THE MORPHOLOGIC CHARACTERISTICS OF TRICHOMONAS VAGINALIS IN PATIENTS WITH ONCOLOGIC DISEASES AGAINST THE BACKGROUND OF INFLAMMATORY DISEASES OF ORGANS OF PELVIS MINOR



Cite item

Full Text

Abstract

The article demonstrates that in patients with oncologic diseases against the background of inflammatory diseases of organs of pelvis minor during applied therapy Trichomonas vaginalis can be located both on the mucous membranes of genitalia and in peripheral blood. The results of microscopic analysis are presented concerning the morphologic characteristics of T.vaginalis separated from peripheral blood of patients with oncologic diseases of genitalia and mammary glands. The comprehensive kit of laboratory procedures was applied. The procedure of fermentative hemolysis of blood makes it possible to distinguish between trichomonad and blood cells. The indirect reaction of immunofluorescence can be applied as an express-test of diagnostic of unusual course of trichomonad infection in female patients with oncologic diseases of genitalia and mammary glands.

Full Text

По прошествии более 170 лет с момента выделения А. Донне трихомонад из влагалища женщин важность проблемы трихомоноза остро встает в связи с возможным протеканием патологического процесса в генерализованной форме с длительной персистенцией возбудителя в периферической крови. Согласно данным зарубежной литературы, отмечается высокий процент выделения Trichomonas vaginalis у женщин со злокачественными поражениями гениталий [23]. Исследователи S. Sayed el-Ahl [26], E. El-Gayar и M. Rash-wan [15] отмечают особую роль T. vaginalis среди других возбудителей, передаваемых половым путем, в развитии цервикальной интраэпителиальной неоплазии с последующим образованием злокачественных опухолей шейки матки. Б.В. Клименко и соавт. [4] описывают нахождение трихомонад в пораженной ткани при раке Педжета, имеющем различную локализацию. Многие исследователи [4, 8, 11] отмечают возможность проникновения T. vaginalis в ткани, что свидетельствует о системном поражении организма простейшими. Способность трихомонад проникать в ткань с возможным распространением возбудителя через кровь и лимфу была описана в фундаментальных трудах исследователей 60-70-х годов прошлого века [6, 9]. Ю.Х. Терас [9], экспериментально наблюдавший тканевый паразитизм трихомонад, пишет, что "большинство клиницистов трактуют трихомонадное воспаление как местный поверхностный воспалительный процесс слизистой оболочки., совершенно игнорируют возможность восхождения инфекции и проникновения ее в глубжеле-жащие ткани" [9]. М.М. Васильев [1] при моделировании трихомонадной инфекции у животных показал наличие генерализованной формы трихомоноза на фоне иммуносупрессии. Большую инвазивность трихомонад с обнаружением их в периферической крови наблюдали многие исследователи [2, 5, 6, 10, 19, 28]. Инвазивные свойства трихомонад возникают после специфической адгезии за счет лектиноподобных белков и фибронектина к муциновому слою слизистых оболочек, а далее за счет пяти различных протеаз, обладающих, в частности, и муциназной активностью, трихомонады проходят через слизистый слой [21]. Дальнейшая персистен-ция возбудителя происходит за счет литического фактора LF-фосфолипазы, содержащей активные фракции с молекулярной массой 144 и 168 кДа [22, 27], а также за счет протеазы СР-65, оказывающей цитотоксическое действие на клетки макроорганизма [12]. Продвижение трихомонад через ткани возможно за счет выделения возбудителем факторов распространения: ферментов гиалуронидазы, нейра-минидазы, клеточного разъединяющего фактора и протеаз, воздействующих на спектрин мембраны клеток [13, 18, 24]. Способствуя ухудшению реологических свойств крови, T. vaginalis секретирует гемолитический фактор - белок, ответственный за повреждение эритроцитов без предварительного контакта клеток; повреждающее действие также возможно в результате обязательного контакта двух клеток - трихомонады и эритроцита [14, 17, 25]. № 2, 2013 17 Основные гематологические показатели у больных с онкологическими и воспалительными заболеваниями органов малого таза Показатель Больные раком молочных желез (n = 22) Больные с онкологическими заболеваниями органов малого таза (n = 33) Группа больных в целом (n = 55) Женщины без патологии (n = 40) Отклонения показателя в группе больных (n = 55) от границ нормы Гемоглобин, г/л 118,80 119,30 119,16 131,1 Снижение у 47,27% Эритроциты, • 1012/л 3,89 3,84 3,86 4,20 Снижение у 52,72%; у 30,91% наблюдаются анизоцитоз, пойкилоцитоз и анизохромия Лейкоциты, • 109/л 6,41 6,93 6,72 5,94 Повышение у 14,5% СОЭ, мм/ч 19,0 28,0 24,16 7,0 Повышение у 72,72% Нейтрофилы, %: палочкоядерные 1,5 2,0 1,8 2,6 В пределах нормы сегментоядерные 63,45 67,82 66,07 59,7 Повышение у 30,01% Эозинофилы, % 1,9 2,06 2,0 2,20 В пределах нормы Лимфоциты, % 27,72 21,30 23,87 29,3 Снижение у 38,18% Моноциты, % 5,36 6,85 6,25 6,20 В пределах нормы Инвазивным свойствам возбудителя способствуют выраженный полиморфизм трихомонад, наличие сразу нескольких приспособительных структур для движения, обусловливающих поступательное и вращательное движение, а также движение вокруг продольной оси тела, что позволяет возбудителю двигаться в жидких средах, таких как кровь и лимфа. Проникновению T. vaginalis в периферическое русло способствует выраженное иммуносупрессивное действие патогена на клетки организма [16], а также снижение иммунологической реактивности макроорганизма на фоне онкологического заболевания. Выявлена связь между раком цервикального канала с текущей или перенесенной трихомонадной инфекцией [20, 26]. В связи со сказанным целью работы явилось исследование крови у больных с онкологическими заболеваниями гениталий и молочных желез на инфицированность T. vaginalis с последующим изучением морфологических и культуральных особенностей выявленных форм возбудителя. Морфологические свойства T. vaginalis изучали у 55 женщин в возрасте от 22 до 78 лет (средний возраст 54,7 года), являющихся пациентками Ивановского областного онкологического диспансера. Обследованную группу составили 33 женщины с онкологическими заболеваниями органов малого таза и 22 больных раком молочной железы. У 36,4% больных с онкологическими заболеваниями гениталий диагностирован рак яичников, у 27,3% - рак тела матки, у 12,1% - рак цервикального канала, у 9,1% - миома матки в сочетании с эндометрио-зом, полипом цервикального канала, поликистозом яичников, спаечным процессом органов малого таза (СПОМТ), у 9,1% - рак шейки матки, у 3% - рак вульвы, у 3% -злокачественная опухоль забрюшинного пространства с метастазами в левый яичник и печень. У 21,21% больных основной диагноз рака сочетался с диагнозом канцерома-тоза брюшной полости. У 90,91% больных с онкологическими заболеваниями гениталий, которые обследовались в период химиотерапии или после нее, рак сочетался с основными сопутствующими заболеваниями - хроническими воспалительными заболеваниями органов малого таза (ВЗОМТ). При анализе структуры ВЗОМТ установлено, что у 26,70% больных рак сочетался с миомой матки и цервицитом, сальпингитом, кистой яичников; у 23,33% - с эндометритом на фоне синильного кольпита, фиброзного полипа цервикального канала; у 23,33% - с железистым полипом эндометрия на фоне кистозных образований шейки матки и яичников, у 10% - с эрозией шейки матки и аденокистозом эндометрия; у 10% - с цистоцеле вместе с кистой эндометрия; у 3,32% - с фиброзно-железистым полипом шейки матки и кистой яичников, у 3,32% - с кистой стромы эпителия влагалища и шейки матки. У 45,46% женщин, больных раком молочных желез, диагностирован рак правой молочной железы, у 40,91% - рак левой молочной железы, у 9,09% больных - рак обеих молочных желез, у 4,54% - мастит обеих молочных желез. У 50% больных наблюдались метастазы рака в лимфатические узлы, в некоторых случаях в легкие. Больные раком молочных желез в 90,91% случаев обследованы после комбинированной химиотерапии и лучевой терапии. В группе больных раком молочных желез ВЗОМТ встречались у 77,27% женщин. У 35,3% больных рак молочных желез сочетался с хроническим аднекситом, кольпитом, кистой яичников, СПОМТ, у 29,41% - с цер-вицитом, у 17,65% - с цистоцеле и сенильным кольпитом, у 11,76% - с миомой матки и кольпитом на фоне СПОМТ, у 5,88% - с эндометритом. У всех больных был диагностирован мочеполовой трихомоноз. Контролем служили 40 здоровых женщин в возрасте от 18 до 30 лет (средний возраст 20,1 года). Комплекс лабораторных методов включал микроскопический анализ мазков, взятых из заднего свода влагалища и цервикального канала, нативных и окрашенных по Граму, Май-Грюнвальду-Романовскому, исследование цервикальных выделений культуральным способом, методами полимеразной цепной реакции (ПЦР) и непрямой реакции иммунофлюоресценции - нРИФ (набор для флюоресценции ТрихоСкан, "ЛабДиагности-ка", Москва). Культуральную диагностику трихомоноза осуществляли при использовании обогащенной среды Те-раса. Основные гематологические показатели определяли по общепринятым методам. Анализ периферической крови, взятой из локтевой вены, с целью обнаружения трихо-монад проводили путем микроскопического исследования нативных и окрашенных препаратов. Разработана методика выделения трихомонад из крови, включающая гемолиз форменных элементов крови с использованием