Микробиота мочевыводящих путей: новые таксоны

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обзор посвящен оценке биологического разнообразия микрофлоры мочевыводящих путей человека. Поиск проведен с использованием баз данных PubMed, List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature. Проанализированы данные о видах аэробных, факультативно-анаэробных и облигатно-анаэробных бактерий, описанных после 2000 г. Установлено, что внедрение усовершенствованных диагностических протоколов и методических приемов привело к обнаружению в моче новых видов микроорганизмов, относящихся к 14 семействам (Enterobacteriaceae, Pseudomonadaceae, Weeksellaceae, Flavobacteriaceae, Chromobacteriaceae, Paenibacillaceae, Lysobacteraceae, Bifidobacteriaceae, Actinomycetaceae, Lactobacillaceae, Corynebacteriaceae, Caryophanaceae, Dietziaceae, and Aerococcaceae). Представлены сведения о клиническом значении и антибиотикоустойчивости этих бактерий.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Александр Владимирович Валышев

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Оренбургского федерального исследовательского центра Уральского отделения Российской академии наук

Email: valyshevav@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1819-3969

к.м.н., доцент, ведущий научный сотрудник лаборатории микробной экологии и дисбиозов

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Михаил Дмитриевич Кузьмин

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Оренбургского федерального исследовательского центра Уральского отделения Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: mdk-49@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6349-6053

д.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории по изучению механизмов формирования микробных биоценозов человека, врач-уролог высшей квалификационной категории, заслуженный врач РФ и Республики Мордовия

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Список литературы

  1. Kogan M.I., Naboka Iu.L., Ibishev Kh.S., Gudima I.A. [Unsterile urine in health human--new paradigm in medicine]. Urologiia. 2014;5:48-52. Russian (Коган М.И., Набока Ю.Л., Ибишев Х.С., Гудима И.А. Нестерильность мочи здорового человека – новая парадигма в медицине. Урология. 2014;5:48-52.)
  2. Yang J., Long H., Hu Y., Feng Y., McNally A., Zong Z. Klebsiella oxytoca complex: update on taxonomy, antimicrobial resistance, and virulence. Clin. Microbiol. Rev. 2022;35(1):e0000621. doi: 10.1128/CMR.00006-21.
  3. Merla C., Rodrigues C., Passet V., Corbella M., Thorpe H.A., Kallonen T.V.S., Zong Z., Marone P., Bandi C., Sassera D., Corander J., Feil E.J., Brisse S. Description of Klebsiella spallanzanii sp. nov. and of Klebsiella pasteurii sp. nov. Front. Microbiol. 2019;10:2360. doi: 10.3389/fmicb.2019.02360.
  4. Hu Y., Wei L., Feng Y., Xie Y., Zong Z. Klebsiella huaxiensis sp. nov., recovered from human urine. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2019;69(2):333–336. doi: 10.1099/ijsem.0.003102.
  5. Wu W., Feng Y., Zong Z. Enterobacter sichuanensis sp. nov., recovered from human urine. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2018;68(12):3922–3927. doi: 10.1099/ijsem.0.003089.
  6. Yang C.H., Young T., Peng M.Y., Weng M.C. Clinical spectrum of Pseudomonas putida infection. J. Formos. Med. Assoc. 1996;95(10):754–761.
  7. Tohya M., Watanabe S., Teramoto K., Shimojima M., Tada T., Kuwahara-Arai K., War M.W., Mya S., Tin H.H., Kirikae T. Pseudomonas juntendi sp. nov., isolated from patients in Japan and Myanmar. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2019;69(11):3377–3384. doi: 10.1099/ijsem.0.003623.
  8. Alberto-Lei F., Nodari C.S., Streling A.P., Bessa-Neto F.O., Siqueira A.V., Cayô R., Gales A.C. Characterization of a carbapenem-resistant BKC-1-producing clinical isolate belonging to the Pseudomonas putida group from Brazil. Antimicrob. Agents Chemother. 2022;66(12):e0083922. doi: 10.1128/aac.00839-22.
  9. Zheng L., Zhang X., Zhu L., Lu G., Guan J., Liu M., Jing J., Sun S., Wang Y., Sun Y., Ji X., Jiang B., Chen J., Liu J., Chen P., Guo X. A clinical Pseudomonas juntendi strain with blaIMP-1 carried by an integrative and conjugative element in China. Front. Microbiol. 2022;13:929800. doi: 10.3389/fmicb.2022.929800.
  10. Drobish A.M., Emery B.D., Whitney A.M., Lauer A.C., Metcalfe M.G., McQuiston J.R. Oblitimonas alkaliphila gen. nov., sp. nov., in the family Pseudomonadaceae, recovered from a historical collection of previously unidentified clinical strains. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016;66(8):3063–3070. doi: 10.1099/ijsem.0.001147.
  11. Rudra B., Gupta R.S. Phylogenomic and comparative genomic analyses of species of the family Pseudomonadaceae: Proposals for the genera Halopseudomonas gen. nov. and Atopomonas gen. nov., merger of the genus Oblitimonas with the genus Thiopseudomonas, and transfer of some misclassified species of the genus Pseudomonas into other genera. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2021;71(9). doi: 10.1099/ijsem.0.005011.
  12. Burcham Z.M. Comparative genomic analysis of an emerging Pseudomonadaceae member, Thiopseudomonas alkaliphila. Microbiol. Spectr. 2024;12(8):e0415723. doi: 10.1128/spectrum.04157-23.
  13. Sankar S.A., Lo C.I., Fall B., Sambe-Ba B., Mediannikov O., Diallo I., Labas N., Faye N., Wade B., Raoult D., Fournier P.E., Fenollar F. Noncontiguous finished genome sequence and description of Weeksella massiliensis sp. nov. New Microbes New Infect. 2015;8:89–98. doi: 10.1016/j.nmni.2015.09.013.
  14. de la Fuente García Peña L.A., Mendoza García A.U., Villegas-Dominguez J.E., Márquez Celedonio F.G., Arana Vidal H., Azuara Díaz K. Ventilator-associated pneumonia by Weeksella virosa: case report. BMC Infect. Dis. 2024;24(1):6. doi: 10.1186/s12879-023-08927-0.
  15. Vaquera-Aparicio D.N., Mascareñas-De Los Santos A.H., Casillas-Vega N., Riojas-Hernández P., Llaca-Díaz J., Herrera-Benavente I., Castillo-Bejarano J.I. Bacteremia due to Weeksella virosa in a pediatric patient with embryonal rhabdomyosarcoma. Bol. Med. Hosp. Infant Mex. 2020;77(3):149–152. doi: 10.24875/BMHIM.19000205.
  16. Slenker A.K., Hess B.D., Jungkind D.L., DeSimone J.A. Fatal case of Weeksella virosa sepsis. J. Clin. Microbiol. 2012;50(12):4166–4167. doi: 10.1128/JCM.01761-12.
  17. Paek J., Shin J.H., Shin Y., Park I.S., Jin T.E., Kook J.K., Wie S.H., Cho H.G., Park S.J., Chang Y.H. Myroides injenensis sp. nov., a new member isolated from human urine. Antonie Van Leeuwenhoek. 2015;107(1):201–207. doi: 10.1007/s10482-014-0317-y.
  18. LaVergne S., Gaufin T., Richman D. Myroides injenensis bacteremia and severe cellulitis. Open Forum Infect. Dis. 2019;6(7):ofz282. doi: 10.1093/ofid/ofz282.
  19. Lan K., Cai Y.M., Li L.H., Zeng J.M., Yu X.G., Qu P.H., Li H.L., Liu Y.Y., Chen L., Chen C., Huang B. Vogesella urethralis sp. nov., isolated from human urine, and emended descriptions of Vogesella perlucida and Vogesella mureinivorans. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2020;70(1):624–630. doi: 10.1099/ijsem.0.003802.
  20. Matsuda H., Katayama I., Watanabe T., Komatsu A., Iwakami N., Goto Y., Suzuki M., Iwakami S.I., Takahashi K. Vogesella urethralis-induced aspiration pneumonia and bacteremia in an elderly man: a first case report and literature review. BMC Infect. Dis. 2023;23(1):285. doi: 10.1186/s12879-023-08269-x.
  21. Roux V., Fenner L., Raoult D. Paenibacillus provencensis sp. nov., isolated from human cerebrospinal fluid, and Paenibacillus urinalis sp. nov., isolated from human urine. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2008;58(Pt 3):682-687. doi: 10.1099/ijs.0.65228-0.
  22. Thierry S., Macarie H., Iizuka T., Geißdörfer W., Assih E.A., Spanevello M., Verhe F., Thomas P., Fudou R., Monroy O., Labat M., Ouattara A.S. Pseudoxanthomonas mexicana sp. nov. and Pseudoxanthomonas japonensis sp. nov., isolated from diverse environments, and emended descriptions of the genus Pseudoxanthomonas Finkmann et al. 2000 and of its type species. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2004;54(Pt 6):2245–2255. doi: 10.1099/ijs.0.02810-0.
  23. Hoyles L., Inganäs E., Falsen E., Drancourt M., Weiss N., McCartney A.L., Collins M.D. Bifidobacterium scardovii sp. nov., from human sources. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002;52(Pt 3):995–999. doi: 10.1099/00207713-52-3-995.
  24. Barberis C.M., Cittadini R.M., Almuzara M.N., Feinsilberg A., Famiglietti A.M., Ramírez M.S., Vay C.A. Recurrent urinary infection with Bifidobacterium scardovii. J. Clin. Microbiol. 2012;50(3):1086–1088. doi: 10.1128/JCM.06027-11.
  25. Guevara Nuñez D., De Paulis A.N., Bertona E., Gutiérrez M.Á., Vay C.A., Suárez J.P., Predari S.C. Bifidobacterium scardovii aislado de 2 muestras consecutivas de orina [Bifidobacterium scardovii isolated from 2 consecutive urine samples]. Rev. Argent. Microbiol. 2017;49(4):328–331. doi: 10.1016/j.ram.2017.04.004.
  26. Huys G., Vancanneyt M., D’Haene K., Falsen E., Wauters G., Vandamme P. Alloscardovia omnicolens gen. nov., sp. nov., from human clinical samples. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2007;57(Pt 7):1442–1446. doi: 10.1099/ijs.0.64812-0.
  27. Mahlen S.D., Clarridge J.E. 3rd. Site and clinical significance of Alloscardovia omnicolens and Bifidobacterium species isolated in the clinical laboratory. J. Clin. Microbiol. 2009;47(10):3289–3293. doi: 10.1128/JCM.00555-09.
  28. Klein S., Nurjadi D., Horner S., Heeg K., Zimmermann S., Burckhardt I. Significant increase in cultivation of Gardnerella vaginalis, Alloscardovia omnicolens, Actinotignum schaalii, and Actinomyces spp. in urine samples with total laboratory automation. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2018;37(7):1305–1311. doi: 10.1007/s10096-018-3250-6.
  29. Sousa M., Ksiezarek M., Perovic S.U., Antunes-Lopes T., Grosso F., Ribeiro T.G., Peixe L. Gardnerella pickettii sp. nov. (formerly Gardnerella genomic species 3) and Gardnerella greenwoodii sp. nov. (formerly Gardnerella genomic species 8) isolated from female urinary microbiome. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2023;73(11). doi: 10.1099/ijsem.0.006140.
  30. Hall V., Collins M.D., Hutson R.A., Falsen E., Inganäs E., Duerden B.I. Actinobaculum urinale sp. nov., from human urine. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003;53(Pt 3):679–682. doi: 10.1099/ijs.0.02422-0.
  31. Yassin A.F., Spröer C., Pukall R., Sylvester M., Siering C., Schumann P. Dissection of the genus Actinobaculum: Reclassification of Actinobaculum schaalii Lawson et al. 1997 and Actinobaculum urinale Hall et al. 2003 as Actinotignum schaalii gen. nov., comb. nov. and Actinotignum urinale comb. nov., description of Actinotignum sanguinis sp. nov. and emended descriptions of the genus Actinobaculum and Actinobaculum suis; and re-examination of the culture deposited as Actinobaculum massiliense CCUG 47753T (= DSM 19118T), revealing that it does not represent a strain of this species. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2015;65(Pt 2):615–624. doi: 10.1099/ijs.0.069294-0.
  32. Niang E.H.A., Lo C.I., Brahimi S., Armstrong N., Raoult D., Fournier P.E., Fenollar F. Varibaculum massiliense sp. nov., a new bacterium isolated from human urine with culturomics. New Microbes New Infect. 2019;32:100591. doi: 10.1016/j.nmni.2019.100591.
  33. Rocha J., Botelho J., Ksiezarek M., Perovic S.U., Machado M., Carriço J.A., Pimentel L.L., Salsinha S., Rodríguez-Alcalá L.M., Pintado M., Ribeiro T.G., Peixe L. Lactobacillus mulieris sp. nov., a new species of Lactobacillus delbrueckii group. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2020;70(3):1522–1527. doi: 10.1099/ijsem.0.003901.
  34. Nikolaitchouk N., Wacher C., Falsen E., Andersch B., Collins M.D., Lawson P.A. Lactobacillus coleohominis sp. nov., isolated from human sources. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001;51(Pt 6):2081–2085. doi: 10.1099/00207713-51-6-2081.
  35. Zheng J., Wittouck S., Salvetti E., Franz C.M.A.P., Harris H.M.B., Mattarelli P., O’Toole P.W., Pot B., Vandamme P., Walter J., Watanabe K., Wuyts S., Felis G.E., Gänzle M.G., Lebeer S. A taxonomic note on the genus Lactobacillus: Description of 23 novel genera, emended description of the genus Lactobacillus Beijerinck 1901, and union of Lactobacillaceae and Leuconostocaceae. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2020;70(4):2782–2858. doi: 10.1099/ijsem.0.004107.
  36. Ksiezarek M., Ribeiro T.G., Rocha J., Grosso F., Perovic S.U., Peixe L. Limosilactobacillus urinaemulieris sp. nov. and Limosilactobacillus portuensis sp. nov. isolated from urine of healthy women. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2019;71(3). doi: 10.1099/ijsem.0.004726.
  37. Atasayar E., Zimmermann O., Spröer C., Schumann P., Groß U. Corynebacterium gottingense sp. nov., isolated from a clinical patient. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2017;67(11):4494–4499. doi: 10.1099/ijsem.0.002322.
  38. Bernard K.A., Pacheco A.L., Burdz T., Wiebe D., Bernier A.M. Corynebacterium godavarianum Jani et al. 2018 and Corynebacterium hadale Wei et al. 2018 are both later heterotypic synonyms of Corynebacterium gottingense Atasayar et al. 2017, proposal of an emended description of Corynebacterium gottingense Atasayar et al. 2017. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2020;70(5):3534–3540. doi: 10.1099/ijsem.0.004153.
  39. Niang E.H.A., Lo C.I., Morand A., Ndongo S., Raoult D., Fournier P.E., Fenollar F. Corynebacterium urinapleomorphum sp. nov., a new bacterial species isolated from human urine sample. New Microbes New Infect. 2019;31:100576. doi: 10.1016/j.nmni.2019.100576.
  40. Olowo-Okere A., Ibrahim Y.K.E., Lo C.I., Olayinka B.O., Yimagou E.K., Yacouba A., Mohammed Y., Nabti L.Z., Ragueh A.A., Lupande D., Raoult D., Rolain J.M., Diene S.M. Bhargavaea massiliensis sp. nov. and Dietzia massiliensis sp. nov., novel bacteria species isolated from human urine samples in Nigeria. Curr. Microbiol. 2021;79(1):18. doi: 10.1007/s00284-021-02721-4.
  41. Lawson P.A., Falsen E., Ohlén M., Collins M.D. Aerococcus urinaehominis sp. nov., isolated from human urine. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001;51(Pt 2):683–686. doi: 10.1099/00207713-51-2-683.
  42. Kadyrov Z.A., Stepanov V.N., Faniev M.V., Ramishvili S.V. Microbiota of the urogenital organs. Urologiia. 2020;1:116–120. Russian. (Кадыров З.А., Степанов В.Н., Фаниев М.В., Рамишвили Ш.В. Микробиота органов урогенитальной системы. Урология. 2020;1:116-120.) doi: 10.18565/urology.2020.1.116–120.
  43. Slesarevskaya M.N., Kuzmin I.V., Zhumadillayev K.G., Vvedenskiy G.A., Mikheev Y.А., Maksimova A.V. Microbiome and urine microbiota: modern concepts and gender features. Urology reports (St.-Petersburg). 2022;12(2):157–165. Russian (Слесаревская М.Н., Кузьмин И.В., Жумадиллаев К.Г., Введенский Г.А., Михеев Ю.А., Максимова А.В. Микробиом и микробиота мочи: современные представления и гендерные особенности. Урологические ведомости. 2022;12(2):157–165) doi: 10.17816/uroved109278.
  44. Kuz’min M.D., Peshkova Yu.I., Pashkova T.M., Kartashova O.L., Pashinina O.A., Meshcheryakov A.O. Structure of microorganism species cultured from urine of urolithiasis patients. Urologiia. 2017;4:18–21. Russian. (Кузьмин М.Д., Пешкова Ю.И., Пашкова Т.М., Карташова О.Л., Пашинина О.А., Мещеряков А.О. Видовая структура микроорганизмов, выделенных из мочи при мочекаменной болезни. Урология. 2017;4:18–21.) doi: 10.18565/urol.2017.4.18-21.
  45. Faniev M.V., Kadyrov Z.A., Druzhinina N.K., Stepanov V.S., Prokopyev Y.V., Fedorenko T.V., Markelova M.I., Khusnutdinova D.R., Grigorieva T.V. The structure of the microbiota of fertile and infertile patients with different types of azoospermiа. Experimental and Clinical Urology 2024;17(2):36–44. Russian (Фаниев М.В., Кадыров З.А., Дружинина Н.К., Степанов В.С., Прокопьев Я.В., Федоренко Т.В., Маркелова М.И., Хуснутдинова Д.Р., Григорьева Т.В. Cтруктура микробиоты фертильных и инфертильных пациентов с различными видами азооспермии. Экспериментальная и клиническая урология. 2024;17(2):36–44.) doi: 10.29188/2222-8543-2024-17-2-36-44.
  46. Kogan M.I., Naboka Yu.L., Ryzhkin A.V., Vasilyev O.N. Microbiota/microbiome urine and bladder cancer. Cancer Urology. 2020;16(2):97–103. Russian. (Коган М.И., Набока Ю.Л., Рыжкин А.В., Васильев О.Н. Микробиота/микробиом мочи и рак мочевого пузыря. Онкоурология. 2020;16(2):97–103). doi: 10.17650/1726-9776-2020-16-2-97-103.
  47. Kogan M.I., Naboka Yu.L., Ryzhkin A.V., Gudima I.A., Ivanov A.G., Ivanov S.N., Vasiliev O.N., Glukhov V.P., Ilyash A.V., Sizyakin D.V. Urine microbiota in non-muscle-invasive bladder cancer and approaches to its detection. Urology Herald. 2024;12(3):53–61. Russian. (Коган М.И., Набока Ю.Л., Рыжкин А.В., Гудима И.А., Иванов А.Г., Иванов С.Н., Васильев О.Н., Глухов В.П., Ильяш А.В., Сизякин Д.В. Микробиота мочи при немышечно-инвазивном раке мочевого пузыря и подходы к ее выявлению. Вестник урологии. 2024;12(3):53–61). doi: 10.21886/2308-6424-2024-12-3-53-61.
  48. Ece G., Aktaş A., Caner A., Sağlık İ., Kula Atik T., Ulusan Bağcı Ö., Bayındır Bilman F., Demirbakan H., Güdül Havuz S., Kaya E., Koyuncu Özyurt Ö., Yetkin G., Zorbozan O. The urogenital system microbiota: is it a new gamechanger in urogenital cancers? Microorganisms. 2025;13(2):315. doi: 10.3390/microorganisms13020315.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2025