Obstetrics and GynecologyObstetrics and GynecologyАкушерство и гинекология0300-90922412-5679Bionika Media247680ArticlesСтатьиResearch ArticleEFFICIENCY OF HUMAN PAPILLOMAVIRUS DETECTION WITH A VAGINAL DISCHARGE SELF-COLLECTION DEVICEЭФФЕКТИВНОСТЬ ВЫЯВЛЕНИЯ ВИРУСА ПАПИЛЛОМЫ ЧЕЛОВЕКА ПРИ ПОМОЩИ УСТРОЙСТВА ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОГО ЗАБОРА ВАГИНАЛЬНОГО ОТДЕЛЯЕМОГОArtymukNatalia VladimirovnaАртымукНаталья Владимировна

MD, PhD, Professor, the head of the Obstetrics and Gynecology Department Two

д.м.н., профессор, зав. кафедрой акушерства и гінекологи № 2

artymuk@gmail.ruMarochkoKristina VladimirovnaМарочкоКристина Владимировна

postgraduate student, Obstetrics and Gynecology Department Two

аспирант кафедры акушерства и гинекологии № 2

vi-nis-ka@mail.ruKemerovo State Medical Academy, Ministry of Health of RussianГБОУ ВПО Кемеровская государственная медицинская академия Минздрава России150320163NO3 (2016)№3 (2016)859118022023Copyright ©; 2016, Bionika MediaCopyright ©; 2016, ООО «Бионика Медиа»2016Bionika MediaООО «Бионика Медиа»https://journals.eco-vector.com/0300-9092/article/view/247680

Objective. To reveal the rate of human papillomavirus (HPV) infection among women who are in prison and to determine the prognostic value of high-risk (HR) HPV diagnosis using an Ovintip device. Subjects and methods. A total of 150 women aged 25-59years (mean age, 37.3+8.0years) who were in prison were examined. Vaginal discharge was collected using an Ovintip device and vaginal smear from the cervical canal was taken by a physician for a further HR HPV PCR test. Results. Among the 150examinees, there were HR HPV-infectedpatients (36.7%). HPV-posittve women (61.8%) were infected with several types of HR HPV. HPV16 concurrent with HPV31, 33, 39, 52, and 58 was detected in more than one third of the examinees. HPV16 prevailed in monoinfection. When the material was taken by a woman using an Ovintip device, the sensitivity and specificity of HR HPV diagnosis were 78.3 and 91.3%, respectively. Conclusion. The findings suggest that women who are in prison show a high rate of HR HPV infection. The vaginal discharge self-collection device is of high prognostic value and may be recommended for HpV detection.

Цель исследования. Выявить частоту инфицированности вирусом папилломы человека (ВПЧ) среди женщин, находящихся в местах лишения свободы, и определить прогностическую ценность диагностики ВПЧ высокого канцерогенного риска (ВПЧ-ВР) с помощью прибора Qyintip. Материал и методы. Обследованы 150 женщин в возрасте 25-59 лет (средний возраст составил 37,3±8,0 года), находящихся в местах лишения свободы. Проведен забор вагинального отделяемого с помощью прибора Qyintip и взятие мазка из цервикального канала врачом для дальнейшего исследования на ВПЧ-ВР методом полимеразной цепной реакции (ПЦР). Результат. Из 150 обследованных 36,7% инфицированы ВПЧ-ВР. 61,8% ВПЧ-позитивных женщин инфицированы несколькими типами ВПЧ-ВР. Более чем у 1/3 обследованных обнаружено сочетание 16-го типа ВПЧ с 31, 33, 39, 52, 58-м типами. При моноинфекции превалирует 16-й тип ВПЧ. Чувствительность диагностики ВПЧ-ВР при взятии материала самостоятельно женщиной с помощью прибора Qyintip составила 78,3%, специфичность - 91,3%. Заключение. Полученные данные свидетельствуют о высокой частоте инфицированности ВПЧ-ВР женщин, находящихся в местах лишения свободы. Устройство для самостоятельного забора вагинального отделяемого обладает высокой прогностической ценностью и может быть рекомендовано для выявления ВПЧ.

Qyintiphigh-risk human papillomavirusgenotypeOvintipcervix uteriвирус папилломы человека высокого канцерогенного рискагенотипшейка маткиBosch F.X., Broker T.R., Forman D., Moscicki A.В., Gillison M.L., DoorbarJ. et al. Comprehensive control of human papillomavirus infections and related diseases. Vaccine. 2013; 31(Suppl. 7): Hl-31.Роговская С.И. Практическая колыюскопия. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2011. 232с.Wheeler C.M., Hunt W.C., Schiffman M., Castle P.E. Human papillomavirus genotypes and the cumulative 2-years risk of cervical precancer. J. Infect. Dis. 2006; 194(9): 1291-9.Holl K, Nowakowski A.M., Powell N.r McQuggage W.G., Pirog E.C., Collas De Souza S. et al. Human papillomavirus prevalence and type-distribution in cervical glandular neoplasias: Results from a European multinational epidemiological study. Int. J. Cancer. 2015; 137(12): 2858-68.Бадалова Л.А., Роговская С.И., Гончаревская З.Л., Коган Е.А., Бебенева Т.И., Шамаракова В.М., Акопова Е. С., Сабдулаева Э.Х. Клинико- экономическая эффективность методов диагностики при CIN. Мать и дитя в Кузбассе. 2011; Спецвыпуск 1:162-5.Wright T.C., Stoler M.H., Behrens C.M., Sharma A., Zhang G., Wright T.L. Primary cervical cancer screening with human papillomavirus: end of study results from the ATHENA study using HPV as the first-line screening test. Gynecol. Oncol. 2015; 136(2): 189-97.Zhao F.H., Lewkowitz A.K., Chen F, Lin M.J., Hu S.Y., Zhang X. et al. Pooled analysis of a self-sampling HPV DNA test as a cervical cancer primary screening method. J. Natl. Cancer Inst. 2012; 104(3): 178-88.Szarewski A., Cadman L., Mallett S., Austin J., Londesborough P, Waller J. et al. Human papillomavirus testing by self-sampling: assessment of accuracy in an unsupervised clinical setting. J. Med. Screen. 2007; 14(1): 34-42.Bhatla K, Dar L., Patro A.R., Kumar P, Kriplani A., Gulati A. et al. Can human papillomavirus DNA testing of self-collected vaginal samples compare with physician-collected cervical samples and cytology for cervical cancer screening in developing countries? Cancer Epidemiol. 2009; 33(6): 446-50.Balasubramanian A., Kulasingam S.L., Baer A., Hughes J.P., Myers E.R., Mao C. et al. Accuracy and cost-effectiveness of cervical cancer screening by high-risk human papillomavirus DNA testing of self-collected vaginal samples. J. Lower Genit. Tract Dis. 2010; 14(3): 185-95.Boggan J.C., Walmer D.K, Henderson G., Chakhtoura N., McCarthy S.H., Beauvais H.J., Smith J.S. Vaginal self-sampling for human papillomavirus infection as a primary cervical cancer screening tool in a naitian population. Sex. Transm. Dis. 2015; 42(11): 655-9.Wright T. C. Jr., Denny L., Kuhn L., Pollack A., Lorincz A. HPV DNA testing of self-collected vaginal samples compared with cytologic screening to detect cervical cancer. JAMA. 2000; 283(1): 81-6.Darlin L., Borgfeldt C., Forslund О., Нёпіс E., HortlundM., DillnerJ., Kannisto P. Comparison of use of vaginal HPV self-sampling and offering flexible appointments as strategies to reach long-term non-attending women in organized cervical screening. J. Clin. Virol. 2013; 58(1): 155-60.Chou H.H., Huang H.J., Cheng H.H., Chang C.J., Yang L.Y., Huang C.C. et al. Self-sampling HPV test in women not undergoing Pap smear for more than 5 years and factors associated with under-screening in Taiwan. J. Formos. Med. Assoc. 2015; Dec. 23. pii: S0929-6646( 15)00353-8. doi: 10.1016/j. jfma.2015.10.014.Марочко K.B., Артымук H.B., Фетисова ТИ. Проблемы диагностики рака шейки матки в Кемеровской области. Мать и дитя в Кузбассе. 2015; 4: 31-5.Andrae B., Kemetli L., Sparen P, Silfverdal L., Strander B., Ryd W. et al. Screening-preventable cervical cancer risks: evidence from a nationwide audit in Sweden. J. Natl. Cancer Inst. 2008; 100(9): 622-9.Sanner K. Significance of Human Papillomavirus (HPV) analysis for the detection of precancerous cervical lesions. Impact of self sampling. Acta Universitatis Upsaliensis. Digital Comprehensive Summaries of Uppsala Dissertations from the Faculty of Medicine 877. Uppsala, Sweden; 2013. 64p.Ondrydsovd H., Koudeldkova V, Drabek J., Vanek P, Slavkovsky R., Hajduch M. Utilization of self-sampling kits for HPV testing in cervical cancer screening - pilot study. Ceska Gynekol. 2016; 80(6): 436-43.Белокриницкая T.E., Фролова И.И., Тарбаева Д.А., Глотова Е.Ю., Золотарёва А.А., Мальцева ТВ. Ассоциации генитальных инфекций и вируса папилломы человека как конфаундинг-факторы цервикальной интраэпителиальной неоплазии. Доктор.Ру. 2015; Спецвыпуск 2: 14-7.Видяева И.Г., Уразова Л.Н., Писарева Л.Ф., Никитина Е.Г., Ховалыг С.К. Количественное определение онкогенных типов ВПЧ в популяциях женщин региона Сибири. Сибирский онкологический журнал. 2009; Приложение 2: 40-1.Rogov skaya S.I., Shabalova I.P., Mikheeva I.V., Minkina G.N., Podzolkova N.M., Shipulina O.Y. et al. Human papillomavirus prevalence and type-distribution, cervical cancer screening practices and current status of vaccination implementation in Russian Federation, the Western countries of the former Soviet Union, Caucasus region and Central Asia. Vaccine. 2013; 31(Suppl. 7): H46-58.Shipitsyna E., Zolotoverkhaya E., Kuevda D., Nasonova V., Romanyuk T, Khachaturyan A. et al. Prevalence of high-risk human papillomavirus types and cervical squamous intraepithelial lesions in women over 30 years of age in St. Petersburg, Russia. Cancer Epidemiol. 2011; 35(2): 160-4.CastellsagueX., DiazM., de Sanjose S., MunozN., HerreroR., Franceschi S. et al. Worldwide human papillomavirus etiology of cervical adenocarcinoma and its cofactors: implications for screening and prevention. J. Natl. Cancer Inst. 2006; 98(5): 303-15.Машкина E.B., Коваленко K.A., Сараев K.H., Лысенко О.В., Шкурат Т.П. Генодиагностика папилломавирусной инфекции у жителей Ростовской области. Валеология. 2009; 3: 21-8.