протео-литических ферментов пепсина и трипсина с последующим микроскопическим и культуральным исследованием гемолизированного осадка [3]. Идентификацию форм трихомонад, выделенных из крови, осуществляли путем: культивирования ферментативно разрушенной и цельной крови с последующими серийными пересевами (сделано до 10 пассажей), исследования выделенных культур методом нРИФ, ПЦР с использованием тест-системы Ampli-Sens (ЦНИИ эпидемиологии, Москва), тест-системы для диагностики трихомоноза (Институт молекулярной генетики, Москва). ПЦР ставили в лаборатории молекулярной диагностики Института молекулярной генетики. Микрофотографирование проводили с использованием цифровой фотокамеры Webbers Myscope 300M, электронного микроскопа просвечивающего типа ЭМВ 100Л (х 10 000), применяя метод отпечатков. Всего было проведено более 700 различных исследований. 18 Российский медицинский журнал У обследованных больных с трихомонозом и онкологическим заболеванием наблюдается изменение гематологических показателей (см. таблицу), что возникает как основное проявление патологического воздействия опухоли, а также может обнаруживаться в процессе терапии [7]. При снижении показателей красной крови, лимфоцитов и повышении показателей лейкоцитарного звена в периферической крови была обнаружена T. vaginalis, что в данном случае отражает возможность проникновения трихомонад в кровь, являясь частным случаем паразитемии (но это не трихомонадный сепсис!). Сепсис развивается в случае не только присутствия возбудителя в крови, но и его активного размножения и патологического воздействия на организм, что приводит к развитию синдрома системной воспалительной реакции, диагностируемой по определенным критериям. При обычном просмотре мазков крови T. vaginalis трудноразличима среди форменных элементов крови, особенно при изменении типичной формы, мимикрии в условиях иммунной реакции организма. На рис. 1 (на вклейке) показана типичная форма T. vaginalis среди пойкилоцитов, выделенная в мазке крови у больной с инвазивным протоковым раком левой молочной железы и сопутствующим СПОМТ, поликистозом яичников после гамматерапии. Микроскопически выделенные трихомонады были подтверждены всем комплексом лабораторных методов. Хрихомонады, попадая в несвойственное для себя место обитания - периферическую кровь, изменяют свое типичное морфологическое строение, переходя в атипичные формы. Рис. 2 (на вклейке) отражает картину крови у больной раком яичников в сочетании с миомой матки и полипом эндометрия. На фоне клеточных элементов крови заметна цистоподобная форма трихомонады. Представленная округлая форма возбудителя, равномерно окрашенная, хорошо отличима от нейтрофила и моноцита, у которых присутствуют характерные для данных клеток ядра. Наличие паразитемии было подтверждено всем комплексом лабораторных методов. Рис. 3 (на вклейке) отражает огромные адаптивные возможности трихомонад и длительную выживаемость в условиях макроорганизма. Представлен мазок крови больной с трихомонозом и мета-стазирующим раком тела матки (основной диагноз) после внутриполостной гамматерапии. На фоне пойкилоцитов заметна округлая форма трихомонады, ядро четко не просматривается, трихомонада не окрасилась и выглядит блестящей. Выраженная зона дифракции света вокруг формы свидетельствует об изменении физико-химических свойств оболочки, что и определяет адаптацию этих форм возбудителя. Появление подобных округлых форм трихомонад, плохо окрашивающихся, наблюдается и в мазках, взятых со слизистых оболочек гениталий, на фоне типичных форм возбудителя. На рис. 4 (на вклейке) представлен мазок из влагалища больной с миомой матки, железисто-кистозной гиперплазией эндометрия и аднекситом. Наличие трихомо-над в крови было подтверждено путем исследования крови ферментативным методом, культивированием, нРИФ. Чтобы отличить возбудителя от клеток крови была разработана методика, согласно которой трихомонады выделялись из крови. Экспериментально разработанная методика, включающая гемолиз форменных элементов крови с использованием 1% раствора ферментов пепсина или трипсина [3], позволяла выявлять трихомонады из ферментативно гемолизированной крови, в которой возбудитель сохраняется благодаря наличию на поверхности клетки большого количества антитрипсина, обеспечивающего защиту от протеолитических ферментов [4]. На рис. 5 (на вклейке) показана округлая форма трихомонады на фоне начала ферментативного гемолиза клеток крови, выделенная от больной раком тела матки с поликистозом яичников. У представленной на рис. 5 (см. вклейку) клетки трихомонады хорошо выражена оболочка, защищающая и от ферментативного разрушения. Трихомонады, выделенные из крови, были идентифицированы комплексом лабораторных методов у 74,55% онкологических больных. Идентификацию проводили путем культивирования ферментативно разрушенной и цельной крови с последующим выделением чистой культуры трихомонад. Только в 29,27% случаев при первичном посеве гемолизированной крови в выделенных чистых культурах трихомонад наблюдались типичные формы T. vaginalis (рис. 6 на вклейке). В остальных случаях в посевах выделялись лишь единичные типичные клетки возбудителя (рис. 7 на вклейке) на фоне клеток трихомонад с измененными морфологическими свойствами (рис. 8 на вклейке). Для идентификации таких культур проводили серийные пересевы на обогащенную среду Тераса; в некоторых случаях требовалось проведение до 10 пассажей на питательные среды, что приводило к реверсии атипичных форм и размножению типичных клеток T. vaginalis. Культуральный анализ крови с выделением форм трихо-монад отражен на рис. 9 (на вклейке). После исследования крови микроскопическим, ферментативным методом был сделан посев крови больных с онкологическими заболеваниями на обогащенную среду Тераса. Через 6 сут культивирования выявляли единичные типичные подвижные трихомонады на фоне округлых малоподвижных клеток. После четырех серийных пересевов таких культур наблюдали увеличение количества грушевидных форм трихомо-над. Выделенные культуры трихомонад были подтверждены методами нРИФ и ПЦР. В большинстве случаев (74,55%) трихомонады были выявлены из цельной и ферментативно разрушенной крови при помощи нРИФ. Исследование методом нРИФ показало, что типичные формы T. vaginalis проявляли очень яркое, особенно по краям и в центре клетки, светло-зеленое свечение (рис. 10 на велейке), измененные формы трихомонад также проявляли люминесцентное свечение, но менее яркое и равномерное. Такой вид флюоресценции объясняется наличием совершенно иных биохимических и антигенных свойств у атипичных форм T. vaginalis. У 29,09% обследованных методом нРИФ в крови обнаруживали в среднем 7,2 клетки трихомонады в поле зрения, а у остальных онкологических больных с трихомонозом в крови при просмотре более 10 полей зрения обнаруживали единичные клетки возбудителя (в среднем 1,6 клетки в поле зрения). Методом нРИФ обследовали все выделенные из крови культуры трихомонад, которые при этом были подтверждены. В контрольной группе при исследовании методом нРИФ специфического свечения, говорящего о наличии трихомонад, в мазках крови не наблюдали. При исследовании крови методом ПЦР трихомонады не выявлялись. ПЦР давала положительные результаты только после предварительного культивирования крови, выделения чистой культуры T. vaginalis и постановки реакции с культуральным осадком. Пробы крови, подтвержденные на наличие трихомонад методом нРИФ, были также верифицированы в виде чистых культур типичных форм трихомонад методом ПЦР в 75,61% случаев. При обследовании 85 женщин в возрасте от 20 до 62 лет (средний возраст 39,9 года) с ВЗОМТ без онкологического заболевания с целью определения T. vaginalis на слизистых оболочках гениталий и в крови, было установлено, что трихомонады в крови обнаруживались, но лишь в единичных случаях и в виде единичных клеток, как правило у больных, с отягощенным гинекологическим анамнезом и наличием нескольких эпизодов трихомоноза. Проведенные исследования морфологических особенностей T. vaginalis, выделенных из периферической крови гинекологических больных с онкологическими заболеваниями, определенно указывают на возможность протекания трихомонадной инфекции в форме паразитемии. Проникновение трихомонад в кровь у онкологических № 2, 2013 19 больных происходит за счет выделения возбудителем токсических факторов и ферментов агрессии, а также на фоне проводимой лучевой терапии и химиотерапии, что приводит к выраженным изменениям количества форменных элементов крови, и также показателей системы гемостаза. При микроскопическом исследовании крови трихомона-ды трудноразличимы среди клеток крови, имеют сходство особенно с лимфоцитами. Для выделения трихомонад из крови необходимо проведение гемолиза форменных элементов крови. Идентификацию трихомонад, выделенных из крови, проводят с использованием культурального метода. Выделение из крови культур нетипичных форм T. vaginalis указывает на высокие адаптивные способности таких форм возбудителя. Для обнаружения типичных T. vaginalis среди атипичных культур, выделенных из крови, требуется проведение до 10 пересевов возбудителя на новые питательные среды. Метод нРИФ позволяет дифференцировать типичные и измененные формы T. vaginalis и может использоваться в качестве экспресс-диагностики нетипично протекающей трихомонадной инфекции.
×

About the authors

J. G Moreva

The Ivanovo state medical academy

Email: morevash@mail.ru

M. M Vasiliyev

The state research center of dermatovenerology and cosmetology of Rosmedtechologii

V. P Saschenko

The department hospital at the railroad station Ivanovo of"RGD", Ivanovo

A. Yu Mironov

The I.M. Sechenov first Moscow medical university

References

  1. Васильев М.М. Особенности клиники мочеполового трихомониаза, совершенствование диагностики и лечения: Автореф. дис.. д-ра мед. наук. М.; 1990.
  2. Вейнеров И.Б., Рожинский Л.М. Болезни мочеполовых органов у мужчин. Киев; 1961.
  3. Гарасько Е.В., Морева Ж.Г. Способ выявления простейших в периферической крови. Патент 2262104, С 2, G 01, N 33/48. М.; 2005.
  4. Трихомониаз мужчин, женщин и детей. Клименко Б.В., Авазов Э.Р., Барановская В.Б. и др. СПб.; 2001.
  5. Пойзнер Б.С. Трихомониаз. Томск; 1960.
  6. Семенов П.П., Семенов В.П. Трихомонадные поражения мочеполовых органов человека. Л.; 1972.
  7. Стуклов Н.И. Клиническая лабораторная диагностика. 2010; 1: 24-8.
  8. Танков Ю.П., Концевых Е.В., Князева Т.Ю. Вестник последипломного медицинского образования. 2002; 2: 22-4.
  9. Терас Ю.Х. Вестник дерматологии и венерологии. 1960; 9: 42-5.
  10. Хрущева Е.А., Кряжева В.И. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1951; 6: 502-3.
  11. Чеботарев В.В., Гоннова Л.Н. Российский журнал кожных и венерических болезней. 2000; 4: 60-3.
  12. Alvarez-Sanchez M.E., Avila-Gonzalez L., Becerril-Garcia C. et al. Microb. Pathog. 2000; 28 (4): 193-202.
  13. Costa e Silva Filho F., Breier-Saraiva E.M., Tosta M.X. et al. Mol. Biochem. Parasitol. 1989; 35 (1): 73-8.
  14. De Carli G.A., Brasseur P., da Silva A. C. et al. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1996; 91 (1): 107-10.
  15. El-Gayar E.K, Rashwan M.F. J. Egypt. Soc. Parasitol. 2007; 37 (2): 623-30.
  16. Fichorova R.N. J. Reprod. Immunol. 2009; 83 (1-2): 185-9.
  17. Fiori P.L., Rappelli P., Addis M.F. et al. Microb. Pathog. 1996; 20 (2): 109-18.
  18. Fiori P.L., Rappelli P., Addis M.F. et al. Infect. Immun. 1997; 65 (12): 5142-8.
  19. Hees E. Gynecol. Obstet. 1937; 34: 191-3.
  20. Yap E.H., Ho T.H., Chan Y.C. Genitourin. Med. 1995; 71 (6): 402-4.
  21. Lehker M., Sweeney D. Sex. Transmitt. Infect. 1999; 75 (4): 231-8.
  22. Lubick K.J., Burgess D.E. Infect. Immun. 2004; 72 (3): 1284-90.
  23. Misra J.S., Singh U. Diagn. Cytopathol. 2006; 34 (3): 184-7.
  24. Petrin D., Delgaty K. Clin. Microbiol. Rev. 1998; 11 (2): 300-17.
  25. Rosset Iveli, Tasca T., Tessele P. et al. Parasitol. Res. 2002; 88 (4): 356-9.
  26. Sayed el-Ahl S.A., el-Wakil H.S., Kamel N.M. et al. J. Egypt. Soc. Parasitol. 2002; 32 (1): 167-78.
  27. Vargas-Villarreal J., Mata-Cardenas B.D., Gonzalez-Salazar F. et al. J. Parasitol. 2003; 89 (1): 105-12.
  28. Wagner O. Zbl. Bakt. Parasit. u. Infekt. 1935; 135: 310-8.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2013 Eco-Vector



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия  ПИ № ФС 77 - 86296 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80632 от 15.03.2021 г
.



This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies