Эффективность лечения бесплодия при переносе криоэмбрионов, полученных при аутологичном сокультивировании с клетками кумулюса у женщин с повторными неудачами имплантации

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель: Оценить эффективность лечения бесплодия в программах криопереноса эмбриона, полученного при аутологичном сокультивировании с клетками кумулюса в программах вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ).

Материалы и методы: В рамках работы были обследованы 198 супружеских пар с повторными неудачами имплантации (не менее 2 попыток), проходящих лечение бесплодия методами ВРТ с переносом размороженного эмбриона в полость матки. Из них 114 – программы аутологичного сокультивирования эмбрионов с клетками кумулюса, 84 – без такового. Всем женщинам подготовку к криопереносу осуществляли с использованием циклической гормональной терапии. Размораживали и переносили строго один эмбрион в полость матки. Оценивали частоту наступления беременности и частоту родов.

Результаты: В данной работе показано, что аутологичное сокультивирование эмбрионов с клетками кумулюса увеличивает частоту наступления беременности в группе женщин ≤35 лет с 26,3 до 48,2% (ОШ 1,83; 95% ДИ 1,00–3,32) и значимо снижает этот показатель у женщин позднего репродуктивного возраста – с 41,3 до 20,6% (ОШ 0,37; 95% ДИ 0,15–0,88). Частота родов в группах значимо не отличается.

Заключение: Результаты полученного исследования позволяют рекомендовать аутологичное сокультивирование эмбрионов с клетками кумулюса женщинам ≤35 лет с множественными неудачными попытками ВРТ в анамнезе для увеличения эффективности лечения бесплодия.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Гунай Раисовна Асфарова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: asfarovag@gmail.com

аспирант отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Вероника Юрьевна Смольникова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: v_smolnikova@oparina4.ru

д.м.н., доцент, в.н.с. отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Наталья Петровна Макарова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: np_makarova@oparina4.ru

д.б.н., в.н.с. отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Борис Владимирович Зингеренко

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: b_zingerenko@oparina4.ru

м.н.с. отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Елена Анатольевна Калинина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: e_kalinina@oparina4.ru

д.м.н., профессор, руководитель отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. проф. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Список литературы

  1. Cutting R. Single embryo transfer for all. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2018; 53: 30-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2018.07.001.
  2. Bashiri A., Halper K.I., Orvieto R. Recurrent Implantation Failure-update overview on etiology, diagnosis, treatment and future directions. Reprod. Biol. Endocrinol. 2018; 16(1): 121. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-018-0414-2.
  3. Orvieto R., Brengauz M., Feldman B. A novel approach to normal responder patient with repeated implantation failures--a case report. Gynecol. Endocrinol. 2015; 31(6): 435-7. https://dx.doi.org/10.3109/09513590.2015.1005595.
  4. Zeyneloglu H.B., Onalan G. Remedies for recurrent implantation failure. Semin. Reprod. Med. 2014; 32(4): 297-305. https://dx.doi.org/10.1055/s-0034-1375182.
  5. Coughlan C., Ledger W., Wang Q., Liu F., Demirol A., Gurgan T. et al. Recurrent implantation failure: definition and management. Reprod. Biomed. Online. 2014; 28(1): 14-38. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2013.08.011.
  6. Zeadna A., Son W.Y., Moon J.H., Dahan M.H. A comparison of biochemical pregnancy rates between women who underwent IVF and fertile controls who conceived spontaneously†. Hum. Reprod. 2015; 30(4): 783-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dev024.
  7. Larsen E.C., Christiansen O.B., Kolte A.M., Macklon N. New insights into mechanisms behind miscarriage. BMC Med. 2013; 11: 154. https://dx.doi.org/10.1186/1741-7015-11-154.
  8. Richani D., Dunning K.R., Thompson J.G., Gilchrist R.B. Metabolic co-dependence of the oocyte and cumulus cells: essential role in determining oocyte developmental competence. Hum. Reprod. Update. 2021; 27(1): 27-47. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmaa043.
  9. Gilchrist R.B., Lane M., Thompson J.G. Oocyte-secreted factors: regulators of cumulus cell function and oocyte quality. Hum. Reprod. Update. 2008; 14(2): 159-77. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmm040.
  10. Krisher R.L., Heuberger A.L., Paczkowski M., Stevens J., Pospisil C., Prather R.S. et al. Applying metabolomic analyses to the practice of embryology: physiology, development and assisted reproductive technology. Reprod. Fertil. Dev. 2015; 27(4): 602-20. https://dx.doi.org/10.1071/RD14359.
  11. Mansour R.T., Aboulghar M.A., Serour G.I., Abbass A.M. Co-culture of human pronucleate oocytes with their cumulus cells. Hum. Reprod. 1994; 9(9): 1727-9. https://dx.doi.org/10.1093/ oxfordjournals.humrep.a138782.
  12. Асфарова Г.Р., Смольникова В.Ю., Макарова Н.П., Бобров М.Ю., Эльдаров Ч.М., Зингеренко Б.В., Калинина Е.А. Клинические и молекулярные аспекты аутологичного сокультивирования эмбрионов с клетками кумулюса в программах экстракорпорального оплодотворения. Акушерство и гинекология. 2023; 4: 97-110. [Asfarova G.R., Smolnikova V.Yu., Makarova N.P., Bobrov M.Yu., Eldarov Ch.M., Zingerenko B.V., Kalinina E.A. Clinical and molecular aspects of autologous embryo cumulus cells co culture in IVF programs. Obstetrics and Gynecology. 2023; (4): 97-110. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.306.
  13. Zhao H., Wang Y., Yang Y. Follicular development and ovary aging: single-cell studies. Biol. Reprod. 2023 Jul 28: ioad080. https://dx.doi.org/10.1093/biolre/ioad080.
  14. Wen X., Yang Q., Sun D., Jiang Z.Y., Wang T., Liu H.R. et al. Cumulus cells accelerate postovulatory oocyte aging through IL1-IL1R1 interaction in mice. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24(4): 3530. https://dx.doi.org/10.3390/ijms24043530.
  15. Qiao T.W., Liu N., Miao D.Q., Zhang X., Han D., Ge L., Tan J.H. Cumulus cells accelerate aging of mouse oocytes by secreting a soluble factor(s). Mol. Reprod. Dev. 2008; 75(3): 521-8. https://dx.doi.org/10.1002/mrd.20779.
  16. Virant-Klun I., Bauer C., Ståhlberg A., Kubista M., Skutella T. Human oocyte maturation in vitro is improved by co-culture with cumulus cells from mature oocytes. Reprod. Biomed. Online. 2018; 36(5): 508-23. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2018.01.011.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО «Бионика Медиа», 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах