Анализ метаболитов в различных средах культивирования эмбрионов человека
- Авторы: Ярыгина С.А.1, Смольникова В.Ю.1, Калинина Е.А.1, Эльдаров Ч.М.1, Гамисония А.М.1,2, Макарова Н.П.1, Бобров М.Ю.1,2
-
Учреждения:
- ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Росси
- ФГБУН «Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова» РАН
- Выпуск: № 11 (2020)
- Страницы: 114-123
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/0300-9092/article/view/249074
- DOI: https://doi.org/10.18565/aig.2020.11.114-123
- ID: 249074
Цитировать
Полный текст
Доступ предоставлен
Доступ платный или только для подписчиков
Аннотация
Полный текст
Об авторах
Светлана Анатольевна Ярыгина
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Росси
Email: s.a.iarygina@yandex.ru
аспирант отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. Б.В. Леонова
Вероника Юрьевна Смольникова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Росси
Email: veronika.smolnikova@mail.ru
д.м.н., ведущий научный сотрудник отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия имени профессора Б.В. Леонова
Елена Анатольевна Калинина
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Росси
Email: e_kalinina@oparina4.ru
д.м.н., руководитель отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия
Чупалав Максудович Эльдаров
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Россиканд. хим. наук, с.м.с. лаборатории молекулярной патофизиологии
Алина Мухадиновна Гамисония
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Росси; ФГБУН «Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова» РАНнаучный сотрудник лаборатории молекулярной патофизиологии
Наталья Петровна Макарова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Росси
Email: np_makarova@oparina4.ru
д.б.н., ведущий научный сотрудник отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия
Михаил Юрьевич Бобров
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Росси; ФГБУН «Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова» РАН
Email: mbobr@mail.ru
канд. хим. наук, руководитель лаборатории молекулярной патофизиологии
Список литературы
- Malina A., Pooley J.A. Psychological consequences of IVF fertilization. Review of research. Ann. Agric. Environ. Med. 2017; 24(4): 554-8. https://dx.doi. org/10.5604/12321966.1232085.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Multiple gestation associated with infertility therapy. Fertil. Steril. 2012; 97(4): 825-34. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2011.11.048.
- Sullivan E.A., Wang Y.A., Hayward I., Chambers G.M., Illingworth P., McBain J., Norman R.J. Single embryo transfer reduces the risk of perinatal mortality, a population study. Hum. Reprod. 2012; 27(12): 3609-15. https://dx.doi. org/10.1093/humrep/des315.
- Wang Q., Sun Q.Y. Evaluation of oocyte quality: morphological, cellular and molecular predictors. Reprod. Fertil. Dev. 2007; 19: 1-12. https://dx.doi. org/10.1071/rd06103.
- Cimadomo D., Capalbo A., Ubaldi F.M., Scarica C., Palagiano A., Canipari R., Rienzi L. The impact of biopsy on human embryo developmental potential during preimplantation genetic diagnosis. Biomed. Res. Int. 2016; 2016: 7193075. https://dx.doi.org/10.1155/2016/7193075.
- Chen M., Wei S., Hu J., Quan S. Can comprehensive chromosome screening technology improve IVF/ICSI outcomes? A meta-analysis. PLoS One. 2015; 10(10): e0140779. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0140779.
- Houghton F.D., Hawkhead J.A., Humpherson P.G., Hogg J.E., Balen A.H., Rutherford A.J., Leese H.J. Non-invasive amino acid turnover predicts human embryo developmental capacity. Hum. Reprod. 2002; 17(4): 999-1005. https:// dx.doi.org/10.1093/humrep/17.4.999.
- Gardner D.K., Lane M., Stevens J., Schoolcraft W.B. Noninvasive assessment of human embryo nutrient consumption as a measure of developmental potential. Fertil. Steril. 2001; 76(6): 1175-80. https://dx.doi.org/10.1016/s0015-0282(01)02888-6.
- Vergouw C.G., Botros L.L., Judge K., Henson M., Roos P., Kostelijk E.H. et al. Non-invasive viability assessment of day-4 frozen-thawed human embryos using near infrared spectroscopy. Reprod. Biomed. Online. 2011; 23(6): 769-76. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2011.08.015.
- Uyar A., Seli E. Embryo assessment strategies and their validation for clinical use: a critical analysis of methodology. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2012; 24(3): 141-50. https://dx.doi.org/10.1097/GCO.0b013e328352cd17.
- Robertson S.A., Chin P.Y., Femia J.G., Brown H.M. Embryotoxic cytokines - Potential roles in embryo loss and fetal programming. J. Reprod. Immunol. 2018; 125: 80-8. https://dx.doi.org/10.1016/ j.jri.2017.12.003.
- Kawamura K., Chen Y., Shu Y., Cheng Y., Qiao J., Behr B. et al. Promotion of human early embryonic development and blastocyst outgrowth in vitro using autocrine/paracrine - growth factors. PLoS One. 2012; 7(11): e49328. https:// dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0049328.
- Sjoblom C., Wikland M., Robertson S.A. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) acts independently of the beta common subunit of the GM-CSF receptor to prevent inner cell mass apoptosis in human embryos. Biol. Reprod. 2002; 67(6): 1817-23. https://dx.doi.org/10.1095/ biolreprod.101.001503.
- Morbeck D.E., Krisher R.L., Herrick J.R., Baumann N.A., Matern D., Moyer T. Composition of commercial media used for human embryo culture. Fertil. Steril. 2014; 102(3): 759-66. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2014.05.043.
- Sunde A., Balaban B. The assisted reproductive technology laboratory: toward evidence-based practice. Fertil. Steril. 2013; 100(2): 310-18. https://dx.doi. org/10.1016/j.fertnstert.2013.06.032.
- Vergouw C.G., Botros L.L., Roos P., Lens J.W., Schats R., Hompes PG. et al. Metabolomic profiling by near-infrared spectroscopy as a tool to assess embryo viability: a novel, noninvasive method for embryo selection. Hum. Reprod. 2008; 23(7): 1499-504. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/den111.
- Seli E., Sakkas D., Scott R., Kwok S.C., Rosendahl S.M., Burns D.H. Noninvasive metabolomic profiling of embryo culture media using; Raman and near-infrared spectroscopy correlates with reproductive potential of embryos in women undergoing in vitro fertilization. Fertil. Steril. 2007; 88(5): 1350-7. https:// dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.07.1390.
- Scott R., Seli E., Miller K., Sakkas D., Scott K., Burns D.H. Fertil. Steril. 2008; 90(1): 77-83. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.11.058.
- Rinaudo P., Shen S., Hua J., Qian S., Prabhu U., Garcia E. et al. H-1 NMR based profiling of spent culture media cannot predict success of implantation for day 3 human embryos. J. Assist. Reprod. Genet. 2012; 29(12): 1435-42. https://dx.doi. org/10.1007/s10815-012-9877-9.
- Gode F., Akarsu S., Gunnur Dikmen Z., Tamer B., Isik A.Z. The effect follicular fluid vitamin A, E, D and B6 on embryo morphokinetics and pregnancy rates in patients receiving assisted reproduction. Gynecol. Obstet. Reprod. Med. 2019; 25(2): 89-95. https://dx.doi.org/10.21613/GORM.2018.860.
- Picton H.M., Elder K., Houghton F.D., Hawkhead J.A., Rutherford A.J., Hogg J.E. et al. Association between amino acid turnover and chromosome aneuploidy during human preimplantation embryo development in vitro. Mol. Hum. Reprod. 2010; 16(8): 557-69. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gaq040.
- Richter K.S. The importance of growth factors for preimplantation embryo development and in-vitro culture. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2008; 20(3): 292-304. https://dx.doi.org/10.1097/GCO.0b013e3282fe743b.
- Na Y.R., Gu G.J., Jung D., Kim Y.W Na J., Woo J.S. et al. GM-CSF induces inflammatory macrophages by regulating glycolysis and lipid metabolisms J. Immunol. 2016; 197(10): 4101-9. https://dx.doi.org/10.4049/ jimmunol.1600745.
- Kim I.K., Koh C.H., Jeon I., Shin K.S., Kang T.S., Bae E.A. et al. GM-CSF promotes antitumor immunity by inducing Th9 cell responses. Cancer Immunol. Res. 2019; 7(3): 498-509. https://dx.doi.org/10.1158/2326-6066.CIR-18-0518.
- Kennedy T. Interactions of eicosanoids and other factors in blastocyst implantation. In: Hillier K., ed. Eicosanoids and reproduction. Springer; 2012: 73-88. https://dx.doi.org/10.1007/978-94-009-3215-9.
- Yagi A., Miyanaga S., Shrestha R., Takeda S., Kobayashi S., Chiba H. et al. A fatty acid profiling method using liquid chromatography-high resolution mass spectrometry for improvement of assisted reproductive technology. Clin. Chim. Acta. 2016; 456: 100-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.cca.2016.03.001.