Факторы риска развития дисморфизмов ооцитов в программах вспомогательных репродуктивных технологий


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Качество ооцитов играет существенную роль в получении полноценных эмбрионов, а, следовательно, в эффективности лечения бесплодия с помощью вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Цель исследования. Оценка клинико-анамнестических и ятрогенных факторов риска развития различных дисморфизмов ооцитов у пациенток программ ВРТ. Материал и методы. В проспективное исследование случай-контроль были включены 343 женщины, проходящих лечение в программах ВРТ. В зависимости от наличия или отсутствия дисморфизмов ооцитов пациентки были разделены на 3 группы: группа 1 - женщины с цитоплазматическими дисморфизмами ооцитов, группа 2 - женщины с экстрацитоплазматическими дисморфизмами ооцитов, группа 3 (контроль) - пациентки с морфологически нормальными ооцитами. Оценка клинико-анамнестических, лабораторных характеристик, а также особенностей выбранного протокола стимуляции осуществлялась с помощью логистической регрессии с построением ROC-кривых. Результаты. На развитие цитоплазматических дисморфизмов ооцитов в однофакторном анализе значимое влияние оказывали возраст пациентки, индекс массы тела (ИМТ), уровень антимюллерова гормона (АМГ) и свободного тироксина (Т4), в многофакторном анализе - возраст женщин и уровень Т4. На развитие экстрацитоплазматических дисморфизмов ооцитов в однофакторном анализе значимое влияние оказывали возраст пациенток, уровень АМГ и применение агонистов гонадотропинрилизинг гормона (α-ГнРГ) в качестве триггера овуляции или в протоколах стимуляции, в многофакторном анализе - уровень АМГ и применение α-ГнРГ. Заключение. Качество ооцитов определяется различными факторами, большинство из которых (возраст пациентки, овариальный резерв, наличие генетических нарушений) являются не модифицируемыми. Пациенткам с риском получения морфологически аномальных ооцитов требуется комплексный подход в коррекции метаболических нарушений и соматических заболеваний, а также дифференцированный подход в выборе подходящего протокола стимуляции овуляции.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Анастасия Григорьевна Горшкова

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: a_gorshkova@oparina4.ru
аспирант отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия 117815, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Наталия Витальевна Долгушина

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: n_dolgushina@oparina4.ru
д.м.н., руководитель службы научно-организационного обеспечения 117815, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Наталья Петровна Макарова

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: np_makarova@oparina4.ru
к.б.н., научный сотрудник отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия 117815, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Евгения Владимировна Ковальская

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: e_kovalskaya@oparina4.ru
эмбриолог отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия 117815, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Елена Анатольевна Калинина

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: e_kalinina@oparina4.ru
д.м.н., зав. отделением вспомогательных технологий в лечении бесплодия 117815, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Список литературы

  1. Rienzi L., Ubaldi F.M., Iacobelli M., Minasi M.G., Romano S., Ferrero S. et al. Significance of metaphase II human oocyte morphology on ICSI outcome. Fertil. Steril. 2008; 90(5): 1692-700.
  2. Ubaldi F., Rienzi L. Morphological selection of gametes. Placenta. 2008; 10: 115-20.
  3. Ten J., Mendiola J., de Juan J., Bernabeu R. Donor oocyte dysmorphisms and their influence on fertilization and embryo quality. Reprod. Biomed. Online. 2007; 14: 40-8.
  4. Wilding M., Di Matteo L., D’Andretti S., Montanaro N., Capobianco C., Dale B. An oocyte score for use in assisted reproduction. J. Assist. Reprod. Genet. 2007; 24(8): 350-8.
  5. Balakier H., Sojeck A., Gelareh M., Siamak B. Is the zona pellucida thickness of human embryos influenced by women’s age and hormonal levels ? Fertil. Steril. 2012; 98(1): 77-83.
  6. Setti A.S., Braga D.P., Figueira Rde C., Vingris L., Iaconelli A., Borges E. Jr. Body mass index is negatively correlated with the response to controlled ovarian stimulation but does not influence oocyte morphology in ICSI cycles. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2012; 163(2): 175-9.
  7. Ebner T., Sommergruber M., Moser M., Shebl O., Tews G. Basal level of anti-Müllerian hormone is associated with oocyte quality in stimulated cycles. Hum. Reprod. 2006; 21(8): 2022-6.
  8. Cota A.M., Oliveira J.B., Petersen C.G., Mauri A.L., Massaro F.C., Silva L.F. et al. GnRH agonist versus GnRH antagonist in assisted reproduction cycles : oocyte morphology. Reprod. Biol. Endocrinol. 2012; 10: 33.
  9. Fancsovits P., Tóthné Z.G., Murber Á., Rigó J., Urbancsek J. Importance of cytoplasmic granularity of human oocytes in in vitro fertilization treatments. Acta Biol. Hung. 2012; 63(2): 189-201.
  10. Yoldemir T. Does the duration of gonadotropin stimulation affect embryo quality on post-retrieval day 3? Gynecol. Endocrinol. 2011; 27(5): 324-30.
  11. Приказ Минздрава России №107н от 30 августа 2012 г. «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и показаниях к их применению».
  12. Kuliev A., Cieslak J., Ilkevitch Y., Verlinsky Y. Chromosomal abnormalities in a series of 6733 human oocytes in preimplantation diagnosis for age-related aneuploidies. Reprod. Biomed. Online. 2003; 6(1): 54-9.
  13. Schmutzler A.G., Acar-Perk B., Weimer J., Salmassi A., Sievers K., Tobler M. et al. Oocyte morphology on day 0 correlates with aneuploidy as detected by polar body biopsy and FISH. Arch. Gynecol. Obstet. 2014; 289(2): 445-50.
  14. Robker R.L., Wu L.L., Yang X. Inflammatory pathways linking obesity and ovarian dysfunction. J. Reprod. Immunol. 2011; 88(2): 142-8.
  15. Yilmaz N., Kilic S., Kanat-Pektas M., Gulerman C., Mottamahmutoglu L. The relationship between obesity and fecundity. J.Women’s Health. (Larchmt). 2009; 18(5): 633-6.
  16. Acevedo B., Gomez-Palomares J.L., Ricciarelli E., Hernández E.R. Triggering ovulation with gonadotropin-releasing hormone agonists does not compromise embryo implantation rates. Fertil. Steril. 2006; 86(6): 1682-7.
  17. Engmann L., DiLuigi A., Schmidt D., Nulsen J., Maier D., Benadiva C. The use of gonadotropin-releasing hormone (GnRH) agonist to induce oocyte matura tion after cotreatment with GnRH antagonist in high-risk patients undergoing in vitro fertilization prevents the risk of ovarian hyperstimulation syndrome: a prospective randomized controlled study. Fertil. Steril. 2008; 89(1): 84-91.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах