Modern concepts of the epigenetic mechanisms of atopic dermatitis formation

Full Text

Проблема возникновения различных заболеваний является одной из ключевых в современной медицине. Эпицентром исследований последних десятилетий является «скрытая генетика» - эпигенетика. Известны факты, что именно эпигенетические изменения играют важную роль в развитии многих многофакторных заболеваний, которые наследуются как по материнской, так и по отцовской линии, - сердечнососудистых заболеваний, сахарного диабета 2-го типа. злокачественных опухолей, генетических аномалий, шизофрении, аутизма, депрессии, наркозависимости и др. Кожные патологии, такие как атопический дерматит (АД), экзема, псориаз, витилиго, эритематоз и другие, также по праву можно отнести к группе сложных многофакторных заболеваний, в основе которых лежит генетическая предрасположенность. Полиморфизм генов предрасположенности в сочетании с неблагоприятными внутренними и внешними факторами повышает риск развития заболевания. АД является хроническим рецидивирующим воспалительным иммуноопосредованным дерматозом. Заболеваемость этим дерматозом в настоящее время принимает почти эпидемический характер. По данным разных авторов, в развитых странах 10-20% детей и 1-3% взрослых страдают этой болезнью [1-3]. В общей сложности заболеваемость увеличилась и в среднем количество больных АД составляет до 10% населения земного шара. В настоящее время признано, что АД развивается у людей, рожденных с определенным набором генов предрасположенности, которые детерминируют сниженную барьерную функцию кожи и измененный врожденный иммунитет. Следующим этапом патогенеза является воздействие на данный комплекс изменений различных средовых факторов в виде триггеров, аллергенов, инфекций. Реактивность организма обусловлена иммунными механизмами в виде нарушения соотношения гГЫ/г1Ъ2-лимфоцитов в пользу последних, с образованием различных цитокинов и гиперпродукцией IgE, что является ключевым патогенетическим событием. Общий прогноз течения АД основывается на закономерностях ослабления и прекращения заболевания к 30 годам. Тем не менее недавние исследования показали, что значительное количество пациентов старше 30 лет до сих пор страдают АД. Заболевание может длиться на протяжении многих лет, оказывая тем самым неблагоприятное воздействие на физическое и психическое развитие, снижая качество жизни больного и его семьи. Так, на сегодняшний день недостаточно информации в отношении прогноза для больных АД [4-6]. Следует также отметить, что клинические особенности заболевания характеризуются выраженным фенотипическим характером. Для АД в наше время характерны вариабельность клинических проявлений как по сочетанию различных признаков у каждого больного, так и по их выраженности, тенденция к увеличению частоты более тяжелых и торпидных форм заболевания в сочетании с изнурительным зудом и присоединением вторичной инфекции (бактериальной, грибковой или вирусной), иногда приводящих к инвалидизации больного даже в молодом возрасте [7]. Несмотря на имеющиеся успехи в изучении АД, специфическая терапия по- прежнему отсутствует, современные методы лечения не способствуют уменьшению численности больных, а подчас приводит к ятрогенным осложнениям, усугубляющим течение и прогноз болезни. Все это свидетельствует о необходимости постоянного научного поиска новых патогенетических лечебных подходов. Вопросы участия генетических факторов в развитии той или иной кожной патологии, а также влияния генотипа на тяжесть течения, длительность ремиссии и прогноз остаются наименее изученными. Разработка современной концепции молекулярногенетических механизмов патогенеза АД позволит определить в будущем новую стратегию и тактику лечения больных, а генетические и эпигенетические исследования смогут стать основой персонификации лечения, позволяющей в полной мере реализовать принцип «лечить не болезнь, а больного». Последние 50 лет ведутся активные научные исследования в отношении АД на клеточном и молекулярном уровне [8]. Известно, что наследование носит полигенный характер с наличием главного (ведущего) гена, участвующего в реализации наследственной предрасположенности и определяющего поражение кожи, а также дополнительных генов. Пороговый эффект, приводящий к манифестации болезни, достигается при их аддитивном действии под влиянием неблагоприятных триггеров [9, 10]. АД, как известно, имеет сильный генетический компонент с предполагаемой наследуемостью 60% [11] . Было установлено, что риск возникновения атопии у детей существенно выше, если наследственность отягощена по материнской линии, чем по отцовской. По данным норвежских исследователей, АД развивается у 57% детей, если больна мать, и у 46%, если болен отец [12]. В ходе многочисленных исследований последних лет, посвященных изучению процессов эмбрионального развития и образования раковых опухолей, биологи установили, что человеческий геном изменяется на протяжении жизни человека под влиянием внешних факторов. При этом внешние факторы изменяют поведение генов, не влияя на заключенную в них информацию [13, 14]. Согласно современным представлениям, под эпигенетическими процессами понимают наследуемые, стабильные, но потенциально обратимые изменения экспрессии генов, не связанные с изменениями их нуклеотидной последовательности. Изменения экспрессии генов могут быть оценены, в частности, по характеру метилирования ДНК. Суть метилирования ДНК заключается в том, что это химическая модификация, катализируемая ДНК- метилтрансферазами, которая добавляет метильную (CH3) группу к азотистому основанию цитозину в составе CpG-динуклеотида в позиции С5 цитозинового кольца. У человека метилировано около 1% геномной ДНК. 70-80% от всех CpG-динуклеотидов в человеческом геноме метилированы [15]. Иными словами, присоединение или отщепление от ДНК и гистонов определенных химических групп приводит к изменению активности генов, при этом заключенная в них информация сохраняется [16]. Однако богатые CpG участки ДНК, в основном ассоциированные с промоторами генов, называемые CpG-островками, обычно избегают метилирования. Это правило имеет исключения, и некоторые CpG-островки подвергаются метилированию во время развития или в соматических клетках взрослого организма [17, 18]. Метилирование ДНК вне CpG-динуклеотидов встречается в эмбриональных стволовых клетках [19, 20]. Следует отметить, что некоторые гены, экспрессирующиеся в эмбриональном периоде, перестают функционировать к моменту рождения особи. Эпигенетическая информация - это «скрытый слой» наследственности, который управляет многими процессами, начиная от эволюции стволовых клеток, дифференцировки клеток, заканчивая влиянием на процессы старения организма. Метилирование ДНК играет ведущую роль в формировании и поддержании эпигенетической изменчивости - естественного наследственного динамического процесса, определяющего степень активности генов. Профиль метилирования значительно влияет на функциональное состояние генов и стабильно передается в ряду клеточных поколений. В случае изменения эпигенетического статуса наступает дестабилизация генома. Известен тот факт, что вирус, попав в человеческие клетки, может подвергаться метилированию, которое приводит к блокировке транскрипции и дальнейшей элиминации вируса. Возникают предположения, что роль метилирования ДНК как компонента клеточной системы, предназначенной для уничтожения чужой или излишней ДНК (или подавления ее функции), сохраняется, по-видимому, на протяжении всей жизни [21]. Эпигенетические изменения не только являются частью нормального развития или процессов диф- ференцировки, но и могут быть вызваны факторами окружающей среды. Даже во время беременности могут происходить изменения в характере метилирования ДНК в клетках под влиянием триггеров. Все это может привести к модификационной изменчивости плода, вплоть до перепрограммирования в формирующихся половых клетках плода. А в случае сниженной активности ферментов (например, ме- тилентетрагидрофолатредуктаза - MTHFR, играет ключевую роль в метаболизме фолата и метионина) во время беременности усиливается влияние тератогенных и мутагенных факторов внешней среды. Получается замкнутый «эпигенетический» круг. Что касается АД, то работы по изучению метилирования ДНК при этом заболевании остаются немногочисленными. Одно из первых таких исследований проведено в Японии в 2005 г., когда оценивали характер метилирования ДНК у 23 пациентов (9 женщин и 14 мужчин; возраст от 16 до 47 лет) с установленным диагнозом АД. С помощью ПЦР-диагностики в режиме реального времени было впервые продемонстрировано, что у лиц с атопией в сочетании как с высоким уровнем IgE сыворотки крови (группа А), так и с низким (группа В) уровень ДНК-метилтрансферазы-1 (DNMT-1) мРНК в мононуклеарных клетках периферической крови значительно ниже, чем в группе контроля. Данные наблюдения свидетельствуют о возможной связи подавления DNMT-1 с патогенезом рассматриваемого дерматоза, особенно у больных с повышенным уровнем IgE [22]. Предполагается, что гипометилирование ДНК способствует гиперреактивности гГй2-клеток к аллергенам в результате IgE-опосредованной аллергической реакции. Действительно, в некоторых докладах говорится о том, что IL-4-опосредованная продукция IgE B-клетками у пациентов с высоким уровнем сывороточных IgE связана с гипометилированием ДНК в T-клетках [23-26]. Дальнейшее изучение роли метилирования в патогенезе АД и результаты исследования будут способствовать формированию новых взглядов на терапевтические стратегии при этом заболевании и более глубокому пониманию его этиологии. В середине 1990-х годов датские специалисты проводили исследования, в ходе которых пришли к выводу, что курение матери во время беременности не влияет на риск развития АД [27, 28]. Но с появлением метилирования этот факт был полностью опровергнут. В 2013 г. на острове Тайвань оценивали влияние курения во время беременности на характер метилирования ДНК. Данное исследование было задумано в связи с тем, что у большинства детей, страдающих АД, впоследствии возникает бронхиальная астма. В качестве материала использовали пуповинную кровь плода. Анализ метилирования проводили с помощью микрочипов Illumina Infinium 27K. В исследовании принимали участие 14 детей с АД. В пуповинной крови измерен уровень котинина (алкалоид табака). Было обнаружено дифференциальное метилирование в трех генах (TSLP, GSTTJ, CYB5R3). Также был исследован ген TSLP у 150 детей: статус метилирования 5'-СрО-островков (CGI - цитозин- гуаниновые динуклеотиды) TSLP в значительной степени ассоциирован с пренатальным воздействием дыма в сочетании с АД. Степень метилирования 5'-CGI TSLP обратно коррелировала с уровнем экспрессии белка TSLP. Таким образом, влияние табачного дыма на риск развития АД у ребенка может быть опосредовано через метилирование ДНК [29]. Известен факт, что высокоаффинный Fc-рецептор (FcsRI) IgE, находящийся на поверхности клеток, - важнейшая структура в развитии IgE-опосредованных аллергических реакций. FcsRI представляет собой мультимерный иммунный рецептор. Его уровень определяет, какое количество аллергенспецифическо- го IgE и соответственно аллергена сможет связаться с эффекторной клеткой для запуска аллергической реакции. В 2012 г. в Китае оценивали уровень экспрессия FcsRI на моноцитах и дендритных клетках лиц с атопией. Уровни метилирования ДНК моноцитов 10 пациентов с АД и 10 здоровых людей были оценены с помощью набора ДНК метилирования Kit. Бисульфитное секвенирование проводили для определения статуса метилирования промоторной области FCER1G. FcsRIy мРНК и уровень FcsRI определяли методом ПЦР в режиме реального времени. Использовали также вестерн-блоттинг (аналитический метод, используемый для определения специфичных белков) и проточную цитометрию. Для определения функциональной значимости изменений метилирования в экспрессии FcsRI был применен деметилирующий агент 5-азацитидин. На основании полученных данных сделаны следующие выводы: в моноцитах лиц с атопией отмечается глобальное гипометилирование, а именно в промоторе FCER1G, в сравнении с группой контроля; степень метилирования гена FCER1G обратно коррелирует с его экспрессией. Лечение «здоровых» моноцитов 5-азацитидином вызвало снижение уровня метилирования и индукцию транскрипции FcsRIy и поверхностной экспрессии FcsRI. Деметилирование специфических регуляторных элементов в пределах локуса FCER1G способствует избыточной экспрессии FcsRI на моноцитах у пациентов с АД [30]. Участие CD4+Т-клеток при АД не подвергается сомнению. Во время поляризации CD4+ метилирование ДНК играет важную роль в регуляции транскрипции генов. В 2012 г. в Северной Корее проводили исследование, в ходе которого был проанализирован профиль метилирования ДНК «наивных» CD4+Т-лимфоцитов (т.е. таких клеток, которые еще не вступали в процесс распознавания чужеродных антигенов) у пациентов с псориазом, АД и здоровых людей с использованием метода секвени- рования на чипах. Если Т-клетки псориаза показали явное гипометилирование (более чем 4-кратное) по сравнению со здоровыми в 26 участках генома, а анализ 121 гена промотора на Х-хромосоме продемонстрировал резко повышенные уровни метилирования, то подобных моделей с Т-клетками лиц с атопией не наблюдалось. Полученные результаты говорят в пользу того, что изменения в метилировании «наивных» CD4+Т-клеток могут повлиять на поляризацию CD4+Т-клеток, особенно при псориазе [31]. Как известно, центральными регуляторами иммунного ответа являются регуляторные Т-лимфоци- ты (Т-регуляторные клетки, Т-супрессоры, Treg). Основная их функция - контролировать силу и продолжительность иммунного ответа через регуляцию функции Т-эффекторных клеток (Т-хелперов и Т-цитотоксических клеток). Эти Т-лимфоциты экспрессируют FOXP3 - фактор, регулирующий транскрипцию генов, ответственных за дифференцировку Т-клеток и экспрессию цитокинов и других факторов, участвующих в супрессии иммунного ответа. Стоит отметить, что регион гена FOXP3 деметилирован. В 2012 г. в Германии было решено проанализировать влияние пренатальных факторов на количество Treg в пуповинной крови посредством деметилирования специфического региона TSDR (Treg-specific demethylated region) в гене FOXP3, а также последующий риск развития аллергических заболеваний. В качестве материала применяли образцы крови беременных (34-я неделя беременности) и пуповинной крови (всего 346 пар мать-ребенок). Treg были обнаружены с помощью деметилирования ДНК в FOXP3 TSDR. В крови детей в возрасте 1 года был измерен уровень общего и специфического IgE. Кроме того, проводили анализ продукции цитокинов (Th1/Th2/Th17) у матерей. В ходе исследования у мальчиков обнаружено меньшее количество Treg, чем у девочек (р < 0,001). Родительский атопический анамнез, особенно сенная лихорадка матери и бронхиальная астма отца, был ассоциирован с низким количеством Treg в пуповинной крови плода. Цитокины (IL-13, IL-17E и IFN-y) матери и ее курение/воздействие табачного дыма во время беременности также были ассоциированы со снижением количества Treg в пуповинной крови. У детей с низким количеством Treg при рождении имелся более высокий риск развития АД и сенсибилизации к пищевым аллергенам в течение первого года жизни. Полученные результаты говорят в пользу того, что и генетические факторы, и факторы окружающей среды влияют на развитие эмбриональных Tregs. Низкое количество Treg в пуповинной крови может служить прогностическим критерием раннего АД [32]. Таким образом, метилирование ДНК является важным элементом контроля экспрессии генов в клетках млекопитающих. Это процесс, который играет важную роль в регуляции экспрессии генов. Нарушение механизма метилирования ДНК существенно влияет на развитие различных патологий. Рис. 1. Технология определения статуса метилирования ДНК. В доступной литературе представлены результаты нескольких исследований по изучению эпигенетических изменений в пораженной ткани, преимущественно онкогенной природы. Статус метилирования опухолевых геномов сравнивали с нормальной тканью [33-36]. Исследования по изменению метилирования в пораженных тканях пациентов с различными заболеваниями, в том числе аутоиммунной природы, ограничены в связи с тем, что некоторые ткани являются труднодоступными. АД имеет преимущество перед многими аутоиммунными заболеваниями из-за доступности своего главного органа-мишени - кожи. Тем не менее полногеномные исследования по метилированию ДНК в биоптатах при АД ранее не были описаны. Среди нескольких работ по метилированию ДНК в крови лиц с атопией обнаружено только одно сообщение об изменении эпигенетического профиля в пределах промоторов отдельных генов в пораженной коже. В исследовании, проведенном в 2014 г. [37], китайские коллеги изучали избыточную экспрессию тимического стромального лимфопоэтина (TSLP) в коже больных АД и здоровых. Данный цитокин способствует инициации иммунного ответа, индуцируя миграцию клеток Лангерганса в лимфатические узлы. TSLP играет важную роль в развитии Т-клеточного гомеостаза и, по-видимому, является центральным участником манифестации аллергических патологий, таких как бронхиальная астма и АД [37, 38]. У лиц с атопией TSLP продуцируется кератиноцитами как в острой, так и в хронической фазе. Тем не менее механизм его экспрессии остается неясным. Необходимо было также ответить на вопрос, регулируется ли эта экспрессия посредством аберрантного метилирования промоторной части TSLP у пациентов с АД. В качестве материала использованы образцы поврежденной кожи 10 детей с АД и 10 человек из группы контроля. мРНК и уровни белка TSLP были измерены в режиме реального времени методом ПЦР с обратной транскрипцией и иммуногистохимии. Бисульфитное секвенирование проводили для определения статуса метилирования в промоторе TSLP, а 5-азацитидин (5-aza), ингибитор ДНК-метилтрансферазы, применяли для определения влияния метилирования ДНК на экспрессию TSLP. В ходе исследования было зафиксировано следующее: уровни экспрессии мРНК TSLP и белка увеличены в коже лиц с атопией по сравнению со здоровым контролем; в «атопичных» биоптатах наблюдается гипометилирование промоторной области гена TSLP; лечение 5- aza способствует снижению уровня метилирования промотора TSLP и увеличению транскрипции. Таким образом, деметилирование ДНК определенной регуляторной области гена TSLP может привести к его сверхэкспрессии в коже больных с АД [37]. Представляет интерес исследование, проведенное в США в 2011 г. E. Roberson и соавт. [39], в котором изучался эпигенетический статус генов клеток пораженной и непораженной кожи больных псориазом по сравнению с таковым у здоровых людей. Уровень метилирования ДНК в исследуемых биоптатах оценивали с помощью микрочипов Illumina. В ходе анализа полученных данных авторы получили четкое разделение результатов на два кластера: больные и здоровые. При этом уровень метилирования большинства исследованных генов был статистически значимо выше в образцах пораженной псориазом кожи по сравнению с другими изучаемыми биоптатами. «Непораженная кожа» занимала промежуточную позицию. В данной работе были проанализированы PP-биоптаты 5 больных псориазом, которые проходили лечение анти- ФНО -а моноклональными антителами адалимумаб (Humira). Стандартная начальная доза для пациентов составляла 80 мг в виде подкожных инъекций, затем через 1 нед после начальной дозы в качестве поддерживающей дозы вводили по 40 мг, затем по 40 мг 1 раз в 2 нед. Оценивали также возраст, пол и PASI этих пациентов. Биопсию производили до лечения и через 1 мес после получения адалимумаба. Био- птаты «до лечения» были получены из псориатической бляшки, а биоптаты «после лечения» - из соседней с биопсией области или из разрешающейся псориатиче- ской бляшки контралатерально месту биопсии. У 4 из 5 пациентов был получен хороший ответ на лечение адалимумабом и улучшение по PASI к концу 6-го месяца достигло более 75% (PASI-75). Пиросеквенирование в определенных локусах проводили на образцах «до» и «после» лечения. За 1 мес бляшки полностью не разрешились. Тем не менее в каждом локусе было обнаружено, что средние уровни метилирования «пролеченных» образцов становились более похожими на уровни в непораженной коже. Cluster Dendrogram dist(t(data_clust)) hclust (*, «complete») Рис. 2. Кластерная диаграмма распределения образцов дифференциально метилированных локусов CpG. Такое клиническое испытание продемонстрировало эффективность TNF-блокады при лечении псориаза. Таким образом, анализ метилирования на дискретном наборе локусов может быть полезным в качестве возможного прогнозирования развития кожной патологии и ответа на лечение в самом его начале [39]. Целью нашего исследования стал анализ эпигенетического профиля (статуса метилирования ДНК) биоптатов у здоровых лиц и больных АД до лечения. Материалы и методы В исследовании принимали участие 4 женщины с АД в возрасте от 20 до 27 лет, получавшие комплексное лечение в виде наружных средств, физиопроцедур, имму- носупрессивной терапии. Анамнестически заболевание часто сочеталось с личным или семейным анамнезом бронхиальной астмы, вазомоторного ринита, конъюнктивита, крапивницы. Критерии включения пациентов в исследование: обострение кожного процесса, отсутствие других кожных патологий, антитела к вирусу иммунодефицита человека не обнаружены, комплекс серологических реакций на сифилис отрицательный, анализ крови на HBsAg и anti-HCV отрицательный. Контрольную группу составили 7 здоровых лиц (5 женщин и 2 мужчин) в возрасте от 20 до 35 лет. Биоптаты пораженной кожи у пациентов с АД (ADLS) были получены с помощью punch-биопсии (диаметр 4 мм) из очагов наиболее активного атопического поражения (лихенификации). Образцы непораженной кожи у этих же пациентов с АД (ADNL) были взяты из очагов, где отсутствовали любые признаки макроскопических изменений. Все атопические биоптаты были собраны исключительно до начала терапии. Индекс SCORAD у исследуемых колебался от 50 до 80 баллов. Биоптаты здоровой кожи (K) получали от здоровых добровольцев без АД в анамнезе и каких-либо клинических признаков поражения кожи. Таким образом, наше исследование включало 4 ADLS, 4 ADNL и 7 K биоптатов. Из данных биоптатов была выделена геномная ДНК. Современная технология поиска метильных групп заключается в следующем: образцы ДНК химически модифицируют так, что неметилированные нуклеотиды превращаются в другой тип нуклеотидов - урацил. Как известно, в норме ДНК не содержит урацил вовсе, поэтому после определения последовательности специалисты могут узнать, какие цитозины содержат метильную группу. Далее ДНК была подвергнута бисульфидной конвертации. После подготовки образцов их подвергают гибридизации на микрочипах. Для выделения сигналов метилирования ДНК из сканированных чипов использовали программное обеспечение GenomeStudio® (версия 2011.1; модель метилирования версия 1.9.0, Illumina Inc.). Данные метилирования были получены из сырых сигналов без выделения фона или нормализации данных. Наблюдаемые значения: в - уровень метилирования для каждого CpG, которые варьируют от 0 (неме- тилированные, U) до 1 (полное метилирование, М) на непрерывной шкале. Мы рассчитывали интенсивность аллелей со значениями М и U как показатель сигнала флюоресценции по формуле Max (M, 0) fi = ------------------------------------------------------ • Max M, 0) + Max (U, 0) +100 Все этапы - обработка, коррекция и нормализация проводили с помощью программного обеспечения R (версия 2.14.0) с приложением Bioconductor (версия 2.9) или адаптировали с помощью приложения IMA (версия 2.0.1) и lumi (версия 2.6.0) программного обеспечения R. Таким образом, с помощью секвенатора нового поколения была определена нуклеотидная последовательность. Данная технология позволяет провести полногеномный анализ экспрессии. Интерпретация результатов представляется в виде различных диаграмм (рис. 1). В настоящее время ведется дифференциальный анализ метилирования CpG-локусов для выявления изменений метилирования в норме и при патологии. Следует отметить, что все эти геномные методы остаются трудоемкими и дорогостоящими. Современные микроматрицы американской компании “Illumina” просты в применении, но позволяют проанализировать около 450 тыс. CpG, что составляет около 2% от всех CpG-динуклеотидов генома человека. Результаты и обсуждение Проведя систематический поиск по геному на сцепление с АД, мы в очередной раз подтвердили, что существуют гены, которые являются ключевыми в развитии данного заболевания. Получены данные о CpG-сайтах, где регуляцию генной экспрессии осуществляли с помощью метилирования. С помощью микрочипов в полученных образцах кожи были определены уровни метилирования более чем в 480 тыс. CpG-локусах, выбранных из более чем 22 тыс. генов. Анализ наиболее дифференциально метилированных сайтов четко показал разделение результатов на два кластера: «атопическая» кожа и здоровая (рис. 2). Рис. 4. Тепловая карта уровней метилирования наиболее дифференцированно метилированных генов между образцами пораженной и непораженной кожи больных атопическим дерматитом. Рис. 3. Тепловая карта уровней метилирования наиболее дифференцированно метилированных генов между образцами пораженной кожи и кожей здоровых лиц. Здесь и на рис. 4: красный цвет указывает на относительно повышенное метилирование, в то время как белый - на относительное сниженное метилирование. CpG метилирование в образцах ADLS отличается от K на 482 CpG-сайта. В общей сложности 310 CpG-сайтов продемонстрировали дифференциальное метилирование в коже ADLS по сравнению с кожей ADNL, что может быть объяснено маленькими выборками. Дополнительные локусы могут быть обнаружены в последующих исследованиях с большим количеством образцов в каждой группе. Тепловая карта уровней метилирования наиболее дифференцированных сайтов была создана со всеми образцами ADLS, ADNL и K (рис. 3, 4). Наибольшее число различий в метилировании наблюдались в ADLS коже по сравнению с K, при этом можно отметить сравнительно мало изменений в метилировании кожи ADNL по сравнению с K. Уровни метилирования дифференциально метилированных CpG-сайтов верно определили пораженную, непораженную и здоровую кожу, что может быть использовано для классификации различных групп кожи. В общем можно полагать, что исследование генетических и эпигенетических механизмов, лежащих в основе наследственных заболеваний, в частности АД, является одним из приоритетных направлений как в дерматологии, так и в генетике. Однако по- прежнему остаются вопросы. Могут ли такие эпигенетические факторы, как метилирование ДНК, изменить характер течения АД? Может ли эпигенетика пролить свет на механизм формирования АД у определенного контингента людей, объяснить механизм передачи предрасположенности к кожным патологиям от поколения к поколению. Задача ближайшего будущего - создать патогенетически и этиологически обоснованные подходы к лечению наследственной патологии на смену симптоматической терапии. Активное развитие геномики, происходящее в последнее время, предоставляет новые мощные инструменты описания и анализа генетического разнообразия - секвенирование индивидуальных геномов и полногеномный анализ на биочипах, проекты «HapMap» и «1000 Genomes Project», позволяя все чаще обнаруживать «мишени болезни» - точечные мутации или полиморфные гены предрасположенности к мультифакториальным заболеваниям. Следовательно, внедрение новых эпигенетических методов для активного выявления группы риска по любой патологии является перспективным, что позволяет значительно повысить результативность скрининга. Терапия ДНК или отдельно взятого гена сможет стать базовой при основных заболеваниях современного человека. Новое «генное» лечение болезней, в том числе АД, на сегодняшний день является очень актуальным и представляет огромный интерес как для врачей, так и для пациентов. Таким образом, перспективным путем лечения является выявление генов, подвергающихся эпигенетической модификации при дерматозах. Необходимо направить все усилия на создание диагностики на досимптомном этапе развития заболеваний и поиск лекарственных веществ, которые инактивируют модифицированные гены или их продукты. Учитывая индивидуальную предрасположенность, можно будет своевременно проводить адекватную профилактику патологии и назначать пациенту персонифицированную схему лечения.

About the authors

L. N Kayumova

I.M. Setchenov First Moscow Medical University

Email: avestohka2005@inbox.ru
119991, Moscow, Russia

- Sami Baker

I.M. Setchenov First Moscow Medical University

119991, Moscow, Russia

S. A Bruskin

N.I. Vavilov Institute of Genetics

Email: brouskin@vigg.ru
119333, Moscow, Russia

L. G Garanyan

I.M. Setchenov First Moscow Medical University

119991, Moscow, Russia

Nikolay G. Kochergin

I.M. Setchenov First Moscow Medical University

Email: nkocha@yandex.ru
MD, PhD, D.Sc., prof. 119991, Moscow, Russia

O. Yu Olisova

I.M. Setchenov First Moscow Medical University

Email: olisovaolga@mail.ru
119991, Moscow, Russia

References

Supplementary files