The idle possibilities of laboratory diagnostic under treatment of patients with drug resistant tuberculosis



Cite item

Full Text

Abstract

The article presents analysis of publications’ data related to problem of implementation of personified treatment of patients with tuberculosis. This kind of treatment is conditioned by fast development and propagation of drug resistance of M.tuberculosis and by complexity of selecting effective regimen of treatment of these patients. The technical possibilities are demonstrated suitable for implementation of such approach. The directions are determined concerning additional research in area of evaluation of impact effectiveness and pharmacokinetic parameters for large specter of anti-tuberculosis pharmaceuticals, agent drug resistance to them and genetic causation of development of negative side-reactions to chemotherapy.

Full Text

Б орьба с туберкулезом (ТБ) как социально значимым заболеванием по определению ООН относится к приоритетным задачам человечества [1]. В последнее десятилетие важность решения этой задачи повысилась, что обусловлено высоким распространением возбудителя с множественной лекарственной устойчивостью (ТБ с МЛУ), появлением туберкулеза, вызванного возбудителем с широкой лекарственной устойчивостью (ТБ с ШЛУ), вспышками ТБ среди растущего числа ВИЧ- инфицированных людей, а также повышением мобильности населения [2]. Несмотря на то что затрачиваются значительные средства и имеются научные достижения Reviews в этой области, эффективность лечения больных ТБ практически не повышается [3]. Одной из причин недостаточно высокой эффективности лечения больных ТБ в настоящий период является распространение инфекции с полирезистентностью к противотуберкулезным препаратам (ПТП) на фоне возрастания числа случаев с быстрым прогрессированием процесса [4, 5]. Другой причиной является отсутствие возможности соблюдения оптимальных (стандартных) режимов лечения в силу высокой частоты побочных реакций на ПТП [6]. Свой вклад вносит вынужденная длительность приема (до 24 мес) противотуберкулезных препаратов, обладающих токсичностью и истощающих репаративные способности организма больного. Наиболее частыми и серьезными являются лекарственные поражения печени, при которых фтизиатрам приходится не только менять режим приема препаратов, но и отказываться от применения наиболее эффективных препаратов по отношению к микобактериям ТБ. Проявления гепатотоксичности могут варьировать от бессимпомного повышения активности сывороточных трансаминаз до развития тяжелого гепатита, заканчивающегося смертельным исходом [7]. Лекарственно-индуцированное поражение печени при ТБ развивается у 26,8% больных в течение первых 2-8 нед в интенсивной фазе противотуберкулезной терапии [8], его частота выше у больных с сопутствующими заболеваниями печени [9] и достигает 88,5% при сопутствующем хроническом вирусном гепатите [10]. У больных ТБ с лекарственноустойчивым возбудителем, как правило, имеется целый ряд сопутствующих хронических заболеваний (гастриты и гастродуодениты, язвенная болезнь, алкоголизм, наркомания, а также ВИЧ-инфекция), что часто сопровождается различными видами патологии печени [11, 12]. Частота распространения ТБ среди больных циррозом печени многократно выше, чем в общей популяции [13]. В настоящее время гепатопротекторы назначаются эмпирически, и в условиях повышенной медикаментозной нагрузки во время химиотерапии они зачастую оказываются недостаточно эффективными [14, 15]. Длительный и неадекватный подбор гепатопротекторов в этих условиях ведет к повышению риска летальности таких больных, особенно на фоне приема высоких доз ПТП. В Российской Федерации ТБ является основной причиной смертности от инфекционных заболеваний (11,3 случая на 100 тыс. населения в 2013 г.) [16]. Несмотря на стабилизацию показателя заболеваемости, сохраняется высокий уровень остро прогрессирующих и распространенных форм ТБ легких, и все большее распространение получает ТБ с МЛУ/ШЛУ. Лечение таких больных длится более 18 мес, проходит особо тяжело, и оно чрезвычайно чувствительно к временному фактору диагностики и ее информативности [17]. На сегодня эффективность лечения таких больных не превышает 35-40%, и они представляют серьезную эпидемиологическую опасность для окружающих в силу массивного и стойкого бактериовыделения, длящегося, как правило, полгода и более [18]. Из-за низкой эффективности схем лечения при ТБ с МЛУ фтизиатры в ряде случаев назначают режимы, включающие повышенные дозы препаратов, что ведет к нежелательным побочным эффектам на фоне длительной терапии и соответственно к многочисленным отказам от лечения. По этой же причине в последнее время клиницистам разрешено использовать дополнительные антибактериальные препараты, которые обладают противотуберкулезным потенциалом, однако их клиническая эффективность не вполне доказана. Например, карбопенемы в международной практике и в нашей стране в настоящее время рассматриваются как препараты выбора при ТБ с ШЛУ [19, 20]. Сульфаниламиды (ко-тримоксазол) активно изучаются как дополнительный ресурс в лечении больных ТБ с МЛУ/ ШЛУ и назначаются в высоких дозировках [21]. В определенных случаях применение таких препаратов дает положительный эффект, как например применение ко- тримоксазола или меропенема с клавулановой кислотой при добавлении его в схемы лечения больных ТБ с МЛУ и ВИЧ-инфекцией [22, 23]. Однако их эмпирическое назначение не всегда завершается эффективной терапией [24] , что можно объяснить неизвестной исходной чувствительностью к ним возбудителя. Таким образом, становится понятным, что в случае с лекарственно-устойчивым ТБ режимы лечения, сформированные по аналогии с теми, которые рассчитаны на излечение больных с лекарственно-чувствительными формами возбудителя, не обладают должной эффективностью и стандартизация этих режимов не дает ожидаемого эффекта. Необходимо перейти от эмпирического назначения лечения ТБ с МЛУ/ШЛУ к более обоснованному - персонифицированному на основе максимально широкой информации как о возбудителе, так и о пациенте, позволяющему учитывать все возможности для повышения эффективности терапевтических мероприятий. Решение задачи о персонализации режимов лечения вполне достижимо и может быть получено на основе современных лабораторных методов исследований. Определение степени лекарственной устойчивости возбудителя на основе минимальных ингибирующих концентраций (МИК). Количественная оценка степени лекарственной устойчивости/чувствительности МБТ позволяет более обоснованно назначать высокие дозы препаратов, а также с большей вероятностью предсказывать результаты влияния перекрестной устойчивости внутри группы препаратов. Например, целесообразность применения высоких доз изониазида [19, 25, 26] вполне оправданна, если обнаружена устойчивость штамма к нему при МИК, равной 2 мкг/мл. В этом случае внутривенное назначение препарата с усилением приема per os при общей суточной дозе 900 мг приводит к его системной концентрации более 10 мкг/мл, что при среднем периоде полувыведения 2,5-3 ч поддержит его терапевтическую концентрацию в течение 9 ч. Напротив, при МИК более 10 мкг/мл назначение изониазида в указанном режиме не приведет к терапевтической концентрации препарата и не даст клинического эффекта. Из практики известно, что среди изониазид-устойчивых штаммов МБТ около 30% имеют устойчивость, близкую к критической (МИК в пределах 2-4 мкг/мл). Поэтому при получении из лаборатории положительного ответа о наличии устойчивости использование высоких доз изо- ниазида может приводить к хорошему терапевтическому эффекту в ряде случаев. Аналогично выгдядит ситуация с назначением мок- сифлоксацина при наличии устойчивости МБТ к офлок- сацину. В 70% случаев степень этой устойчивости (МИК 2 мкг/мл) остается в пределах клинической эффективности при рекомендованной суточной дозе офлоксацина. Активность моксифлоксацина в 4-8 раз выше таковой офлоксацина, что позволяет преодолеть критическую концентрацию, исходно определенную к офлоксацину. Именно такая ситуация привела к формированию режима № 5 по классификации ВОЗ, предназначенного для лечения больных ТБ с ШЛУ [27]. Если устойчивость к офлоксацину превышает 10 мкг/мл, что наблюдается в 20-25% случаев, то добиться преодоления лекарственной устойчивости с помощью моксифлоксацина практически невозможно, что и объясняет случаи неудачи лечения с применением этого препарата больных ТБ с МЛУ/ШЛУ. Расширение спектра препаратов при исследовании лекарственной чувствительности возбудителя. Определение степени лекарственной чувствительности МБТ следует проводить для большего числа препаратов, включая препараты с потенциальным противотуберкулезным действием. В последнее время в практику фтизиатрии для лечения больных ТБ с ШЛУ рекомендуются сульфаниламиды (ко-тримоксазол), карбапенемы (имипенем, меропенем) в сочетании с ингибиторами дегидропептидаз, азолиды (клотримазол, линезолид), пенициллины последнего поколения с ингибиторами бета-лактамаз (амоксиклав с клавулановой кислотой), макролиды (кларитромицин, азитромицин) [22, 28, 29]. Изучение лекарственной чувствительности и формирование режимов лечения с применением этих препаратов в последнее время активно проводится в международной практике [30-32]. Однако применяемые в настоящее время в Российской Федерации (как и за рубежом) тест-системы определения лекарственной чувствительности не затрагивают изучение приведенных выше классов препаратов для МБТ. Разработка методов количественной оценки чувствительности возбудителя к этим препаратам и накопление опыта их использования в клинической практике создают платформу для перехода на молекулярно-генетические экспресс-методы комплексной оценки лекарственной устойчивости/чувствительности возбудителя. Получение более детализированной характеристики возбудителя до старта химиотерапии. Молекулярногенетические методы, основанные на выявлении фрагментов ДНК микобактерий в культуре или диагностическом материале, все шире используются с целью сокращения времени диагностики ТБ с МЛУ/ШЛУ [33]. Однако, как показывает практика, спектр исследуемых генов и характер использования получаемой информации недостаточны для обоснованного назначения эффективных режимов терапии больных ТБ с МЛУ/ШЛУ Как правило, исследуются мутации, свидетельствующие о наличии устойчивости МБТ лишь к ограниченному числу ПТП. В то же время технические возможности молекулярно-генетических методов позволяют анализировать любые мутации генов. Для многих препаратов, которые используют в режимах лечения больных ТБ с ШЛУ/МЛУ, известны гены, изменения в которых могут сопровождаться возникновением устойчивости к этим препаратам [34, 35]. Для современной клинической и лабораторной практики характерен тот факт, что многие методы не предусматривают получение информации о типе и количестве мутаций, хотя такая информация может дать представление о степени лекарственной устойчивости, ее перекрестной реакции с другими препаратами. Например, двойные мутации в генах katG и inhA в 90% случаев приводят к устойчивости к изониазиду с МИК более 16 мкг/мл, а одинарные мутации в генах inhA или ahpC приводят к мутациям, ассоциированным Обзоры с устойчивостью к относительно низким концентрациям данного препарата - с МИК 2-4 мкг/мл. Использование параметров фармакокинетики препаратов. В настоящее время клинические рекомендации, касающиеся доз и периодичности приема ПТП, приводятся на основе усредненных значений параметров фармакокинетики препаратов (максимально достижимая концентрация препарата, период полувыведения и т.д.) [36]. Однако фармакокинетика препарата зависит не только от режима дозирования и способа введения, но и от генотипических и фенотипических особенностей его метаболизма в организме пациента. Активность ферментов метаболизма лекарственных препаратов вследствие полиморфизма кодирующих их генов может различаться в 100 раз и более [37]. Фармакокинетика основного противотуберкулезного препарата - изониазида (и не только его), определяется в первую очередь скоростью его ацетилирования под действием фермента N-ацетилтрансферазы типа 2 (NAT2), различная активность которого кодируется соответствующим геном NAT2 [38, 39]. Аллельные варианты характеризуются различной активностью фермента, а их носителей подразделяют на «быстрых» и «медленных» ацетиляторов [40] в зависимости от сочетания аллелей этого гена [41, 42]. В исследовании, проведенном с участием добровольцев, получавших изониазид в дозе 3,3 мг/кг, медианное время выведения изониазида у медленных и быстрых ацетиляторов составляло соответственно 3,3 и 1,2 ч [43], а в исследовании, проведенном у больных ТБ легких, - 6,4 и 1,8 ч [44]. Высокая и стабильная концентрация в сыворотке крови характерна для медленных ацетилято- ров, низкая - для быстрых. У быстрых ацетиляторов при рекомендованной суточной дозе 0,3 г возможна ситуация, когда не достигается та концентрация ПТП, при которой уверенно ингибируется рост МБТ, или продолжительность насыщения крови препаратом недостаточна для обеспечения терапевтического эффекта. С другой стороны, медленным ацетиляторам с нормальной экс- кретирующей функцией почек нельзя назначать высокие дозы препарата во избежание токсических реакций. Знание типа ацетилирования у больного ТБ с МЛУ/ ШЛУ позволяет дифференцированно назначать высокие дозы препарата, прогнозируя эффективность схемы лечения и ее безопасность. В контексте этого в последнее время в современных руководствах индустриально развитых стран рекомендуется определять персональные параметры фармакокинетики назначаемых препаратов [25] . Проводится активный поиск генетических маркеров типа ацетилирования у представителей разных рас [26, 45, 46]. Предупреждение побочных реакций на основе персональных данных о генетическом полиморфизме генов, участвующих в метаболизме противотуберкулезных препаратов. Повысить эффективность фармакотерапии больных ТБ возможно на основе знания генотипических характеристик пациента. Продукция и элиминация токсических метаболитов ПТП зависят от активности нескольких ферментов, таких как NAT2, цитохром P450 оксидаза (CYP2E1) и глутатион S-трансфераза (GSTM1). Вариации генома в соответствующих локу- сах (NAT2, CYP2E1 и GSTM1) модулируют активность этих ферментов и, таким образом, меняется риск ге- патотоксичности [47-49]. Так, у пациентов с гомозиготным диким генотипом CYP2E1 cl/cl риск развития гепатотоксичности выше, чем у лиц с мутантным алле- Reviews лем с2 (СYP2E1 с1/с2 или с2/с2): 0,20 против 0,09 [50]. У носителей аллеля 857А гена NAT2 по сравнению с носителями аллеля 857G риск развития аллергических и токсико-аллергических реакций втрое выше [44]. Существует связь между типом ацетилирования и частотой возникновения побочных реакций. Медленные ацетиляторы, идентифицированные как по генетическому полиморфизму NAT2, так и по фармакокинетическим параметрам, больше предрасположены к появлению гепатотоксических реакций [51, 52], причем с более тяжелым их течением при ежедневном приеме лекарств [53]. Во всех случаях они проявлялись в ранние сроки (в течение первого месяца лечения) повышением активности трансфераз сыворотки крови и только в 22,2% случаев - клиническими симптомами (диспепсическим, астеновегетативным, гепатомегалией) [54]. Медленные ацетиляторы являются также более проблемными и в плане возникновения нейротоксических реакций [55]. Поражения печени могут протекать как гепатиты и как гепатозы, что обусловлено воздействием различных токсичных метаболитов, и требуют назначения гепато- протекторов с различным механизмом действия. Например, в печени у быстрых ацетиляторов прием изониазида сопровождается накоплением токсичного моноацетил- гидразина в высокой концентрации, который приводит к развитию жирового гепатоза. На экспериментальных моделях поражения печени показано, что при жировом гепатозе наиболее эффективным гепатопротектором был пирацетам, а при гепатите - рибоксин [56]. Накопленные знания в области генотипирования позволяют формировать группы риска возникновения токсических реакций. Учитывая, что гепатотоксическое действие оказывает на только изониазид, но и другие противотуберкулезные препараты (рифампицин, пира- зинамид и др.), знание связи фармакогенетики лекарственного метаболизма других противотуберкулезных препаратов с гепатотоксическими реакциями позволит существенно повысить эффективность коррекции побочного действия противотуберкулезных препаратов. Появится возможность избегать тактики эскалации дозировок назначаемых препаратов второго и третьего ряда, занимающей иногда несколько недель и сопровождающейся ожиданием развития побочных эффектов на протяжении нескольких месяцев. Сегодня существует реальная платформа для перехода от эмпирического лечения больных ТБ с МЛУ/ШЛУ к персонифицированному, позволяющему обеспечить необходимые стартовость, безопасность и длительность терапии, имеющей более высокий потенциал эффективности. Современные возможности лабораторных методов и получаемая с их помощью информация позволяют внести существенные коррективы в подходы к лечению больных ТБ с МЛУ/ШЛУ для повышения его эффективности, используя в том числе и сохраненные репаратив- ные ресурсы организма пациента. Все вышеприведенные принципы достаточно очевидны, однако пока реализуются с трудом, поскольку накопленные знания относятся к разным дисциплинам и не упорядочены. Они также требуют методического и, возможно, биоинформативного сопровождения на пути внедрения в практику.
×

About the authors

Sergey A. Popov

I.M. Sechenov first Moscow state medical university of Minzdrav of Russia

Email: tbcripp@rol.ru
MD, PhD 119992, Moscow, Russia

T. P Sabgayda

The central research institute for health organization and informatics of Minzdrav of Russia

127254, Moscow, Russia

G. N Mozhokina

I.M. Sechenov first Moscow state medical university of Minzdrav of Russia

The research institute of phthisiopulmonology 119992, Moscow, Russia

References

  1. Декларация тысячелетия Организации Объединенных Наций: принята резолюцией 55/2 Генеральной Ассамблеи от 8 сентября 2000 года. Пункт III.19. A/RES/55/2. Available at: http://www.un.org/ru/documents/decl_conv/declarations/summitdecl.shtml (дата обращения: 12.03.2015).
  2. План «Остановить ТБ» для 18 наиболее приоритетных стран Европейского региона ВОЗ, 2007-2015 гг. ВОЗ, Копенгаген; 2008. Available at: http://www.euro.who.int/__data/assets/pdf_file/0006/68181/E91049R.pdf (дата обращения: 12.03.2015).
  3. Global tuberculosis report 2014. Geneva: WHO; 2014. Available from: http://www.who.int/tb/publications/global_report/en/ (accessed: March 26, 2015).
  4. Кибрик Б.С., Мельников В.П., Маковей Ю.В. Особенности диагностики и течения прогрессирующего диссеминированного туберкулеза легких. Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2008; 6: 3-5.
  5. Stoffels K., Allix-Béguec C., Groenen G., Wanlin M., Berkvens D., Mathys V. From multidrug- to extensively drug-resistant tuberculosis: upward trends as seen from a 15-year nationwide study. PLoS One. 2013; 8(5): e63128.
  6. Мишин В.Ю., Чуканов В.И., Григорьев Ю.Г. Побочное действие противотуберкулезных препаратов при стандартных и индивидуализированных режимах химиотерапии. М.: Компьютербург; 2004.
  7. Полунина Т.Е. Лекарственные поражения печени. Лечащий врач. 2005; 3: 8-13.
  8. Меркулов С.А. Лекарственно-индуцированные поражения печени у больных туберкулезом легких: оптимизация лечения и профилактики: Дисc. … канд. мед. наук. Волгоград; 2014.
  9. Мордык А.В. Частота и патогенез неблагоприятных побочных реакций на противотуберкулезные препараты. Вестник современной клинической медицины. 2010; 1: 16-21.
  10. Возненко А.А. Лекарственно-индуцированные поражения печени у больных туберкулезом органов дыхания и пути их преодоления: Дисс. … канд. мед. наук. М.; 2012.
  11. Колпакова Т.А. Осложнения антибактериальной терапии у больных туберкулезом легких с сопутствующими заболеваниями: Дисс. … докт. мед. наук. Новосибирск; 2002.
  12. Тен М.Б. Медико-социальные особенности больных лекарственно-устойчивым туберкулезом: Дисс. … канд. мед. наук. М.; 2005.
  13. Kumar N., Kedarisetty C.K., Kumar S., Khillan V., Sarin S.K. Antitubercular therapy in patients with cirrhosis: challenges and options. World J. Gastroenterol. 2014; 20(19): 5760-72.
  14. Никитин И.Г. Гепатопротекторы: мифы и реальные возможности. Фарматека. 2007; 147(13): 14-8.
  15. Морозов С.Ю. Гепатопротекторы в практике врача-клинициста. РМЖ Независимое издание для практикующих врачей. Болезни органов пищеварения. 2009; 1. Available at: http://www.rmj.ru/articles_6601.htm (дата обращения: 13.03.2015).
  16. Стерликов С.А., ред. Отраслевые и экономические показатели работы в 2012 - 2013 г.г.: Аналитический обзор основных показателей и статистические материалы. М.: РИО ЦНИИОИЗ; 2014.
  17. Пузанов В.А., Пунга В.В., Катулана Н.И., Каунетис Н.В., Полоцкий В.И., Капков Л.П. Роль учреждений здравоохранения в верификации диагноза туберкулеза органов дыхания лабораторными методами. Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2009; 5: 15-21.
  18. Маркелов Ю.М. Особенности туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью и приоритетные мероприятия по ограничению его распространения в Карелии. Вестник современной клинической медицины. 2011; 4(3): 50-6.
  19. ВОЗ. Лечение туберкулёза. Рекомендации. 4-е издание. Женева: ВОЗ; 2011. Available at: http://whqlibdoc.who.int/publications/2011/9789244547830_rus.pdf (дата обращения: 22.03.2015).
  20. Приказ МЗ РФ №951 от 29.19.2014. Об утверждении методических рекомендаций по совершенствованию диагностики и лечению туберкулеза органов дыхания. М.: МЗ РФ; 2014.
  21. Alsaad N., van Altena R., Pranger A.D., van Soolingen D., de Lange W.C., van der Werf T.S. et al. Evaluation of co-trimoxazole in the treatment of multidrug-resistant tuberculosis. Eur. Respir. J. 2013; 42(2): 504-12.
  22. Alsaad N., van der Laan T., van Altena R., Wilting K.R., van der Werf T.S., Stienstra Y. et al. Trimethoprim/sulfamethoxazole susceptibility of Mycobacterium tuberculosis. Int. J. Antimicrob. Agents. 2013; 42(5): 472-4.
  23. Штейнберг Л.Л. Клинико-экономическая оценка применения различных карбапенемов в лечении нозокомиальной пневмонии: Дисс. … канд. мед. наук. М.; 2014.
  24. De Lorenzo S., Alffenaar J.W., Sotgiu G., Centis R., D'Ambrosio L., Tiberi S. et al. Effi cacy and safety of meropenem-clavulanate added to linezolid-containing regimens in the treatment of MDR-XDR-TB. Eur. Respir. J. 2013; 41(6): 1386-92.
  25. Ann M. Loeffler, ed. Drug-Resistant Tuberculosis. A Survival Guide for Clinicians. 2nd ed. San Francisco, University of California; 2011.
  26. Thee S., Detjen A.A., Wahn U., Magdorf K. Isoniazid pharmacokinetic studies of the 1960s: considering a higher isoniazid dose in childhood tuberculosis. Scand. J. Infect. Dis. 2010; 42(4): 294-8.
  27. WHO. Guidelines for the programmatic management of drug-resistant tuberculosis - 2011 update. Geneva: WHO; 2011.
  28. Васильева И.А., Аксенова В.А., Эргешов А.Э., Марьяндышев А.О., Самойлова А.Г., Багдасарян Т.Р. и др. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению туберкулеза органов дыхания с множественной и широкой лекарственной устойчивостью возбудителя. Выпуск 2. М.-Тверь: ООО «Издательство «Триада»; 2014.
  29. Synthesis and biological evaluation of new enantiomerically pure azole derivatives as inhibitors of Mycobacterium tuberculosis. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2009; 19(8): 2203-5.
  30. Cuenca-Estrella M., Gomez-Lopez A., Alastruey-Izquierdo A., Bernal-Martinez L., Cuesta I., Buitrago M.J. et al. Comparison of the Vitek 2 antifungal susceptibility system with the clinical and laboratory standards institute (CLSI) and European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) Broth Microdilution Reference Methods and with the Sensititre YeastOne and Etest techniques for in vitro detection of antifungal resistance in yeast isolates. J. Clin. Microbiol. 2010; 48(5): 1782-6.
  31. van Hal S.J., Chen S.C., Sorrell T.C., Ellis D.H., Slavin M., Marriott D.M. Support for the EUCAST and revised CLSI fluconazole clinical breakpoints by Sensititre® YeastOne® for Candida albicans: a prospective observational cohort . J Antimicrob. Chemother. 2014; 69(8): 2210-4.
  32. Huang T.S., Kunin C.M., Yan B.S., Chen Y.S., Lee S.S., Syu W.Jr. Susceptibility of Mycobacterium tuberculosis to sulfamethoxazole, trimethoprim and their combination over a 12 year period in . J. Antimicrob. Chemother. 2012; 67(3): 633-7.
  33. Попов С.А., Сабгайда Т.П. Основные направления развития лабораторной диагностики туберкулеза (по материалам 42-й международной конференции международного Союза борьбы против туберкулеза и болезней легких, г. Лиль, Франция, 26-30 октября 2011 г.) Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2012; 6: 3-12.
  34. Лабинская А.С., Костюкова Н.Н., Иванова С.М., ред. Руководство по медицинской микробиологии. Частная медицинская микробиология и этиологическая диагностика инфекций. М.: ООО Текан; 2010.
  35. Köser C.U., Veerapen-Pierce R.N., Summers D.K., Archer J.A. Role of mutations in dihydrofolate reductase DfrA (Rv2763c) and thymidylate synthase ThyA (Rv2764c) in Mycobacterium tuberculosis drug resistance. Antimicrob. Agents Chemother. 2010; 54(10): 4522-3.
  36. Guidelines for ATC classification and DDD assignment 2015. Oslo: WHO Collaborating Centre for Drug Statistics Methodology; 2014.
  37. Guengerich F.P. Cytochrome P450: what have we learned and what are the future issues? Drug. Metab. Rev. 2004; 36(2): 159-97.
  38. Vatsis K.P., Martell K.J., Weber W.W. Diverse point mutations in the human gene for polymorphic N-acetyltransferase. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 1991; 88(14): 6333-7.
  39. Berode M., Savolainen H. Occupational exposure to isocyanates and individual susceptibility. Soz. Praventivmed. 1993; 38 Suppl 2: S125-7.
  40. Rao K.V., Mitchison D.A., Nair N.G., Prema K., Tripathy S.P. Sulphadimidine acetylation test for classification of patients as slow or rapid inactivators of isoniazid. Br. Med. J. 1970; 3(5721): 495-7.
  41. Fretland A.J., Devanaboyina U.S., Doll M.A., Zhao S., Xiao G.H., Hein D.W. Metabolic activation of 2-hydroxyamino-1-methyl-6-phenylimidazo[4,5-b]pyridine in Syrian hamsters congenic at the N-acetyltransferase 2 (NAT2) locus. Toxicol. Sci. 2003; 74(2): 253-9.
  42. Zang Y., Zhao S., Doll M.A., States J.C., Hein D.W. Functional characterization of the A411T (L137F) and G364A (D122N) genetic polymorphisms in human N-acetyltransferase 2. Pharmacogenet. Genomics. 2007; 17(1): 37-45.
  43. Peloquin C.A., Jaresko G.S., Yong C.L., Keung A.C., Bulpitt A.E., Jelliffe R.W. Population pharmacokinetic modeling of isoniazid, rifampin, and pyrazinamide. Antimicrob. Agents Chemotherapy. 1997; 41(12): 2670-9.
  44. Мутайхан Ж. Переносимость противотуберкулезных препаратов и индивидуальные характеристики их метаболизма у больных туберкулезом легких с латентно протекающими хроническими вирусными гепатитами и заболеваниями пищеварительного тракта: Дисс. … канд. мед. наук. Новосибирск; 2007.
  45. Johnson J. Pharmacogenetics: Potential for individualized drug therapy through genetics. Trends Genet. 2003; 19(11): 660-6.
  46. Warren R.M., Streicher E.M., Gey van Pittius N.C., Marais B.J., van der Spuy G.D., Victor T.C. et al. The clinical relevance of Mycobacterial pharmacogenetics. Tuberculosis (Edinb). 2009; 89(3): 199-202.
  47. Ramamoorthy A., Liu Y., Philips S., Desta Z., Lin H., Goswami C. et al. Regulation of microRNA expression by rifampin in human hepatocytes. Drug Metab. Dispos. 2013; 41(10): 1763-8.
  48. Kwara A., Cao L., Yang H., Poethke P., Kurpewski J., Tashima K.T. et al. Factors associated with variability in rifampin plasma pharmacokinetics and the relationship between rifampin concentrations and induction of efavirenz. Pharmacotherapy. 2014; 34(3): 265-71.
  49. Roy P.D., Majumder M., Roy B. Pharmacogenomics of anti-TB drugsrelated hepatotoxicity. Pharmacogenomics. 2008; 9(3): 311-21.
  50. Huang Y.S., Chern H.D., Su W.J., Wu J.C., Chang S.C., Chiang C.H. et al. Cytochrome P450 2E1 genotype and the susceptibility to antituberculosis drug-induced hepatitis. Hepatology. 2003; 37 (4): 924-30.
  51. Ohno M., Yamaguchi I., Yamamoto I., Fukuda T., Yokota S., Maekura R. et al. Slow N-acetyltransferase 2 genotype affects the incidence of isoniazid and rifampicin-induced hepatotoxicity. Int. J. Tuberc. Lung Dis. 2000; 4(3): 256-61.
  52. Макарова С.И. Полиморфизм ариламин N-ацетилтрансферазы и его связь с некоторыми распространенными заболеваниями: Дисс. … канд. биол. наук. Новосибирск; 2001.
  53. Суханов Д.С., Иванов А.К. Гепатопротекторная терапия лекарственных поражений печени при туберкулезе органов дыхания: Информационно-методическое письмо. СПб.: Издательство «Тактик-Студио»; 2010.
  54. Соколова Г.Б. Индивидуализированная химиотерапия туберкулеза легких (экспериментально-клиническое исследование): Автореф. дисс. … докт. мед. наук. М.; 2000.
  55. Николаев В.П. Поражения печени, обусловленные изониазидом, и их профилактика (клинико-экспериментальное исследование): Автореф. дисс. … канд. мед. наук. М.; 1987.
  56. Du H., Chen X., Fang Y., Yan O., Xu H., Li L. et al. Slow N-acetyltransferase 2 genotype contributes to anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity: a meta-analysis. Mol. Biol. Rep. 2013; 40(5): 3591-6.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2016 Eco-Vector



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия  ПИ № ФС 77 - 86296 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80632 от 15.03.2021 г
.



This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies