<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Inland Water Biology</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Inland Water Biology</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Биология внутренних вод</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">0320-9652</issn><issn publication-format="electronic">3034-5227</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">The Russian Academy of Sciences</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">700510</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.7868/S3034522725060175</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading"><subject>ЭКОЛОГИЧЕСКАЯ ФИЗИОЛОГИЯ И БИОХИМИЯ ГИДРОБИОНТОВ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Features of Erythrocyte Cytoarchitectonics <italic>Pelophylax ridibunda</italic> at Temperature Load in <italic>vitro</italic> Experiments</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>ОСОБЕННОСТИ ЦИТОАРХИТЕКТОНИКИ ЭРИТРОЦИТОВ ЛЯГУШКИ ОЗЕРНОЙ <italic>Pelophylax ridibunda</italic> ПРИ ТЕМПЕРАТУРНОЙ НАГРУЗКЕ В ОПЫТАХ <italic>in vitro</italic></trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Chernyavskikh</surname><given-names>S. D</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Чернявских</surname><given-names>С. Д</given-names></name></name-alternatives><email>chernyavskikh@bsu.edu.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Roshchupkina</surname><given-names>I. S</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Рощупкина</surname><given-names>И. С</given-names></name></name-alternatives><email>-</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Prisny</surname><given-names>A. A</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Присный</surname><given-names>А. А</given-names></name></name-alternatives><email>-</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff3"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Van Thanh</surname><given-names>Vo</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Ван Тхань</surname><given-names>Во</given-names></name></name-alternatives><email>-</email><xref ref-type="aff" rid="aff4"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Belgorod State National Research University</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Белгородский государственный национальный исследовательский университет</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">Federal Center for Animal Health</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Федеральный центр охраны здоровья животных</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff3"><aff><institution xml:lang="en">Federal Scientific Centre VIEV</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрабина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff4"><aff><institution xml:lang="en">Ho Chi Minh City University of Education</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Педагогический университет Хошимина</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2025-12-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>12</month><year>2025</year></pub-date><volume>18</volume><issue>6</issue><issue-title xml:lang="en">VOL 18, NO6 (2025)</issue-title><issue-title xml:lang="ru">ТОМ 18, №6 (2025)</issue-title><fpage>1187</fpage><lpage>1193</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2026-01-08"><day>08</day><month>01</month><year>2026</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2025, Russian Academy of Sciences</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2025, Российская академия наук</copyright-statement><copyright-year>2025</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Russian Academy of Sciences</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Российская академия наук</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" start_date="2026-12-25"/></permissions><self-uri xlink:href="https://journals.eco-vector.com/0320-9652/article/view/700510">https://journals.eco-vector.com/0320-9652/article/view/700510</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>Morphometric and biophysical properties of erythrocytes of the marsh frog <italic>Pelophylax ridibunda</italic> Pall. incubated at different temperatures in vitro experiments were studied using atomic force microscopy. It was found that a decrease in the incubation temperature (to 5°C) does not cause changes in the morphometric parameters of the cells, while an increase in the incubation temperature (to 40°C) contributes to a decrease in the above-mentioned parameters compared to incubation at the control temperature (20°C). With a decrease and increase in the incubation temperature compared to the control temperature, an increase in the number of globular protrusions on the surface of erythrocytes and an increase in their height are observed. At decreased and increased incubation temperatures, an increase in the number and an increase in the diameter of depressions on the surface of erythrocytes, as well as a decrease in the depth of protrusions are observed. A decrease in the incubation temperature does not cause changes in the morphometric parameters of erythrocytes compared to incubation at the control temperature, whereas under conditions of an increased incubation temperature, these parameters significantly decrease. Incubation of erythrocytes at a temperature of 40°C contributes to a decrease in the volume and area compared to the control temperature. When the incubation temperature is reduced to 5°C, the Young's modulus of nucleated erythrocytes increases compared to the control temperature; incubation of nucleated erythrocytes at a temperature of 40°C causes an insignificant change in this indicator compared to the control. Adhesion of the nucleated erythrocyte membrane to the nanoprobe increases after incubation at a temperature of 5°C and decreases after incubation at a temperature of 40°C. The study found that under the influence of the temperature factor, adaptive changes occur in the physiological properties of the plasma membrane and morphometric parameters of the cells.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Методом атомно-силовой микроскопии изучены морфометрические и биофизические свойства эритроцитов лягушки озерной <italic>Pelophylax ridibunda</italic> (Pallas, 1771), инкубированных при разных температурах в опытах <italic>in vitro</italic>. Установлено, что снижение температуры инкубации (до 5°C) не вызывает изменений морфометрических параметров клеток, повышение температуры инкубации (до 40°C) – способствует уменьшению вышеназванных параметров по сравнению с инкубацией при контрольной температуре (20°C). При понижении и повышении температуры инкубации по сравнению с контрольной температурой увеличивается количество глобулярных выступов на поверхности эритроцитов и повышается их высота. При пониженной и повышенной температурах инкубации наблюдается увеличение количества и повышение диаметра углублений на поверхности эритроцитов, а также уменьшение глубины выступов. Снижение температуры инкубации не вызывает изменений морфометрических параметров эритроцитов по сравнению с инкубацией при контрольной температуре, тогда как в условиях повышенной температуры инкубации эти параметры достоверно снижаются. Инкубация эритроцитов при 40°C способствует уменьшению величины их объема и площади по сравнению с контрольной температурой. При уменьшении температуры инкубации до 5°C модуль Юнга ядерных эритроцитов возрастает по сравнению с контрольной температурой, инкубация ядерных эритроцитов при температуре 40°C вызывает незначительное изменение данного показателя по сравнению с контролем. Адгезия к нанозонду мембраны ядерных эритроцитов повышается после инкубации при 5°C и уменьшается после инкубации при 40°C. Установлено, что при действии температурного фактора происходит приспособительные изменения в физиологических свойствах плазмалеммы и морфометрических показателях клеток.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>erythrocytes</kwd><kwd>temperature</kwd><kwd>adhesion</kwd><kwd>elasticity</kwd><kwd>morphometric parameters</kwd><kwd>number of globular protrusions</kwd><kwd>number of depressions</kwd><kwd>diameter of depressions</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>эритроциты</kwd><kwd>температура</kwd><kwd>адгезия</kwd><kwd>упругость</kwd><kwd>морфометрические параметры</kwd><kwd>количество глобулярных выступов</kwd><kwd>количество углублений</kwd><kwd>диаметр углублений</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement xml:lang="ru">Данная работа финансировалась за счет средств бюджета Белгородского государственного национального исследовательского университета.</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Боровская Н.К., Кузнецова Э.Э., Горохова В.Г. и др. 2010. Структурно-функциональная характеристика мембраны эритроцита и ее изменения при патологиях разного генеза // Бюл. ВСНЦ СО РАМН. № 3(73). С. 334.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Голованов В.К. 2013. Температурные критерии жизнедеятельности пресноводных рыб. М.: Изд-во ПОЛИГРАФ-ПЛЮС.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Дунаев Е.А., Орлова В.Ф. 2012. Земноводные и пресмыкающиеся России. Атлас определитель. М.: Фитон+.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Евдонин А.Л., Медведева Н.Д. 2009. Внеклеточный белок теплового шока 70 и его функции // Цитология. Т. 51. № 2. С. 130.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Кармен Н.Б., Милютина H.П., Орлов А.А. 2005. Структурно-функциональное состояние мембран эритроцитов и его коррекция лерфтораном // Бюл. экспериментальной биологии и медицины. Т. 139. № 3. С. 517.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Ковальчук Л.А., Черная Л.В., Мищенко В.А. и др. 2022. Гематологические и биохимические параметры инвазивного вида земноводных Pelophylax ridibundus (Amphibia, Anura), интродуцированного в водные объекты Среднего Урала // Биология внутр. вод. № 4. С. 431. https://doi.org/10.31857/S0320965222040155</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Луценко М.Т., Андриевская И.А. 2015. Морфофункциональные изменения в эритроидных элементах в норме и при патологии: Монография. Благовещенск: Дальневосточный науч. центр физиологии и патологии дыхания.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Ломако В.В. 2018. Влияние разных режимов охлаждения (краниоцеребральной и иммерсионной гипотермии, поверхностных ритмических и экстремальных холодовых воздействий) на лейкоцитарные показатели крови крыс // Проблемы криобиологии и криомедицины. № 28(4). С. 293.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Мухомедзянова С.В., Пивоваров Ю.Н., Богданова О.В. и др. 2017. Липиды биологических мембран в норме и патологии (Обзор литературы) // Acta Biomedica Scientifica. Т. 2. № 5. Ч. 1. С. 43.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Новицкий В.В., Рязанцева Н.В., Степовая Е.А. 2004. Физиология и патофизиология эритроцита. Томск: Изд-во Томск. ун-та.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Панкова Н.Б. 2020. Механизмы срочной и долговременной адаптации // Патогенез. Т. 18. № 3. С. 77.