Морфологические аномалии ооцитов у ВИЧ-инфицированных пациенток, получающих антиретровирусную терапию


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель: Изучить распространенность дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных женщин, принимающих антиретровирусную терапию (АРТ). Материалы и методы: В ретроспективное исследование включены 210 супружеских пар, обратившихся для проведения программы ЭКО. Основная группа - 113 пациенток с ВИЧ-инфекцией, контрольная - 97 женщин без ВИЧ-инфекции, которым выполнено 163 и 123 стимулированных цикла соответственно. Проведена морфологическая оценка 2321 зрелого ооцита (MII), из них 1228получены в основной группе и 1093 - в группе контроля. Результаты: Медиана возраста у пациенток с ВИЧ-инфекцией составляла 34 (31;37) года; длительность заболевания и продолжительность АРТ - 8 (5;11) и 3,6 (2;6) года соответственно. У 65 из 113 женщин (57,5%; 95% ДИ 47,8- 66,4) была 3-я субклиническая стадия заболевания, у 43 (38,1%; 95% ДИ 29,2- 47,8) - 4А стадия, у 2 (1,8%; 95% ДИ 0-4,4) - 4Б и у 3 (2,7%; 95% ДИ 0-6,2) -4В стадия ВИЧ-инфекции. Медиана уровня CD4+лимфоцитов составила 582 (432;807) мкл в 1 кл, а значение иммунорегуляторного индекса (ИРИ) - 0,87. Все пациентки получали АРТ и имели неопределяемую вирусную нагрузку в крови перед проведением программы ЭКО. Распространенность различных видов дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных женщин была существенно выше, чем у пациенток контрольной группы, и составила 29,5% (362/1228) и 14,1% (154/1093) соответственно (р<0,001; ОШ 2,0; 95% ДИ 1,765-2,480). В структуре цитоплазматических аномалий строения ооцитов в обеих группах преобладала центральная гранулярность цитоплазмы. Частота выявления данного вида дисморфизма в основной группе составила 17,3% (213/1229), в группе контроля - 10% (109/1093), при этом различия были статистически значимы (р<0,001; ОШ 2,26; 95% ДИ 1,8-2,7). Распространенность экстрацитоплазматических аномалий строения ооцитов, а также сочетание форм у ВИЧ-инфицированных пациенток были сопоставимы с ВИЧ-серонегативным контролем. Заключение: Более высокая распространенность дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных пациенток, принимающих АРТ, по сравнению со здоровыми женщинами свидетельствует об ухудшения морфологических характеристик ооцитов в данной группе больных.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Елена Викторовна Митюрина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: mity-elena@yandex.ru
к.м.н., с.н.с. научно-клинического отделения вспомогательных репродуктивных технологий им. Фредерика Паулсена

Светлана Григорьевна Перминова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: perisvet@list.ru
д.м.н., доцент, в.н.с. отделения НКО ВРТ им. Ф. Паулсена

Алексей Викторович Кравченко

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора

Email: alexey-kravtchenko@yandex.ru
д.м.н., профессор, в.н.с. Федерального научно-методического центра по профилактике и борьбе со СПИДом

Надежда Владимировна Козырина

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора

Email: nad-kozyrina@yandex.ru
к.м.н., научный сотрудник

Мария Александровна Веюкова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: veymary@gmail.com
к.б.н., заведующая эмбриологической лабораторией НКО ВРТ им. Ф. Паулсена

Александра Александровна Гапоненко

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: sasha.gap@mail.ru
аспирант

