EXPERIMENTAL STUDY OF THE USE OF BIODEGRADABLE COLLAGEN MEMBRANES IN THE CLOSURE OF POSTOPERATIVE DEFECTS OF THE RABBIT ORAL MUCOUS MEMBRANE



Cite item

Full Text

Abstract

The aim is to increase the efficiency of surgical treatment of dental patients with the use of bioresorbable collagen membranes to close postoperative wound defects of the oral mucous membrane. Material and methods. The experimental model was created on 18 laboratory rabbits. The animals were divided into 3 groups: in the control group the healing of the mucous membrane defect on the hard palate was carried out by secondary tissue tension, in the research groups - under the xenopericardium membrane (1) and collagen membrane (2). The morphological study was based on biopsy of all animals' mucous membranes of the hard palate. Microvolume slices 4-5 microns thick were examined on a light microscope. Results. The results testify to the formation of granulation tissue an d epithelization of defects both in the research groups and in the control group. When using collagen materials, a noticeable activatio n of the wound process, shortening of epithelialization were found. A certain advantage of pericardium in activation of wound repair was noted. Conclusion. Application of collagen membranes can be recommended as a method of choice at closing of postoperative defects of the oral mucous membrane after clinical studies.

Full Text

Актуальность В последние десятилетия в хирургической стоматологии заметно обостряется проблема закрытия раневого дефекта слизистой оболочки донорской зоны, чаще нанёбе. Это связано с повышением хирургической активности стоматологов при увеличении зоны прикрепленной кератинизированной десны при ее дефиците, устранении локализованных и множественных рецессий десны (распространенность рецессий десны составляет до 100% у лиц старше 64 лет), вестибулопластике (по данным ВОЗ, частота встречаемости мелкого преддверия рта составляет 62,6%), дентальной имплантации, при иссечении пораженных предраками участков слизистой оболочки рта [1-3]. Несмотря на эффективность методики в области реципиентной зоны, одним из ее недостатков является наличие открытой раны в донорской области, период заживления которой бывает довольно болезненным и дискомфортным для пациентов. Велика вероятность возникновения механической травмы открытой раневой поверхности твердой пищей и пищевым комком, в результате чего может возникать боль, кровотечение, нагноение и повреждение образующейся грануляционной ткани [1-4]. Лечение открытых ран в полости рта является весьма сложной задачей, при которой невозможно полностью изолировать раневую поверхность от неблагоприятного влияния механических, химических и физических факторов, а также от проникновения микроорганизмов. Из-за постоянного омывания раны ротовой жидкостью затруднено применение фармакологических препаратов, обеспечивающих анал-гезирующее, антибактериальное, противоспалитель-ное и репаративное действие. [1, 5, 6] В литературе отмечаются достаточно разнообразные данные о методах закрытия донорского участка. Некоторые авторы накладывали направляющие швы хромированным кетгутом или шелковой нитью, чтобы гарантировать гемостаз [4]. Позже начали использовать микроволокнистый гемостатический коллаген в виде измельченной массы или не-тканной мембраны. Другие авторы рекомендуют использование пародонтальной повязки, цианакрилатный медицинский клей, резирбируемую целлюлозную повязку [4, 7, 8]. Для обеспечения максимального послеоперационного комфорта в донорской зоне использовали ранее изготовленную защитную каппу. Однако закрытие раневой поверхности донорской области йодоформным тампоном, гемостатической губкой, наложением направляющих швов оказывается временной мерой, в то время как использование термопластичных капп требует дополнтель-ных материальных затрат пациента и ощутимо удорожает лечение. Следовательно, разработка и внедрение материалов и усовершенствование методов лечения, способствующих защите и регенерации слизистой оболочки рта в зоне раневых дефектов, является актуальной задачей для хирургического лечения пациентов со стоматологическими заболеваниями. [5, 7]. В литературе описан положительный опыт применения коллагеновых мембран, в том числе ацеллюлярного ксеноперикарда в качестве подложки при закрытии слизистых оболочек при пластике неовлагалища, орбиты и уретры. Материалы имеют ряд преимуществ, таких как эластичность, достаточную пористость, отличную биосовместимость с тканями реципиентной зоны, однако опыт использования в рамках стоматологической практики отсутствует [9]. В связи с этим, представляет интерес сравнительный анализ применения биорезорбируемых коллагеновых мембран в комбинации с левомецитином и метилурацилом для закрытия раневых дефектов слизистой оболочки рта в эксперименте на животных с последующим применением в клинике хирургической стоматологии. Материал и методы Экспериментальная модель опытного исследования создана при использовании 18 особей кроликов породы шиншилла мужского пола массой 4000 г на базе Центрального вивария ФГАОУ ВО Первого МГ-МУ им И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет). Всем животным сформировали дефекты слизистой оболочки на твердомнёбе с помощью скальпеля 15С. Экспериментальных животных разделили на 3 группы. У 6 животных группы сравнения рана заживала вторичным натяжением. У 6 животных 1-й группы заживление проходило под коллагеновой мембраной из ксеноперикарда; у 6 животных 2-й группы исследования рана заживала под коллагеновой пленкой. Мембраны зафиксированы в полости рта узловыми швами Prolene 6|0. Животных выводили из эксперимента на 3, 6, 10-е сутки. Материал фиксировали в 10% р-ре формалина, заливали в парафин, микротомные срезы толщиной 4-5 мкм окрашивали гематоксилином и эозином, микроско-пировали в универсальном микроскопе Leica DM4000 B LED, фотографировали видеокамерой Leica DFS 7000T, проводили фазово-контрастную и поляризационную микроскопию. Результаты При гистологическом экспериментальном исследования получены следующие результаты. У животных группы сравнения на 3-и сутки эпителизации раневой поверхности не наблюдали, отмечали воспалительную инфильтрацию, микрососудистую дезорганизацию, отсутствие грануляционной ткани. К 6-м суткам поверхность раны была не эпителизиро-вана, хотя вокруг дефекта отмечали пролиферацию эпителиальных клеток. Дефект был заполнен незрелой грануляционной тканью, отмечалось снижение признаков воспаления. Через 10 сут поверхность дефекта была покрыта эпителием, под которым наблюдали фиброзирующуюся грануляционную ткань. Гистологическая картина биоптатов животных групп исследования отличалась от таковой в группе сравнения. Через 3 сут у животных обеих групп эпи-телизация отсутствовала, но на краях дефекта отмечена гиперплазия эпителия. Воспалительная инфильтрация была менее выражена. В группе исследования с перикардом часть дефекта уже была заполнена незрелой грануляционной тканью. Через 6 сут отмечали полную эпителизацию раны; под эпителием была сформирована зрелая грануляционная ткань, переходящая в рубцовую. Воспалительная инфильтрация была значительно слабее, чем в группе сравнения. Наибольшую активацию репарации раны отмечали при использовании перикарда. К 10-м суткам раневой дефект был эпителизиро-ван, под эпителием располагалась фиброзно-рубцовая ткань с минимальной воспалительной инфильтрацией. В группе исследования с перикардом рубцовая ткань была более зрелая, чем в группе исследования с коллагеновой пленкой. Заключение Таким образом, результаты гистологического исследования биоптатов регенератов слизистой оболочки рта животных в рамках экспериментального исследования показали, что при закрытии раневого дефекта слизистой оболочки твердогонёба перикардом и коллагеновой пленкой была выявлена заметная стимуляция и сокращение сроков эпителизации и рубцевания раны, особенно при использовании перикарда. Анализ результатов гистологического исследования применения биорезорбируемых мембран из ксеноперикарда при закрытии раневых поверхностей слизистой оболочки твердогонёба лабораторных животных позволяет рекомендовать их использование для закрытия донорского участка при заборе свободного десневого трансплантата или послеоперационного раневого дефекта слизистой оболочки рта в клинике хирургической стоматологии после клинических испытаний.
×

About the authors

S. V Tarasenko

Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)

199048, Moscow

A. B Shehter

Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)

199048, Moscow

E. V Istranova

Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)

199048, Moscow

E. A Morozova

Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)

199048, Moscow

Nataliya A. Blagushina

Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)

Email: blagushina.natalia@yandex.ru
assistant of the Department of Dental Surgery of Institute of Dentistry of Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University) 199048, Moscow

References

  1. Дурново Е.А., Мочалова Д.А., Беспалова Н.А., Янова Н.А., Клочков А.С., Рунова Н.Б. Клиническая оценка течения раневого процесса на слизистой оболочке полости рта при использовании полимерного трансплантата. Научное обозрение. Медицинские науки. 2015; 1: 165.
  2. Давидян А.Л. Применение свободного соединительнотканного трансплантата для устранения рецессий. Клиническая стоматология. 2007; 4: 11-5.
  3. Грудянов А.И., Николаев А.В., Сравнительный анализ отдаленных результатов использования различных ауто- и аллотрансплантатов для создания зоны кератинизированной десны при вестибулопластике на нижней челюсти. Стоматология. 2016; 95: 40-3.
  4. Дурново Е.А., Артифексова А.А, Воробьева А.В.,Беспалова Н.А, Рунова Н.Б., Ярцева А.В. Особенности регенерации слизистой оболочки рта при пластике свободным десневым трансплантатом. Медицинский альманах.Эпидемиология. 2011; 4: 173.
  5. Cho Kwang-Hee, Yu Sun-Kyoung, Lee Myoung-Hwa Histological assessment of the palatal mucosa and greater palatine artery with reference to subepithelial connective tissue grafting. Anatomy & Cell Biology. 2013; 46: 171-6.
  6. Azevedo F.P., Morandini A.C.F., Sipert C.R. Palatal mucosa derived fibroblasts present an adaptive behavior regarding cytokine secretion when grafted onto the gingival margin. BMC Oral Health. 2014; 14- 21.
  7. Agudio G, Nieri M, Rotundo R, Cortellini P, Pini Prato G. Free gingival grafts to increase keratinized tissue: A retrospective longterm evaluation (10 to 25 years) of outcomes. J. Periodontol. 2008; 79: 587-94.[PubMed]
  8. Llopis-Grimalt M.A., Munar-Bestard M., Ramis J.M., Monjo M. Tissue-Engineered Oral Mucosa Constructs for in Vitro Research and Clinical Applications. Biomed. J. STR. 2018; 17-20.
  9. Миланов Н.О., Адамян Р.Т., Липский К.Б., Гуляев И.В. Подготовка лучевого, кожно-фасциального аутотрансплантата для протяженной уретропластики. Анналы пластической, реконструктивной и эстетической хирургии. 2007; 4: 70-3.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2019 Eco-Vector



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 86295 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80635 от 15.03.2021 г
.



This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies