Характеристика динамических изменений протеомного состава цервиковагинальной жидкости при заболеваниях шейки матки, ассоциированных с вирусом папилломы человека
- Авторы: Стародубцева Н.Л.1, Бржозовский А.Г.1,2, Бугрова А.Е.1,3, Кононихин А.С.1,2, Гусаков К.И.1, Назарова Н.М.1, Франкевич В.Е.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России
- Сколковский институт науки и технологий
- Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН
- Выпуск: № 7 (2020)
- Страницы: 111-116
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/0300-9092/article/view/248896
- DOI: https://doi.org/10.18565/aig.2020.7.111-116
- ID: 248896
Цитировать
Полный текст
Доступ предоставлен
Доступ платный или только для подписчиков
Аннотация
Полный текст
Об авторах
Наталия Леонидовна Стародубцева
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: n_starodubtseva@oparina4.ru
к.б.н., заведующая лабораторией протеомики репродукции человека
Александр Геннадьевич Бржозовский
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России; Сколковский институт науки и технологий
Email: agb.imbp@gmail.com
научный сотрудник лаборатории протеомики
Анна Евгеньевна Бугрова
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России; Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН
Email: a_bugrova@oparina4.ru
к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории протеомики репродукции человека
Алексей Сергеевич Кононихин
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России; Сколковский институт науки и технологий
Email: konoleha@yandex.ru
к.ф. -м.н., научный сотрудник лаборатории протеомики репродукции человека
Кирилл Ильич Гусаков
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: kigusakov@gmail.com
аспирант
Нисо Мирзоевна Назарова
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: grab2@yandex.ru
д.м.н., ведущий научный сотрудник
Владимир Евгеньевич Франкевич
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: v_frankevich@oparina4.ru
к.ф-м.н., руководитель отдела системной биологии в репродукции
Список литературы
- Torre L.A., Bray F., Siegel R.L., Ferlay J. Global Cancer Statistics, 2012. CA Cancer J. Clin. 2015; 65: 87-108. https://dx.doi.org/10.3322/caac.21262.
- Wheelee C.M., Hunt W.C., Schiffinan M., Castle P.E., Squamous A. Human papillomavirus genotypes and the cumulative 2-year risk of cervical precancer. J. Infect. Dis. 2006; 194(9): 1291-9. https://dx.doi.org/10.1086/507909.
- Doeberitz M.V.K. New markers for cervical dysplasia to visualise the genomic chaos created by aberrant oncogenic papillomavirus infections. Eur. J. Cancer. 2002; 38(17): 2229-42. https://dx.doi.org/10.1016/s0959-8049(02)00462-8.
- Ullal A.J., Litaker R.W., Noga E.J. Antimicrobial peptides derived from hemoglobin are expressed in epithelium of channel catfish. Dev. Comp. Immunol. 2008; 32(11): 1301-12. https://dx.doi.org/10.1016/j.dci.2008.04.005.
- Van Ostade X., Dom M., Tjalma W., Van Raemdonck G. Candidate biomarkers in the cervical vaginal fluid for the ( self-) diagnosis of cervical precancer. Arch. Gynecol. Obstet. 2018; 297: 295-311. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-017-4587-2.
- Siciliano R.A., Mazzeo M.F., Spada V., Facchiano A., Acierno A., Stocchero M. et al. Rapid peptidomic profiling of peritoneal fluid by MALDI-TOF mass spectrometry for the identification of biomarkers of endometriosis. Gynecol. Endocrinol. 2014; 30(12): 872-6. https://dx.doi.org/10.3109/09513590.2014. 943718.
- Starodubtseva N.L., Brzhozovzkiy A.G., Kononikhin A.S., Bugrova A.E., Nazarova N.M., Gusakov K.I., Indeykina M.I., Chagovets V.V., Frankevich V.E., Nikolaev E.N., Sukhikh G.T. Label-free cervicovaginal fluid proteome profiling reflects the cervix neoplastic transformation. J. Mass Spectrom. 2019; 54(8): 693-703. https://dx.doi.org/10.1002/jms.4374.
- Zegels G., Van Raemdonck G.A.A., Tjalma W.A.A., Van Ostade X.W.M. Use of cervicovaginal fluid for the identification of biomarkers for pathologies of the female genital tract. Proteome Sci. 2010; 8: 63. https://dx.doi.org/10.1186/1477-5956-8-63.
- Novak R.M., Donoval B.A., Graham P.J., Boksa L.A., Spear G., Hershow R.C. et al. Cervicovaginal levels of lactoferrin , secretory leukocyte protease inhibitor and RANTES and the effects of coexisting vaginoses in human immunodeficiency virus ( HIV ) -seronegative women with a high risk of heterosexual acquisition of HIV infection. Clin. Vaccine Immunol. 2007; 14(9): 1102-7. https://dx.doi. org/10.1128/CVI.00386-06.
- Shaw J.L.V, Smith C.R., Diamandis E.P. Proteomic analysis of human cervicovaginal fluid. J. Proteome Res. 2007; 6(7): 2859-65.
- Starodubtseva N.L., Kononikhin A.S., Bugrova A.E., Chagovets V., Indeykina M., Krokhina K.N., Nikitina I.V., Kostyukevich Y.I., Popov I.A., Larina I.M., Timofeeva L.A., Frankevich V.E., Ionov O.V., Nikolaev E.N., Sukhikh G.T. Investigation ofurine proteome of preterm newborns with respiratory pathologies. J. Proteomics. 2016; 149: 31-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.jprot.2016.06.012.
- Tyanova S., Temu T., Cox J. The MaxQuant computational platform for mass spectrometry-based shotgun proteomics. Nat. Protoc. 2016; 11(12): 2301-19. https://dx.doi.org/10.1038/nprot.2016.136.
- von Mering C., Huynen M., Jaeggi D., Schmidt S., Bork P., Snel B. STRING: a database of predicted functional associations between proteins. Nucleic Acids Res. 2003; 31: 258-61. https://dx.doi.org/10.1093/nar/gkg034.
- Fabian T.K., Hermann P., Beck A., Fejerdy P., Fabian G. Salivary defense proteins: Their network and role in innate and acquired oral immunity. Int. J. Mol. Sci. 2012; 13(4): 4295-320. https://dx.doi.org/10.3390/ijms13044295.
- Blaydon D. C., Nitoiu D., Eckl K.M., Cabral R.M., Bland P., Hausser I. et al. Mutations in CSTA, encoding cystatin A, underlie exfoliative ichthyosis and reveal a role for this protease inhibitor in cell-cell adhesion. Am. J. Hum. Genet. 2011; 89(4): 564-71. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajhg.2011.09.001.
- Bylaite M., Moussali H., Marciukaitiene I., Ruzicka T., Walz M. Expression of cathepsin L and its inhibitor hurpin in inflammatory and neoplastic skin diseases. Exp. Dermatol. 2006; 15(2): 110-8. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0625.2005.00389.x.
- Lehne B., Smith A., Bennett P.R., Mitra A., Lee Y.S., Li J.V. et al. Cervical intraepithelial neoplasia disease progression is associated with increased vaginal microbiome diversity. Sci. Rep. 2015; 5: 1-11. https://dx.doi.org/10.1038/ srep16865.
- Gray P.W., Flaggs G., Leong S.R., Gumina R.J., Weiss J., Ooi C.E., Elsbach P. Cloning of the cDNA of a human neutrophil bactericidal protein. Structural and functional correlations. J. Biol. Chem. 1989; 264(16): 9505-9.
- Mitra A., MacIntyre D.A., Marchesi J.R., Lee Y.S., Bennett P.R., Kyrgiou M. The vaginal microbiota, human papillomavirus infection and cervical intraepithelial neoplasia: What do we know and where are we going next? Microbiome. 2016; 4(1): 58. https://dx.doi.org/10.1186/s40168-016-0203-0.
- Boyd J.M., Schlievert P.M., Rosenthal C.B., Crosby H.A., Salgado-Pabon W., Walker J.N. et al. The Staphylococcus aureus ArlRS Two-Component System Is a Novel Regulator of Agglutination and Pathogenesis. PLoS Pathog. 2013; 9: e1003819. https://dx.doi.org/10.1371/journal.ppat.1003819.
- Pluskota E., D’Souza S.E. Fibrinogen interactions with ICAM-1 (CD54) regulate endothelial cell survival. Eur. J. Biochem. 2000; 267(15): 4693-704. https://dx.doi.org/10.1046/j.1432-1327.2000.01520.x.
- Pampalakis G., Sotiropoulou G., Vlahou A., Agalioti T., Prosnikli E., Zoumpourlis V. A tumor-protective role for human kallikrein-related peptidase 6 in breast cancer mediated by inhibition of epithelial-to-mesenchymal transition. Cancer Res. 2009; 69(9): 3779-87. https://dx.doi.org/10.1158/0008-5472.can-08-1976.