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Пруцкова Н.П., Селиверстова Е.В., Кутина А.В. 2023. Влияние изменений водно-солевого баланса на ионо- и осморегулирующую функции почек у озерной лягушки // Лабораторные животные для научных исследований. Т. 6. № 3. С. 44. https://doi.org/10.57034/2618723X-2023-03-03</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Саидов М.Б., Халилов Р.А. 2013. Структурно-динамические параметры мембран эритроцитов при гипотермии и введении даларгина // Успехи современного естествознания. № 11. С. 73.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Силс Е.А. 2008. Сравнительный анализ гематологических показателей остромордой (Rana arvalis Nilsson, 1842) и озерной (Rana ridibunda Pallas, 1771) лягушек городских популяций // Вестн. Оренбург. гос. ун-та. № 10(92). С. 230.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Скоркина М.Ю., Федорова М.З., Чернявских С.Д. и др. 2011. Сравнительная оценка морфофункциональных характеристик нативных и фиксированных эритроцитов // Цитология. Т. 53. № 1. С. 17.</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Смирнов Л.П., Богдан В.В. 2006. Температурная преадаптация эктотермных организмов разной организации: роль жирно-кислотного состава липидов // Журн. эвол. биохим. и физиол. Т. 42. № 2. С. 110.</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>Солдатов А.А. 2023. Случаи спонтанного роста концентрации метгемоглобина в крови костистых рыб на протяжении годового цикла // Биология внутр. вод. № 4. С. 549. https://doi.org/10.31857/S032096522304023X</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>Федоpова М.З., Павлов Н.А., Зубаpева Е.В. и др. 2008. Использование атомно-силовой микроскопии для оценки морфометрических показателей клеток крови // Биофизика. Т. 53. № 6. С. 1014.</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>Чернявских С.Д., Недопекина С.В. 2013. Сезонные колебания относительной микровязкости, полярности и сорбционной способности эритроцитарных мембран Cyprinus carpio и Rana ridibunda // Науч. ведомости БелГУ. Серия Естественные науки. № 3(146). Вып. 22. С. 99.</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>Чернявских С.Д., До Хыу Кует, Во Ван Тхань. 2018. Влияние температуры на морфометрические и физические показатели эритроцитов и полиморфно-ядерных лейкоцитов Carassius gibelio (Bloch) // Биология внутр. вод. № 1. С. 95. https://doi.org/10.7868/S0320965218010126</mixed-citation></ref><ref id="B21"><label>21.</label><mixed-citation>Шаповалова К.В. 2020. Адаптивные реакции костного мозга и развитие окислительного стресса у прудовых и озерных лягушек, обитающих в различных гидрохимических условиях среды: Автореф. дис …. на соискание ученой степени канд. биол. наук. Нижний Новгород. 23 с.</mixed-citation></ref><ref id="B22"><label>22.</label><mixed-citation>Ямщиков Н.В., Косов А.И., Суворова Г.Н., Кудрова В.А. 2007. Гистофизиология системы крови (цитоморфология, гемоцитопоэз, органы кроветворения и иммунной защиты) пособие. Самара: Изд-во Офорт.</mixed-citation></ref><ref id="B23"><label>23.</label><mixed-citation>Bhattacharyya K., Guha T., Bhar R. et al. 2004. Atomic force microscopic studies on erythrocytes from an evolutionary perspective // Anat. Rec. a Discov. Mol. Cell. Evol. Biol. V. 279. № 1. P. 671. https://doi.org/10.1002/ar.a.20057</mixed-citation></ref><ref id="B24"><label>24.</label><mixed-citation>Chernyavskikh S.D., Vo Van Thanh, Erina T.A. et al. 2016. Morphofunctional indices of erythrocytes and polymorphonuclear leukocytes Rana ridibunda Pall. under the influence of temperature factor // Int. J. Pharmacy and Technol. V. 8(2). P. 14 486.</mixed-citation></ref><ref id="B25"><label>25.</label><mixed-citation>Erken G., Erken H.A., Bor-Kucukatay M.T. et al. 2011. The effects of in vivo and ex vivo various degrees of cold exposure on erythrocyte deformability and aggregation // Med. Sci. Moni. № 17(8). P. 210.</mixed-citation></ref><ref id="B26"><label>26.</label><mixed-citation>Deveci D., Egginton S. 2001. Differential effect of cold acclimation on blood composition in rats and hamsters // J. Comp. Physiol. B: Biochemical, Systemic, and Environmental Physiol. № 171. P. 135.</mixed-citation></ref><ref id="B27"><label>27.</label><mixed-citation>Insall R.H., Machesky L.M. 2009. Actin dynamics at the leading edge: From simple machinery to complex networks // Dev. Cell. V. 17. № 3. P. 310. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2009.08.012</mixed-citation></ref><ref id="B28"><label>28.</label><mixed-citation>Itoh T., Takenawa T. 2009. Mechanisms of membrane deformation by lipid-binding domains // Prog. Lipid. Res. V. 48. № 5. P. 298. https://doi.org/10.1016/j.plipres.2009.05.002</mixed-citation></ref><ref id="B29"><label>29.</label><mixed-citation>Kregel K.C. 2002. Invited review: Heat shock proteins: modifying factors in physiological stress responses and acquired thermotolerance // J. Appl. Physiol. G. V. 92. № 5. P. 2177. https://doi.org/10.1152/japplphysiol.01267.2001</mixed-citation></ref><ref id="B30"><label>30.</label><mixed-citation>McMahon H.T., Gallop J.L. 2005. Membrane curvature and mechanisms of dynamic cell membrane remodeling // Nature. V. 438(7068). P. 590. https://doi.org/10.1038/nature04396</mixed-citation></ref><ref id="B31"><label>31.</label><mixed-citation>Svedentsov E.P., Chtcheglova O.O., Tumanova T.V., Solomina O.N. 2006. Conservation leukocytes in the conditions of cryoanabiosis (–40оС) // J. Stress Physiol. &amp; Biochem. V. 2(1). P. 28.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
