The role of genetic polymorphisms and growth factors in pathogenesis of urgent and mixed urinary incontinence in women



Cite item

Full Text

Abstract

The purpose of study. To analyze genetic polymorphisms of receptors of bladder, structural components of intercellular matrix of urinary excretion organs, molecular biochemical mechanisms of regulation of function of bladder and urethra resulting in urinary incontinency. Materials and methods. The analysis of publication data concerning genetic polymorphisms and molecular biochemical mechanisms of development of urinary incontinence in women. The results. The publication data is presented concerning impact of genetic polymorphisms of receptors of detrusor on development of urgent and mixed urinary incontinency in women. The corresponding molecular genetic and biochemical processes underlying detrusor sphincter dyssynergia in women are considered. Conclusion. The urinary incontinence is a multifactorial pathology developing due to alterations at systemic, organic, tissular and cellular levels. Such growth factors as bFGF, TGFβ, CTGF contribute into pathogenesis of urgent and partially mixed urinary incontinency resulting in intensification of unstripped muscle cohesions of detrusor, obstructive miohypertrophy and fibrosis of bladder wall. The altered adrenalin reactivity of urinary excretion ways plays particular role in pathogenesis of urgent component of urinary incontinence. And vice versa, damage of structure of connective tissue in patients with polymorphism COL1A1 or disorder of molecular biochemical mechanism of action of cytokines TGFβ and CTGF provoke insufficiency of sphincter apparatus of urinary excretion ways. The totality of enumerated mechanisms results in development of stress urinary incontinency. The elaboration of individual approach to selection of treatment method requires consideration of mentioned mechanisms of development of urinary incontinence including form and severity of disease.

Full Text

Н едержание мочи (НМ) - состояние, при котором происходит непроизвольное мочеиспускание. НМ в ряде олучаев являетоя не только медицинокой, но и ооциальной проблемой [1]. По данным зарубежных авторов, раопроотраненнооть недержания мочи ореди женщин составляет 15,7-67%, достигая максимальных показателей в старшей возрастной группе [2-4]. Рао- проотраненнооть оимптомов недержания мочи в РФ у женщин в возраоте от 35 до 75 лет ооотавляет 38,6%, а при пролапсе гениталий достигает 75% [5, 6]. Соглаоно клаооификации Международного общеотва по удержанию мочи (ICS, 1997), оущеотвуют оледующие формы мочевой инконтиненции: стрессовое недержание мочи, ургентное недержание мочи (синдром императивного мочеиопуокания, или гиперактивный мочевой пузырь (ГМП)), смешанное недержание мочи и прочие формы (поотоянное НМ, энурез (в том чиоле ночной) и другие типы НМ). Патогенетическими факторами развития стрессового, ургентного и смешанного НМ являютоя: нарушения нервно-мышечных взаимодействий структур таза, тазового дна и связочного аппарата урогенитального тракта; нейрогенные нарушения на уровне спинального центра мочеиспускания и проводящих путей; автономная ак- тивнооть миовезикальных оплетений детрузора; изменения в рецепторном звене мочевыводящих путей; нарушения в оиотеме внутри- и внеклеточных пооредников рецепторной передачи сигналов [7]. К факторам риока развития НМ относят: возрастной эстрогенный дефицит; травматичные роды; гистерэктомию о последующим пролапсом оводов влагалища; дио- плазию ооединительной ткани в оочетании о пролапоом гениталий; курение, хронические заболевания органов дыхания и хронические запоры, приводящие к повышению внутрибрюшного давления [6, 8, 9]. Считается, что последнее ведет к нарушению нервно-мышечных взаимодействий структур тазового дна [8, 9]. Проио- ходит их микроповреждение, денервация, отмечаютоя дистрофические изменения в офинктерном аппарате мочевыводящих путей. Повышение внутрибрюшного давления наблюдаетоя также при ожирении (индеко маооы тела - ИМТ > 30 кг/м2). При этом распространенность недержания мочи ореди женщин о ожирением может до- отигать 52-67%, т.е. увеличивается в 1,5-6 раз [10]. Вегетативная иннервация мочевыводящих путей ооу- щеотвляетоя парасимпатическим (приводит к оокраще- нию детрузора и раоолаблению внутреннего офинктера уретры) и симпатическим (приводит к сокращению внутреннего сфинктера уретры и расслаблению детрузора) отделами нервной системой. Этиологическим фактором формирования ГМП является преобладание тонического влияния на детрузор параоимпатичеокого звена иннервации. Данная концепция может объясняться нарушениями в рецепторном звене передачи оимпатичеоких импульоов на мочевой пузырь. Наиболее значима для раоолабления и поддержания низкого внутрипузырного давления в фазе наполнения активация адренорецепторов, локализующихся преимущественно в детрузоре. Они относятся к семейству трансмембранных рецепторов, сопряженных о G-белком (G-protein-coupled receptors, GPCRs), активация которых Received 24.05.16 Accepted 21.06.16 запуокает аденилатциклазный каокад реакций и дальнейшие внутриклеточные изменения. Рядом иооледо- вателей подтверждена ассоциация между полиморфизмом гена адренорецепторов и развитием ГМП, причем данная корреляция обнаружена в различных этничеоких группах и достигает 50% [11-13]. Мутантный адрено- рецептор имеет десятикратное онижение чувствительности (сродства) к норадреналину, играющему роль нейромедиатора оимпатичеокой нервной оиотемы, что ведет к гиперрефлекоии детрузора и императивному НМ [14-17]. На оегодняшний день корреляция между ожирением и повышенным риоком развития НМ трактуетоя как оледотвие повышения внутрибрюшного давления и нарушения иннервации и прочнооти мышц и овязочного аппарата тазового дна [6, 7, 18]. Но благодаря иооледова- ниям в облаоти геномики и протеомики отало возможно обооновать единые пути патогенеза на внутри- и внеклеточном уровне при НМ на фоне ожирения. НМ ассоциируется со склонностью к избыточной маоое тела, ожирению и развитию оахарного диабета 2-го типа вследствие нарушения метаболизма в виоце- ральной жировой ткани и развития иноулинорезиотент- нооти [19-21]. Показано, что при ожирении наблюдает- оя гипероимпатикотония, в том чиоле на клетки жировой ткани, что обусловливает повышенную экспрессию и синтез цитокина интерлейкина-6 (IL-6) [22]. При этом о увеличением количеотва жировой ткани повышаетоя оывороточная концентрация IL-6. Роль указанного цитокина IL-6 в патогенезе ГМП заключается в индукции им экспрессии белков межклеточных щелевых контактов [23]. В результате происходит увеличение количества «оцепленных» соседних гладкомышечных клеток и повышаетоя проведение холинер- гичеоких отимулов параоимпатичеоких тазовых нервов, что приводит к миогенной гиперактивнооти мышечных волокон и гиперрефлекоии детрузора. Таким образом, императивное НМ развивается вследствие снижения активности симпатической и усиления роли парасимпатической адренергической регуляции детрузора, изменений в рецепторном и постре- цепторном путях передачи сигнала, а также при участии внеклеточных пооредников (IL-6). Вторым механизмом, приводящим к повышению плотнооти «оцепленных» гладкомышечных клеток и оказывающим влияние на сократительную активность детрузора, является повышенная экспрессия гена ла- минина-1 (LAMC1). Данный адгезивный гликопротеин являетоя ключевым компонентом базальных мембран клеток, в том чиоле гладкомышечных клеток мочевого пузыря. Усиление клеточной адгезии при повышении индукции синтеза ламинина потенцирует активность миовезикальных оплетений детрузора, что приводит к повышению автономной активности и возникновению ГМП [24]. Третий механизм развития ургентного НМ включает повышенную экспрессию основного фактора роста фиброблаотов (basic fibroblast growth factor - bFGF) клетками уротелия [25]. bFGF активирует оигнальные пути ERK (extracellular signal-regulated kinase) и Wnt/p- катенин в гладкомышечных клетках и фиброблаотах Обзоры стенки мочевого пузыря. Это обусловливает индукцию экспрессии белков межклеточных щелевых контактов на поверхности данных клеток [26]. Происходит закономерное усиление «сцепления» гладкомышечных клеток мочевого пузыря и запускается патологический механизм гиперрефлексии детрузора в ответ на тонические парасимпатические стимулы. За счет этого не происходит нормального физиологического расслабления мочевого пузыря в фазу наполнения, что приводит к императивному НМ. Еще одним фактором, участвующим в патогенезе ургентного НМ, выступает трансформирующий фактор роста в (TGFP). В условиях ишемического повреждения и оксидативного стресса происходит повышение экспрессии TGFPj и TGFP2 в детрузоре и окружающих тканях [27]. Являясь цитокином, он в свою очередь потенцирует экспрессию фактора роста соединительной ткани - CTGF (connective tissue growth factor). Под влиянием CTGF происходит индукция роста и диффе- ренцировки фибробластов и постепенное формирование фиброза стенки мочевого пузыря, а также усиливается пролиферация гладкомышечных клеток детрузора, что приводит к обструктивной миогипертрофии [28]. Указанные изменения вызывают структурную реорганизацию детрузора, нарушение его сократимости и аномальную реактивность на эфферентную тоническую иннервацию. Имеются сообщения и об иной роли TGFP в патогенезе ГМП с позиции ингибирования им экспрессии белков межклеточных щелевых контактов на гладкомышечных клетках детрузора. В экспериментах было показано значительное снижение (до 30% от первоначальной) их экспрессии в условиях микроокружения, насыщенного TGFPj [29]. Это может приводить к редукции щелевых контактов и нарушению формирования функционального синтиция, что обусловливает десинхронизацию сокращений детрузора и функциональные нарушения мочевого пузыря. Таким образом, в основе ургентного НМ могут лежать механизмы, ведущие как к усилению гладкомышечных сцеплений, так и к обструктивной миогипер- трофии, а также фиброзу стенки мочевого пузыря. При стрессовом НМ происходит нарушение сфин- ктерной функции в фазу наполнения мочевого пузыря (ICS, 1998). В основе этого, наоборот, лежит структурная дезорганизация соединительнотканного каркаса периуретральных тканей и париетальной фасции таза. В основе указанных структур преобладает коллаген а1 I типа (Col a1(I)) [30]. Он придает эластичность и механическую прочность и влияет на рост и дифференциров- ку клеток экстрацеллюлярного матрикса. Полиморфизм гена цепи коллагена a1 (COL1A1) приводит к замене гуанина на тимин в некодирующем участке гена, включающем сайт связывания транскрипционного фактора Sp1 (Sp1-binding site polymorphism) [31, 32]. При этом формируется генотип S/s, в котором аллель s лучше связывается с фактором Sp1. Это приводит к повышению синтеза РНК-транскрипта мутантного аллеля по сравнению с аллелем S, что влечет за собой нарушение нормальной структуры и соотношения цепей Col a1(I) и снижение его механических свойств [30]. Недостаточное воздействие/влияние TGFPj на структуру межклеточного вещества вследствие пониженной экспрессии цитокина или дефицита функционально неактивных рецепторов TGFPR1 приводит к снижению экспрессии фактора роста соединительной ткани (CTGF) [33, See comment in PubMed Commons below34]. Происходит замедление роста и дифференцировки фибробла- стов, а также редукция синтеза компонентов межклеточного матрикса. Одновременные активация матриксных металлопротеиназ (MMPs) и ингибирование тканевых ингибиторов MMPs (TIMPs) обусловливают избыточную фрагментацию и дезорганизацию коллагеновых волокон. Нарушение структуры соединительной ткани провоцирует недостаточность сфинктерного аппарата мочевыводящих путей вследствие гипермобильности уретры и/или собственно функциональных нарушений сфинктера мочевого пузыря. Интересен тот факт, что в патогенезе стрессового НМ bFGF играет положительную роль. В условиях травматического повреждения уретрального сфинктера и имеющегося оксидативного стресса происходит активация ферментов деградации комплекса bFGF + ге- парансульфаты межклеточного матрикса. В результате высвобождается и активируется bFGF, оказывающий паракринное влияние на ткани через сигнальный путь JAK-STAT (Janus kinase-Signal Transducer and Activator of Transcription protein) [35]. Данный каскад реакций запускает транскрипцию генов факторов роста, цитокинов и антиапоптотических белков Bcl-2 (B-cell lymphoma 2) и Bcl-xl (B-cell lymphoma-extra large), что приводит к стимуляции ангиогенеза и дифференцировки гладкомышечных клеток из стволовых и улучшению сократительной функции уретрального сфинктера. Подобный эффект дает фактор роста эндотелия сосудов - VEGF (vascular endothelial growth factor). Его па- ракринные эффекты в виде активации сигнального пути ERK1/2 и индукции транскрипции генов c-Fos и c-Myc приводят к синтезу факторов транскрипции (в том числе транскрипционного фактора p53), что обеспечивает экспрессию генов пролиферации клеток [36, 37]. Происходит стимуляции ангиогенеза, роста и миогенной дифференцировки клеток, регенерирование нервных волокон и улучшение функции сфинктера уретры [35]. Данный подход может иметь клиническое значение для разработки клеточной терапии для коррекции стрессового НМ [37, 38]. Таким образом, в патогенез развития НМ вносят вклад структурные и функциональные изменения мочевого тракта как на органном, так и на тканевом, рецепторном и молекулярно-биохимическом уровнях. При этом значимую роль в развитии ургентного и смешанного НМ играет измененная адренореактивность мочевыводящих путей. С учетом указанных данных необходим поиск специфических предикторов развития ургентного и смешанного НМ для разработки индивидуального подхода к выбору метода лечения и его эффективности. Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
×

About the authors

Tatyana Yu. Smolnova

The A.E. Evdokimov Moscow state medical stomatological university; The I.M. Sechenov first Moscow state medical university of Minzdrav of Russia

Email: smoltat@list.ru
doctor of medical sciences, associate professor of chair of reproductive medicine and surgery of the A.E. Evdokimov Moscow state medical stomatological university; senior research worker of department of operative gynecology the academician V.I. Kulakov research center of obstetrics, gynecology and perinatology of Minzdrav of Russia 127473, Moscow

D. M Lukyanova

The I.M. Sechenov first Moscow state medical university of Minzdrav of Russia

119992, Moscow, Russian Fedration

References

  1. Gray M. Stress urinary incontinence in women. J. Am. Acad. Nurse Pract. 2004; 16(5): 188-90, 192-7.
  2. Nygaard I., Barber M.D., Burgio K.L., Kenton K., Meikle S., Schaffer J. et al. Prevalence of symptomatic pelvic floor disorders in US women. JAMA. 2008; 300(11): 1311-6.
  3. Burgio K.L., Matthews K.A., Engel B.T. Prevalence, incidence and correlates of urinary incontinence in healthy, middle-aged women. J. Urol. 1991; 146(5): 1255-9.
  4. Greer W.J., Richter H.E., Bartolucci A.A., Burgio K.L. Obesity and pelvic floor disorders: a systematic review. Obstet. Gynecol. 2008; 112 (2 Pt. 1): 341-9.
  5. Пушкарь Д.Ю. Диагностика и лечение сложных и комбинированных форм недержания мочи у женщин: Автореф. дисс. ... докт. мед. наук. М.; 1996.
  6. Смольнова Т.Ю., Буянова С.И., Савельев С.В., Петрова В.Д. Дисплазия соединительной ткани - как одна из возможных причин недержания мочи у женщин с пролапсом гениталий. Урология. 2001; (2): 25-30.
  7. Hermieu J.F., Le Guilchet T. Genital prolapse and urinary incontinence: a review. J. Med. Liban. 2013; 61(1): 61-6.
  8. Danforth K.N., Townsend M.K., Lifford K., Curhan G.C., Resnick N.M., Grodstein F. Risk factors for urinary incontinence among middle-aged women. Am. J. Obstet. Gynecol. 2006; 194(2): 339-45.
  9. Coyne K.S., Kaplan S.A., Chapple C.R., Sexton C.C., Kopp Z.S., Bush E.N. et al. Risk factors and comorbid conditions associated with lower urinary tract symptoms: EpiLUTS. BJU Int. 2009; 103(Suppl. 3): 24-32.
  10. Saadia Z. Effect of age, educational status, parity and BMI on development of urinary incontinence - a cross sectional study in Saudi population. Mater. Sociomed. 2015; 27(4): 251-4.
  11. Ferreira C.E., Fonseca A.M., Silva I.D., Girão M.J., Sartori M.G., Castro R.A. et al. The relationship between the Trp 64 Arg polymorphism of the beta 3-adrenoceptor gene and idiopathic overactive bladder. Am. J. Obstet. Gynecol. 2011; 205(1): 82.e10-4.
  12. Honda K., Yamaguchi O., Nomiya M., Shishido K., Ishibashi K., Takahashi N. et al. Association between polymorphism of beta3-adrenoceptor gene and overactive bladder. Neurourol. Urodyn. 2014; 33(4): 400-2.
  13. Nowakowski L., Kulik-Rechberger B., Wrobel A., Rechberger T. Overactive bladder - a new insight into the pathogenesis of its idiopathic form. Ginekol. Pol. 2012; 83(11): 844-8.
  14. Arner P., Hoffstedt J. Adrenoceptor genes in human obesity. J. Intern. Med. 1999; 245(6): 667-72.
  15. Aizawa N., Homma Y., Igawa Y. Effects of mirabegron, a novel β3-adrenoceptor agonist, on primary bladder afferent activity and bladder microcontractions in rats compared with the effects of oxybutynin. Eur. Urol. 2012; 62(6): 1165-73.
  16. Game X., Rischmann P., Arnal J.F., Malavaud B. Nitric oxide pathway and female lower urinary tract. Physiological and pathophysiological role. Prog. Urol. 2013; 23(11): 926-35.
  17. Ho M.H., Bhatia N.N., Khorram O. Physiologic role of nitric oxide and nitric oxide synthase in female lower urinary tract. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2004; 16(5): 423-9.
  18. Osborn D.J., Strain M., Gomelsky A., Rothschild J, Dmochowski R. Obesity and female stress urinary incontinence. Urology. 2013; 82(4): 759-63.
  19. Dunajska K., Lwow F., Tworowska U., Jedrzejuk D., Milewicz A. Relationship of beta(3)-adrenergic receptor polymorphism with metabolic syndrome and oxidative stress parameters in postmenopausal women. Endokrynol. Pol. 2007; 58(3): 201-6.
  20. Inukai T., Tayama K., Inukai Y., Matsutoma R., Takebayashi K., Aso Y. et al. Clinical features of a polymorphism of the beta3-adrenergic receptor gene in patients with type 2 diabetes mellitus - a study using a pin-point sequencing method. Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes. 2001; 109(7): 386-8.
  21. Pierola J., Barcelо A., de la Pena M., Barbé F., Soriano J.B., Sánchez Armengol A. et al. beta3-Adrenergic receptor Trp64Arg polymorphism and increased body mass index in sleep apnoea. Eur. Respir. J. 2007; 30(4): 743-7.
  22. Zhang W., Mottillo E.P., Zhao J., Gartung A., VanHecke G.C., Lee J.F. et al. Adipocyte lipolysis-stimulated interleukin-6 production requires sphingosine kinase 1 activity. J. Biol. Chem. 2014; 289(46): 32178-85.
  23. Heinrich M., Oberbach A., Schlichting N., Stolzenburg J.U., Neuhaus J. Cytokine effects on gap junction communication and connexin expression in human bladder smooth muscle cells and suburothelial myofibroblasts. PLoS One. 2011; 6(6): e20792.
  24. Chen B., Wen Y., Zhang Z., Wang H., Warrington J.A., Polan M.L. Menstrual phase-dependent gene expression differences in periurethral vaginal tissue from women with stress incontinence. Am. J. Obstet. Gynecol. 2003; 189(1): 89-97.
  25. Li K., Yao J., Sawada N., Kitamura M., Andersson K.E., Takeda M. β-Catenin signaling contributes to platelet derived growth factor elicited bladder smooth muscle cell contraction through up-regulation of Cx43 expression. J. Urol. 2012; 188(1): 307-15.
  26. Imamura M., Negoro H., Kanematsu A., Yamamoto S., Kimura Y., Nagane K. et al. Basic fibroblast growth factor causes urinary bladder overactivity through gap junction generation in the smooth muscle. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2009; 297(1): 46-54.
  27. Azadzoi K.M., Chen B.G., Radisavljevic Z.M., Siroky M.B. Molecular reactions and ultrastructural damage in the chronically ischemic bladder. J. Urol. 2011; 186(5): 2115-22.
  28. Juan Y.S., Chuang S.M., Lee Y.L., Long C.Y., Wu T.H., Chang W.C. et al. Green tea catechins decrease oxidative stress in surgical menopause-induced overactive bladder in a rat model. BJU Int. 2012; 110(6 Pt. B): 236-44.
  29. Neuhaus J., Heinrich M., Schwalenberg T., Stolzenburg J.U. TGF-beta1 inhibits Cx43 expression and formation of functional syncytia in cultured smooth muscle cells from human detrusor. Eur. Urol. 2009; 55(2): 491-7.
  30. Han L., Wang L., Wang Q., Li H., Zang H. Association between pelvic organ prolapse and stress urinary incontinence with collagen. Exp. Ther. Med. 2014; 7(5): 1337-41.
  31. Skorupski P., Krоl J., Starega J., Adamiak A., Jankiewicz K., Rechberger T. An alpha-1 chain of type I collagen Sp1-binding site polymorphism in women suffering from stress urinary incontinence. Am. J. Obstet. Gynecol. 2006; 194(2): 346-50.
  32. Sioutis D., Economou E., Lambrinoudaki I., Tsamadias V., Creatsa M., Liapis A. et al. Sp1 collagen I A1 polymorphism in women with stress urinary incontinence. Int. Urogynecol. J. 2011; 22(7): 835-9.
  33. Guo C., Kaneko S., Sun Y., Huang Y., Vlodavsky I., Li X. et al. A mouse model of urofacial syndrome with dysfunctional urination. Hum. Mol. Genet. 2015; 24(7): 1991-9.
  34. Chen B., Yeh J. Alterations in connective tissue metabolism in stress incontinence and prolapse. J. Urol. 2011; 186(5): 1768-72.
  35. Oh S.H., Kim I.G., Lee J.Y., Lee J.Y., Lee J.H. Bioactive porous beads as an injectable urethral bulking agent: their in vitro evaluation on smooth muscle cell differentiation. Tissue Eng. Part A. 2011; 17(5-6): 655-64.
  36. Li G.Y., Zhou F., Gong Y.Q., Cui W.S., Yuan Y.M., Song W.D. et al. Activation of VEGF and ERK1/2 and improvement of urethral function by adipose-derived stem cells in a rat stress urinary incontinence model. Urology. 2012; 80(4): 953.e1-8.
  37. Zucchi E.V., Sartori M.G., Jarmy-Di Bella Z.K., da Silva I.D., Rodrigues de Lima G., Girão M.J. Expression of vascular endothelial growth factor in the lower urinary tract in rats after castration and estrogen administration. Menopause. 2006; 13(3): 500-5.
  38. Liu G., Wang X., Sun X., Deng C., Atala A., Zhang Y. et al. The effect of urine-derived stem cells expressing VEGF loaded in collagen hydrogels on myogenesis and innervation following after subcutaneous implantation in nude mice. Biomaterials. 2013; 34(34): 8617-29.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2016 Eco-Vector



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия  ПИ № ФС 77 - 86296 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80632 от 15.03.2021 г
.



This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies