<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Molekulyarnaya Meditsina (Molecular medicine)</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Molekulyarnaya Meditsina (Molecular medicine)</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Молекулярная медицина</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">1728-2918</issn><issn publication-format="electronic">2499-9490</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Russkiy Vrach Publishing House</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">113239</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.29296/24999490-2020-02-06</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Articles</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Статьи</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">DETERMINATION OF FcγRIIIb (CD16) EXPRESSION ON THE SURFACE OF BLOOD NEUTROPHILS IN ANTI-PLAGUE VACCINATED PEOPLE</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭКСПРЕССИИ FcγRIIIb (CD16) НА ПОВЕРХНОСТИ НЕЙТРОФИЛОВ КРОВИ ПРИВИТЫХ ПРОТИВ ЧУМЫ ЛЮДЕЙ</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kravtsov</surname><given-names>A. L</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Кравцов</surname><given-names>А. Л</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>доктор биологических наук</p></bio><email>rusrapi@microbe.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Bugorkova</surname><given-names>S. A</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Бугоркова</surname><given-names>С. А</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>доктор медицинских наук</p></bio><email>rusrapi@microbe.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Klyueva</surname><given-names>S. N</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Клюева</surname><given-names>С. Н</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>кандидат биологических наук</p></bio><email>rusrapi@microbe.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kozhevnikov</surname><given-names>V. A</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Кожевников</surname><given-names>В. А</given-names></name></name-alternatives><email>rusrapi@microbe.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kudryavtseva</surname><given-names>O. M</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Кудрявцева</surname><given-names>О. М</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>кандидат биологических наук</p></bio><email>rusrapi@microbe.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Russian Research Anti-Plague Institute «Microbe»</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФКУЗ Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2020-02-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>02</month><year>2020</year></pub-date><volume>18</volume><issue>2</issue><issue-title xml:lang="en">VOL 18, NO2 (2020)</issue-title><issue-title xml:lang="ru">ТОМ 18, №2 (2020)</issue-title><fpage>33</fpage><lpage>38</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2022-11-18"><day>18</day><month>11</month><year>2022</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2020, Russkiy Vrach Publishing House</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2020, ИД "Русский врач"</copyright-statement><copyright-year>2020</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Russkiy Vrach Publishing House</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">ИД "Русский врач"</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" start_date="2025-02-15"/></permissions><self-uri xlink:href="https://journals.eco-vector.com/1728-2918/article/view/113239">https://journals.eco-vector.com/1728-2918/article/view/113239</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>Aim. Comparative evaluation of FcγRIIIb (CD16) expression level on the surface of blood neutrophils in vaccinated and unvaccinated people before and after the interaction of cells in vitro with the plague microbe allergen (pestin). Materials and methods. Blood samples of 25 healthy donors not vaccinated against the plague were examined, as well as 40 volunteers who were vaccinated once and several times with the plague vaccine alive, before and during different periods (1, 6 months) after the vaccination. The expression of CD16 on the surface of neutrophil granulocytes was determined by flow cytometry before and after incubation of blood samples for 4 hours with pestin. Results. After vaccination in all subjects there was registered a significant increase in the expression level of the CD16 molecule on the surface of blood neutrophils. After in vitro contact with pestin, the expression level of the FcγRIIIb molecule (CD16) decreased on the surface of neutrophils only in blood samples of people vaccinated against the plague. Conclusion. The change in the neutrophil phenotype from CD16bright to CD16dim, revealed by in vitro interaction with blood pestin grafted against the plague of people, mimics the response of these cells in anaphylactic shock mediating with specific IgG, and apparently represent the result of the functioning of the FcγRIIIb (CD16) as a trigger for netosis.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Цель. Сравнительная оценка уровня экспрессии FcγRIIIb (CD16) на поверхности нейтрофилов крови привитых и не привитых против чумы людей до и после взаимодействия клеток in vitro с аллергеном чумного микроба (пестин). Материал и методы. Исследовали образцы крови 25не привитых против чумы здоровых доноров, а также 40 добровольцев, однократно и многократно привитых вакциной чумной живой, до и в различные периоды (1, 6 мес) после прививки. Экспрессию CD16 на поверхности нейтрофильных гранулоцитов определяли методом проточной цитометрии до и после инкубации образцов крови в течение 4 ч с пестином. Результаты. У всех обследуемых добровольцев после вакцинации зарегистрировано достоверное повышение уровня экспрессии молекулы CD16 на поверхности нейтрофилов крови. После контакта in vitro c пестином только в образцах крови привитых против чумы людей уровень экспрессии молекулы FcyRIIIb (CD16) на поверхности нейтрофилов снижался по сравнению с исходным показателем (CD16bright) в 2-3 раза (до значений CD16dim). Заключение. Изменение фенотипа нейтрофилов с CD1&amp;bright на CD16dim, выявленное при взаимодействии in vitro с пестином крови привитых против чумы людей, имитирует реакцию этих клеток при анафилактическом шоке, медиатором которого являются специфические IgG, и, по-видимому, отражает результат функционирования молекулы FcγRIIIb (CD16) как триггера нетоза.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>blood neutrophils</kwd><kwd>FcγRIIIb (CD16) expression</kwd><kwd>flow cytometry</kwd><kwd>anti-plague vaccination</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>нейтрофилы крови</kwd><kwd>экспрессия FcγRIIIb (CD16)</kwd><kwd>проточная цитометрия</kwd><kwd>противочумная вакцинация</kwd></kwd-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Ковалева С.В., Евглевский А.А. Нейтрофильные гранулоциты: новый взгляд на «старых игроков» на иммунологическом поле. Иммунология. 2015; 36 (4): 257-65.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Eisele N., Lee-Lewis H., Besch-Williford C., Brown C.R., Anderson D.M. Chemokine receptor CXCR2 mediates bacterial clearance rather than neutrophil recruitment in a murine model of pneumonic plague. Am. J. Pathol. 2011; 178 (3): 1190-200. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2010.11.067.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>МсDonald B., Urrutia R., Yipp B.G., Jenne C.N., Kubes P. Intravascular neutrophil extracellular traps capture bacteria from bloodstream during sepsis. Cell Host Microbe. 2012; 12 (3): 324-33. https://doi. org/10.1016/j.chom.2012.06.011.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Aleman O.R., Mora N., Cortes-Vieyra R., Uribe-Querol E., Rosales C. Differential use of human Fcy-receptors for inducing neutrophil extracellular traps formation. J. Immunology Research. 2016; 17 pages, ID 2908034, http:// dx.doi.org./10.1155/2016/2908034.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Williams T.E., Nagavajan S., Selvaraj P, Zhu C. Concurrent and independent binding of Fcy receptors IIa and IIIb to surface-bound IgG. Biophysical J. 2000; 79 (4): 1867-75.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Elghetany M.T. Surface antigen changes during normal neutrophilic development: a critical review. Blood Cell. Mol. Dis. 2002; 28: 260-74.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Нестерова И.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Ковалева С.В., Колесникова Н.В., Авдеева М.Г., Русинова Е.В. Дифференцированность вариантов субпопуляций трансформированного фенотипа CD16+CD11b+ нейтрофильных гранулоцитов при острой вирусной и острой бактериальной инфекциях. Иммунология. 2016; 37 (4): 199-204. https://doi. org/10.18821/0206-4952-2016-37-4-199-204.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Dudte S.C., Hinnebusch B.J., Shannon J.G. Characterization of Yersinia pestis interactions with human neutrophils in vitro. Front Cell Infect. Microbiology. 2017; 7: 358. https://doi.org/10.3389/fcimb.2017.00358.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Landoni V.I., Chiarella P, Martire-Greco D., Schierloh P, van-Rooijen N., Rearte B., Palermo M.S., Isturiz M.A., Fernandez G.C. Tolerance to lipopolysaccharide promotes an enhanced neutrophil extracellular traps formation leading to a more efficient bacterial clearance in mice. Clinical and Experimental Immunology. 2012; 168: 153-63. https://doi. org/10.1111/j.1365-2249.2012.04560.x.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Фрадкин В.А. Диагностика аллергии реакциями нейтрофилов крови. М.: Медицина, 1985; 176.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Коробкова Е.И. Кожная аллергическая реакция как показатель иммунитета при чуме. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1955; 4: 40-7.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Микшис Н.И., Клюева С.Н., Кудрявцева О.М., Кравцов А.Л., Гончарова А.Ю., Кожевников В.А., Санджиев Д.Н., Конушева С.В., Савченко С.П., Щербакова С.А., Кутырев В.В. Комплексное иммунологическое исследование вакцинированных живой чумной вакциной лиц, проживающих на территории Прикаспийского песчаного очага чумы в Республике Калмыкия. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2018; 17 (3): 38-50. https://doi. org/10.31631/2073-3046-2018-17-3-38-50.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Tosi M.F., Berger M. Functional differences between the 40 kDa and 50 to 70 kDa IgG Fc-receptors on human neutrophils revealed by elastase treatment and antireceptor antibodes. J. Immunology. 1988; 141 (6): 2097-103.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Pham C.T. Neutrophil serine proteases fine-tune the inflammatory response. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2008; 40 (6-7): 1317-33.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Papayannopoulos V., Metzier K.D., Hakkim A., Zychlinsky A. Neutrophil elastase and myeloperoxidase regulate the formation of neutrophil extracellular traps. J. Cell Biol. 2010; 191: 677-91.</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Khodoun M.V., Strait R., Armstrong L., Yanase N., Finkelman F.D. Identification of markers that distinguish IgE- from IgG-mediated anaphylaxis. PNAS. 2011; 108 (30): 12413-8. https:/doi.org/10.1073/pnas. 1105695108.</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>Branzk N., Lubojemska A. Hardison S.E., Wang Q., Guttierrez M.G., Broun G.D., Papayannopoulos V. Neutrophil sense microbial size and selectively release neutrophil extracellular traps in response to large pathogens. Nat. Immunol. 2014; 15 (11): 1017-25. https://doi.org/10.1038/ni.2987.</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>Monteseirin J., Bonilla I., Camacho M.J., Chason P, Vega A., Chaparro A., Conde J., Sobrino F. Specific allergens enhance elastase release in stimulated neutrophils from asthmatic patients. Int. Arch. Allergy Immunology. 2003; 131 (3): 174-81.</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>Кравцов А.Л., Шмелькова Т.П., Щуковская Т.Н. Влияние противочумной вакцинации на функциональную активность клеток врожденного иммунитета человека. Проблемы особо опасных инфекций. 2011; 107: 77-80.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