Список литературы

  1. Sirard М.-A., Frangois R., Blondin P., Robert C. Contribution of the oocyte to embryo quality. Theriogenology. 2006; 65(1): 126-36. https://dx.doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.09.020.
  2. De Sousa P.A., Caveney A., Westhusin M.E., Watson A.J. Temporal patterns of embryonic gene expression and their dependence on oogenetic factors. Theriogenology. 1998; 49(1): 115-28. https://dx.doi.org/10.1016/s0093-691x(97)00406-8.
  3. Setti A.S., Figueira R.C.S., Braga D.P.A.F., Colturato S.S., Iaconelli A. Jr., Borges E. Jr. Relationship between oocyte abnormal morphology and intracytoplasmic sperm injection outcomes: a meta-analysis. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2011; 159(2): 364-70. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2011.07.031.
  4. Горшкова А.Г., Долгушина Н.В., Макарова Н.П., Ковальская Е.В., Калинина Е.А. Факторы риска развития дисморфизмов ооцитов в программах вспомогательных репродуктивных технологий. Акушерство и гинекология. 2015; 5: 66-73.
  5. Rienzi L., Ubaldi F.M., Iacobelli M., Minasi M.G., Romano S., Ferrero S. et al. Significance of metaphase II human oocyte morphology on ICSI outcome. Fertil. Steril. 2008; 90(5): 1692-700. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.09.024.
  6. Ubaldi F., Rienzi L. Morphological selection of gametes. Placenta. 2008; 29(Suppl. B): 115-20. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2008.08.009.
  7. Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Hum. Rep. 2011; 26(6): 1270-83. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/der037.
  8. Wilding M., Di Matteo L., DAndretti S., Montanaro N., Capobianco C., Dale B. An oocyte score for use in assisted reproduction. J. Assist. Reprod. Genet. 2007; 24(8): 350-8. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-007-9143-8.
  9. Balakier H., Sojeck A., Motamedi G., Bashar S., Mandel R., Librach C. Is the zona pellucida thickness of human embryos influenced by women’s age and hormonal levels ? Fertil. Steril. 2012; 98(1): 77-83. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.04.015.
  10. Setti A.S., Braga D.P.A.F., Figueira Rde C., Vingris L., Iaconelli A., Borges E. Jr. Body mass index is negatively correlated with the response to controlled ovarian stimulation but does not influence oocyte morphology in ICSI cycles. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2012; 163(2): 175-9. https://dx.doi.org10.1016/j.ejogrb.2012.04.002.
  11. Cota A.M., Oliveira J.B., Petersen C.G., Mauri A.L., Massaro F.C., Silva L.F. et al. GnRH agonist versus GnRH antagonist in assisted reproduction cycles : oocyte morphology. Reprod. Biol. Endocrinol. 2012; 10: 33. https://dx.doi.org/10.1186/1477-7827-10-33.
  12. Fancsovits P., Tothne Z.G., Murber A., Rigo J. Jr., Urbancsek J. Importance of cytoplasmic granularity of human oocytes in in vitro fertilization treatments. Acta Biol. Hung. 2012; 63(2): 189-201. https://dx.doi.org/10.1556/ ABiol.63.2012.2.3.
  13. Yoldemir T. Does the duration of gonadotropin stimulation affect embryo quality on post-retrieval day 3? Gynecol. Endocrinol. 2011; 27(5): 324-30. https://dx.doi.org/10.3109/09513590.2010.491571.
  14. UNAIDS. Global HIV and AIDS statistics - Fact sheet. Global HIV statistics. 2020. Available at: www.unaids.org
  15. Lopez S., Coll O., Durban M., Hernandez S., Vidal R., Suy A. et al. Mitochondrial DNA depletion in oocytes of HIV-infected antiretroviral-treated infertile women. Antiv. Ther. 2008; 13(6): 833-8.
  16. Bostan A., Demeestere I., Vanderwinden J.-M., Devreker F., Englert Y. Nucleoside analog stavudine depletes mitochondrial DNA with no organelle loss in mouse oocytes. Curr. HIV Res. 2010; 8(2): 127-33. https://dx.doi.org/10.2174/157016210790442678.
  17. Митюрина Е.В., Перминова С.Г., Селимова Ф.Н., Бурменская О.В., Козырина Н.В., Кравченко А.В. Гонадотоксичные эффекты антиретровирусной терапии у ВИЧ-инфицированных женщин. Акушерство и гинекология. 2020; 4: 111-9. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.4.111-119.
  18. Федеральный научно-методический центр по профилактике и борьбе со СПИДом. Справка «ВИЧ-инфекция в Российской Федерации» на 31 декабря 2020 г. Доступно по VICH-infektsiya-v-Rossijskoj-Federatsii-na-31.12.2020-.pdf (www.hivrussia.info).
  19. Simon V., Ho D.D., Karim Q.A. HIV/AIDS epidemiology, pathogenesis, prevention, and treatment. Lancet. 2006; 368(9534): 489-504. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(06)69157-5.
  20. Savasi V., Ferrazzi E., Lanzani C., Oneta M., Parrilla B., Persico T. Safety of sperm washing and ART outcome in 741 HIV-1-serodiscordant couples. Hum. Reprod. 2007; 22(3): 772-7. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/del422.
  21. Marques C., Guerreiro C., Soares S.R. Lights and shadows about the effectiveness of IVF in HIV infected women: a systematic review. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 2015; 2015: 517208. https://dx.doi.org/10.1155/2015/517208.
  22. Scherzer R., Bacchetti P., Messerlian G., Goderre J., Maki P.M., Seifer D.B. et al. Impact of CD4+ lymphocytes and HIV infection on Anti-Mullerian Hormone levels in a large cohort of HIV-infected and HIV-uninfected women. Am. J. Reprod. Immunol. 2015; 73(3): 273-84. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12332.
  23. Ebner T., Sommergruber M., Moser M., Shebl O., Schreier-Lechner E., Tews G. Basal level of anti-Mullerian hormone is associated with oocyte quality in stimulated cycles. Hum. Reprod. 2006; 21(8): 2022-6. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/del127.
  24. Azizi E., Naji M., Nazari L., Salehpour S., Karimi M., Borumandnia N. et al. Serum anti-Mullerian hormone is associated with oocyte dysmorphisms and ICSI outcomes. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2019; 147(2): 179-86. https://dx.doi.org/10.1002/ijgo.12941
  25. Borges E., Braga D.P.A.F., Setti A., Figueira R.C., Iaconelli A. Jr. The predictive value of serum concentrations of anti-Mullerian hormone for oocyte quality, fertilization, and implantation. JBRA Assist. Reprod. 2017; 21(3): 176-82. https://dx.doi.org/10.5935/1518-0557.20170035
  26. Figueira R.C., Braga D.P.A.F, Semiao-Francisco L., Madaschi C., Iaconelli A. Jr., Borges E. Jr. Metaphase II human oocyte morphology: contributing factors and effects on fertilization potential and embryo developmental ability in ICSI cycles. Fertil. Steril. 2010; 94(3): 1115-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.11.039
  27. Kahraman S., Yakin K., Donmez E., Samli H., Bahge M., Cengiz G. et al. Relationship between granular cytoplasm of oocytes and pregnancy outcome following intracytoplasmic sperm injection. Hum. Reprod. 2000; 15(11): 2390-3. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/15.11.2390.
  28. Tulay P., Arslan H., Buran A., Koprulu Y. Assessment of successful pregnancy using granular oocytes in ICSI treatments. Zygote. 2019; 27(2): 97-100. https://dx.doi.org/10.1017/S096719941900008X
  29. Ten J., Mendiola J., Vioque J., De Juan J., Bernabeu R. Donor oocyte dysmorphisms and their influence on fertilization and embryo quality. Reprod. Biomed. Online. 2007; 14(1): 40-8. https://dx.doi.org/10.1016/S1472-6483(10)60762-6
  30. Shaw-Jackson C., Van Beirs N., Thomas A.-L., Rozenberg S., Autin C. Can healthy babies originate from oocytes with smooth endoplasmic reticulum aggregates? A systematic mini-review. Hum. Reprod. 2014; 29(7): 1380-6. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deu101

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2021