лобанова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: n_lobanova@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-0818-4073

эмбриолог отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Елена Владимировна Кулакова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: e_kulakova@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-4433-4163

доктор медицинских наук, старший научный сотрудник отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Елена Анатольевна Калинина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: e_kalinina@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-8922-2878

доктор медицинских наук, профессор, заведующая отделением вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Список литературы

  1. Назаренко Р.В., Здановский В.М. Методы селекции сперматозоидов для процедуры интрацитоплазматической инъекции сперматозоида в программах экстракорпорального оплодотворения (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2019; 25(2): 83-9. [Nazarenko R.V., Zdanovskiĭ V.M. Sperm selection methods in IVF programs (literature review). Russian Journal of Human Reproduction. 2019; 25(2): 83-9. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.17116/repro20192502183.
  2. Aydin S., Eflatun Deniz M. Utilization of a fertile chip in cases of male infertility. IVF Technologies and infertility - current practices and new perspectives. IntechOpen; 2023. https://dx.doi.org/10.5772/intechopen.107108.
  3. Huang C.H., Chen C.H., Huang T.K., Lu F., Jen Huang J.Y., Li B.R. Design of a gradient-rheotaxis microfluidic chip for sorting of high-quality Sperm with progressive motility. iScience. 2023; 26(8): 107356. https://dx.doi.org/10.1016/ j.isci.2023.107356.
  4. Sheibak N., Amjadi F., Shamloo A., Zarei F., Zandieh Z. Microfluidic sperm sorting selects a subpopulation of high-quality sperm with a higher potential for fertilization. Hum. Reprod. 2024; 39(5): 902-11. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deae045.
  5. Беляева Л.А., Шурыгина О.В., Тугушев М.Т., Миронов С.Ю. Опыт применения микрожидкостных чипов для сортировки спермы у пациентов с лечением бесплодия. Ульяновский медико-биологический журнал. 2024; 1: 82-90. [Belyaeva L.A., Shurygina O.V., Tugushev M.T., Mironov S.Yu. Using microfluidic sperm sorting chips in patients with infertility. Ulyanovsk Medico-Biological Journal. 2024; (1): 82-90. (in Russian)]. https:// dx.doi.org/10.34014/2227-1848-2024-1-82-90.
  6. Ma J., Xie Q., Zhang Y., Xiao Q., Liu X., Qiao C. et al. Advances in microfluidic technology for sperm screening and in vitro fertilization. Anal. Bioanal. Chem. 2024; 416(16): 3717-35. https://dx.doi.org/10.1007/s00216-023-05120-9.
  7. Quinn M.M., Ribeiro S., Juarez-Hernandez F., Simbulan R.K., Jalalian L., Cedars M.I. et al. Microfluidic preparation of spermatozoa for ICSI produces similar embryo quality to density-gradient centrifugation: a pragmatic, randomized controlled trial. Hum. Reprod. 2022; 37(7): 1406-13. https:// dx.doi.org/10.1093/humrep/deac099.
  8. Godiwala P., Kwieraga J., Almanza E., Neuber E., Grow D., Benadiva C. et al. The impact of microfluidics sperm processing on blastocyst euploidy rates compared with density gradient centrifugation: a sibling oocyte double-blinded prospective randomized clinical trial. Fertil. Steril. 2024; 122(1): 85-94. https:// dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2024.02.021.
  9. Banti M., Van Zyl E., Kafetzis D. Sperm preparation with microfluidic sperm sorting chip may improve intracytoplasmic sperm injection outcomes compared to density gradient centrifugation. Reprod. Sci. 2024; 31(6): 1695-704. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-024-01483-1.
  10. Jahangiri A.R., Ziarati N., Dadkhah E., Bucak M.N., Rahimizadeh P., Shahverdi A. et al. Microfluidics: The future of sperm selection in assisted reproduction. Andrology. 2024; 12(6): 1236-52. https://dx.doi.org/10.1111/andr.13578.
  11. Zeaei S., Zabetian Targhi M., Halvaei I., Nosrati R. High-DNA integrity sperm selection using rheotaxis and boundary following behavior in a microfluidic chip. Lab. Chip. 2023; 23(9): 2241-8. https://dx.doi.org/10.1039/ d2lc01190e.
  12. Гамидова П.С., Смольникова В.Ю., Макарова Н.П., Лобанова Н.Н. Методы улучшения исходов программ вспомогательных репродуктивных технологий путем инновационных подходов к селекции мужских половых клеток. Акушерство и гинекология. 2022; 7: 34-42. [Gamidova P.S., Smolnikova V.Yu., Makarova N.P., Lobanova N.N. Methods for improving the outcomes of assisted reproductive technology programs through innovative approaches to selecting male germ cells. Obstetrics and Gynecology. 2022; (7): 34-42. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.7.34-42.
  13. Shukla S.K., Gaudriault P., Corbera A. Lab-on-chip (LoC) application for quality sperm selection: An undelivered promise? Open Res. Eur. 2023; 3:188. https://dx.doi.org/10.12688/openreseurope.16671.1.
  14. Meseguer F., Giménez Rodríguez C., Rivera Egea R., Carrión Sisternas L., Remohí J.A., Meseguer M. Can microfluidics improve sperm quality? A prospective functional study. Biomedicines. 2024; 12(5): 1131. https:// dx.doi.org/10.3390/biomedicines12051131.
  15. Ma J., Xie Q., Zhang Y., Xiao Q., Liu X., Qiao C. et al. Advances in microfluidic technology for sperm screening and in vitro fertilization. Anal. Bioanal. Chem. 2024; 416(16): 3717-35. https://dx.doi.org/10.1007/s00216-023-05120-9.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО «Бионика Медиа», 2024