MYCOPLASMA HOMINIS КАК ЭТИОЛОГИЧЕСКИЙ АГЕНТ ТУБООВАРИАЛЬНОГО АБСЦЕССА И ПИОСАЛЬПИНКСА. МИФ ИЛИ РЕАЛЬНОСТЬ?


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Несмотря на то, что M. hominis принято относить к условно-патогенным микроорганизмам, описано множество клинических случаев с участием M. hominis как единственного микроорганизма в развитии тяжелых воспалительных процессов в легких, межпозвоночных дисках, почках, печени, сердце и головном мозге. Роль M. hominis в развитии воспалительных заболеваний органов малого таза (ВЗОМТ) остается неизученной. Описание клинических наблюдений. Представлены данные по двум пациенткам, поступившим в стационар для лечения тубоовариального абсцесса и пиосальпинкса. Пациенткам проведено комплексное обследование, выполнена лапароскопия, в ходе которой получен интраоперационный материал, исследованный с применением полимеразной цепной реакции для обнаружения ДНК широкого спектра микроорганизмов. В материале, полученном от двух пациенток с ВЗОМТ, обнаружена ДНК M. hominis в концентрации 108 ГЭ/мл (соответствует суммарной концентрации ДНК бактерий, присутствующих в биоматериале). Других микрооорганизмов в одном случае обнаружено не было, во втором случае их концентрация была ниже таковой M. hominis в 100 и более раз. Заключение. В двух клинических наблюдениях ВЗОМТ было установлено, что наиболее вероятная этиологическая роль принадлежит M. hominis. Возможная роль M. hominis в развитии ВЗОМТ должна учитываться при построении тактики обследования и лечения пациенток с ВЗОМТ.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Александр Евгеньевич Гущин

ФБУН Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: aguschin1965@pcr.ru
к.б.н., руководитель лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а

Татьяна Андреевна Румянцева

ФБУН Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: Ivanovatatiana86@yandex.ru
научный сотрудник лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции; врач акушер-гинеколог Научно-консультативного клинико-диагностического центра 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а

Гузель Анваровна Хайруллина

ФБУН Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: guzel.khairullina@gmail.com
к.б.н., научный сотрудник лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а

Тамара Игоревна Махова

ФБУН Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: tamara.dolgova89@gmail.com
м.н.с. лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а

Армен Олегович Духин

ФГАОУВО Российский университет дружбы народов Минобрнауки России

Email: aodukhin@mail.ru
д. м. н., профессор кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии медицинского факультета 117198, Россия, ул. Миклухо-Маклая, д. 6

Список литературы

  1. Centers for Disease Control and Prevention (CDC) STD Treatment Guidelines. MMWR Recomm. Rep. 2010; 59: 45.
  2. Ross J., Judlin P., Jensen J. 2012 European guideline for the management of pelvic inflammatory disease. Int. J. STD AIDS. 2014; 25: 1-7.
  3. Yang T.K., Chung C.J., Chung S.D., Muo C.H., Chang C.H., Huang C.Y. Risk of endometrial cancer in women with pelvic inflammatory disease: a nationwide population-based retrospective cohort study. Medicine(Baltimore). 2015; 94(34): e1278. doi: 10.1097/MD.0000000000001278.
  4. Ness R.B., Kip K.E., Hillier S.L., Soper D.E., Stamm C.A., Sweet R.L. A cluster analysis of bacterial vaginosis-associated microflora and pelvic inflammatory disease. Am. J. Epidemiol. 2005; 162(6): 585-90.
  5. Haggerty C.L., Totten P.A., Tang G., Astete S.G., Ferris M.J., Norori J. et al. Identification of novel microbes associated with pelvic inflammatory disease and infertility. Sex. Transm. Infect. 2016; 92(6): 441-6. doi: 10.1136/ sextrans-2015-052285.
  6. Hussain S.T., Gordon S.M., Tan C.D., Smedira N.G. Mycoplasma hominis prosthetic valve endocarditis: the value of molecular sequencing in cardiac surgery. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2013; 146(1): e7-9. doi: 10.1016/j. jtcvs.2013.03.039.
  7. Vogel U., Lüneberg E., Kuse E.R., Neulinger A.L., Frosch M. Extragenital Mycoplasma hominis infection in two liver transplant recipients. Clin. Infect. Dis. 1997; 24(3): 512-3.
  8. Camara B., Mouzin M., Ribes D., Esposito L., Guitard J., Game X. et al. Perihepatitis and perinephric abscess due to Mycoplasma hominis in a kidney transplant patient. Exp. Clin. Transplant. 2007; 5(2): 708-9.
  9. Flouzat-Lachaniette C.H., Guidon J., Allain J., Poignard A. An uncommon case of Mycoplasma hominis infection after total disc replacement. Eur. Spine J. 2013; 22(Suppl. 3): S394-8. doi: 10.1007/s00586-012-2511-9.
  10. Hos N.J., Bauer C., Liebig T., Plum G., Seifert H., Hampl J. Autoinfection as a cause of postpartum subdural empyema due toMycoplasma hominis. Infection. 2015; 43(2): 241-4. doi: 10.1007/s15010-014-0713-2.
  11. Randall C.L., Baetz R.W., Hall D.W., Birtch P.K. The effect of treatment on the incidence of abortion. N. Y. State J. Med. 1950; 50(21): 2525-30.
  12. Melen B., Gotthardson A. Complement fixation with human pleuropneumonia-like organisms. Acta Pathol. Microbiol. Scand. 1955; 37(2): 196-200.
  13. Mardh P.A., Weström L. Tubal and cervical cultures in acute salpingitis with special reference to Mycoplasma hominis and T-strain mycoplasmas. Br. J. Vener. Dis. 1970; 46(3): 179-86.
  14. Mardh P.A., Weström L. Antibodies to Mycoplasma hominis in patients with genital infections and in healthy controls. Br. J. Vener. Dis. 1970; 46(5): 390-7.
  15. Möller B.R., Taylor-Robinson D., Furr P.M., Freundt E.A. Acute upper genital-tract disease in female monkeys provoked experimentally by Mycoplasma genitalium. Br. J. Exp. Pathol. 1985; 66(4): 417-26.
  16. Румянцева Т.А., Савочкина Ю.А., Долгова Т.И., Зайцева С.В., Кахерская М.А., Кудрявцева Л.В., Гущин А.Е. Диагностика вульвовагинального кандидоза: сопоставление информативности клинических данных и результатов лабораторных исследований. Акушерство и гинекология. 2015; 3: 55-61.
  17. Румянцева Т.А., Варламова А.В., Гущин А.Е., Безруков В.М. Сравнение тестов для количественной оценки Ureaplasma parvum, Ureaplasma urealyticum, Mycoplasma hominis: «Mycoplasma Duo», «Уреаплазма Микротест», «Микоплазма Микротест» и «Флороценоз-Микоплазмы». Клиническая лабораторная диагностика. 2014; 8: 52-7
  18. Rumyantseva T., Golparian D., Nilsson C.S., Johansson E., Falk M., Fredlund H. et al. Evaluation of the new AmpliSens multiplex real-time PCR assay for simultaneous detection of Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium, and Trichomonas vaginalis. APMIS. 2015; 123(10): 879-86 doi: 10.1111/apm.12430.
  19. Rumyantseva T., Shipitsyna E., Guschin A., Unemo M. Evaluation and subsequent optimizations of the quantitative AmpliSens Florocenosis/Bacterial vaginosis-FRT multiplex real-time PCR assay for diagnosis of bacterial vaginosis. APMIS. 2016; Oct 7. doi: 10.1111/apm.12608.
  20. Rumyantseva T.A., Bellen G., Savochkina Y.A., Guschin A.E., Donders G.G. Diagnosis of aerobic vaginitis by quantitative real-time PCR. Arch. Gynecol. Obstet. 2016; 294(1): 109-14.
  21. Sonnex C. Toll-like receptors and genital tract infection. Int. J. STD AIDS. 2010; 21(3): 153-7.
  22. Peltier M.R., Freeman A.J., Mu H.H., Cole B.C. Characterization and partial purification of a macrophage-stimulating factor from Mycoplasma hominis. Am. J. Reprod. Immunol. 2005; 54(6): 342-51.
  23. Hasebe A., Mu H.H., Cole B.C. A potential pathogenic factor from Mycoplasma hominis is a TLR2-dependent, macrophage-activating, P50-related adhesin. Am. J. Reprod. Immunol. 2014; 72(3): 285-95. doi: 10.1111/ aji.12279.
  24. Menard J.P., Fenollar F., Henry M., Bretelle F., Raoult D. Molecular quantification of Gardnerella vaginalis and Atopobium vaginae loads to predict bacterial vaginosis. Clin. Infect. Dis. 2008; 47(1): 33-43. doi: 10.1086/588661.
  25. Cox C., Watt A.P., McKenna J.P., Coyle P.V. Mycoplasma hominis and Gardnerella vaginalis display a significant synergistic relationship in bacterial vaginosis. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2016; 35(3): 481-7. doi: 10.1007/ s10096-015-2564-x.
  26. Hedges S.R., Barrientes F., Desmond R.A., Schwebke J.R. Local and systemic cytokine levels in relation to changes in vaginal flora. J. Infect. Dis. 2006; 193(4): 556-62.
  27. Allen-Daniels M.J., Serrano M.G., Pflugner L.P., Fettweis J.M., Prestosa M.A., Koparde V.N. Identification of a gene in Mycoplasma hominis associated with preterm birth and microbial burden in intra-amniotic infection Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 212(6): 779. e1-779. e13.
  28. Taylor B.D., Darville T., Ferrell R.E., Ness R.B., Haggerty C.L. Racial variation in toll-like receptor variants among women with pelvic inflammatory disease. J. Infect. Dis. 2013; 207(6): 940-6. doi: 10.1093/infdis/jis922.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах