Doklady Biological SciencesDoklady Biological SciencesДоклады Российской академии наук. Науки о жизни2686-73893034-5057The Russian Academy of Sciences68407810.31857/S2686738925020217ArticlesСтатьиResearch ArticleMycobiota of acorn worm Saccoglossus mereschkowskii (Hemichordata, Enteropneusta) and its habitatsМикобиота кишечнодышащего Saccoglossus mereschkowskii (Hemichordata, Enteropneusta) и его местообитанияEzhovaO. V.ЕжоваО. В.
Russian Federation

Biological Faculty, Department of Invertebrate Zoology

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

olga_ejova@mail.ruGrum-GrzhimayloO. A.Грум-ГржимайлоО. А.
Russian Federation

Biological Faculty, N.A. Pertsov White Sea Biological Station

биологический факультет, Беломорская биологическая станция имени Н.А. Перцова

olga_ejova@mail.ruKokurkinaJ. А.КокуркинаЮ. А.
Russian Federation

Biological Faculty, Department of Invertebrate Zoology

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

olga_ejova@mail.ruEkimovaI. А.ЕкимоваИ. А.
Russian Federation

Biological Faculty, Department of Invertebrate Zoology

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

olga_ejova@mail.ruGantsevichМ. М.ГанцевичМ. М.
Russian Federation

Biological Faculty, Department of Invertebrate Zoology

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

olga_ejova@mail.ruMalakhovV. V.МалаховВ. В.
Russian Federation

Biological Faculty, Department of Invertebrate Zoology, Academician of the RAS

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных, академик РАН

olga_ejova@mail.ruLomonosov Moscow State UniversityМосковский государственный университет имени М.В. Ломоносова1504202552112993041206202512062025Copyright ©; 2025, Russian Academy of SciencesCopyright ©; 2025, Российская академия наук2025Russian Academy of SciencesРоссийская академия наукhttps://journals.eco-vector.com/2686-7389/article/view/684078

It is known that the tissues and mucous of acorn worms contain phenolic compounds, which inhibit the activity of aerobic bacteria. In this work, the mycobiota of tissues, body surface lavages, and burrows of the acorn worm Saccoglossus mereschkowskii (Wagner, 1885) were studied. 3 species of fungi were found in the plating of intestine samples. 7 species were isolated from the body surface lavage of S. mereschkowskii. 5 species were found in burrow samples, and 15 species were found in the samples of sediment from the habitat of S. mereschkowskii. Plating of intact specimens, gill bars, and axial organ did not reveal the growth of mycelial fungi. This indicates that enteropneust tissues may have a fungistatic effect.

Известно, что ткани и слизь кишечнодышащих содержат фенольные соединения, ингибирующие активность аэробных бактерий. В настоящей работе проведено исследование микобиоты тканей, смывов с поверхности тела и норок кишечнодышащего Saccoglossus mereschkowskii (Wagner, 1885). В посевах образцов кишечника обнаружено 3 вида грибов. Из смывов с поверхности тела S. mereschkowskii выделено 7 видов, из образцов норок – 5 видов, из образцов осадка в месте обитания S. mereschkowskii – 15 видов. Посевы интактных особей, жаберных перегородок и осевого органа не выявили роста мицелиальных грибов; это свидетельствует о том, что ткани кишечнодышащих могут обладать фунгистатическим действием.

Acorn wormssea fungitissues of acorn wormsburrows of acorn wormsbottom sedimentsthe White Seaполухордовыеморские грибыткани кишечнодышащихнорки кишечнодышащихдонные грунтыБелое мореРоссийский научный фондRussian Science Foundation23–14–00047Van der Horst C.J. Observations on some Enteropneusta // Videnskabelige meddelelser fra Dansk Naturhistorisk Forening i København. 1929. Vol. 87. P. 135–200.King G.M. Inhibition of microbial activity in marine sediments by a bromophenol from a hemichordate // Nature. 1986. Vol. 323. P. 257–259.Richards T.A., Jones M.D., Leonard G., Bass D. Marine fungi: their ecology and molecular diversity // Annual Review of Marine Science. 2012. V. 4. P. 495–522.Gonçalves M.F., Esteves A.C., Alves A. Marine fungi: Opportunities and challenges // Encyclopedia. 2022. V. 2. P. 559–577.Frisvad J.C., Samson R.A. Polyphasic taxonomy of Penicillium subgenus Penicillium. A guide to identification of food and air-borne terverticillate Penicillia and their mycotoxins // Studies in mycology. 2004. V. 49. P. 1–174.Domsch K.H., Gams W., Anderson T.-H. Compendium of Soil Fungi // Eching, Germany: IHW-Verlag. 2007. 672 p.Pitt J.I., Hocking A.D. Aspergillus and related teleomorphs // Fungi and Food Spoilage. 2009. P. 275–337.Ivanova N., Grainger C., Hajibabaei M. Glass fiber DNA extraction: A new inexpensive method for high throughput DNA isolation // CCDB Advances, Methods Release. No. 1. 2006.Osterburg H.H., Allen J.K., Finch C.E. The use of ammonium acetate in the precipitation of ribonucleic acid // Biochemical Journal. 1975. V. 147. P. 367–368.Бубнова Е.Н., Никитин Д.А. Грибы в донных грунтах Баренцева и Карского морей // Биология моря. 2017. Т. 43. С. 366–371.Бубнова Е.Н., Георгиева М.Л., Грум-Гржимайло О.А. Способ выделения и учета грибов, развивающихся в морских грунтах // Микробиология. 2018. Т. 87. С. 672–678.Бубнова Е.Н., Коновалова О.П. Грибы в донных грунтах Чукотского моря // Биология моря. 2019. Т. 45. С. 86–96.Pagani D.M., et al. Susceptibility to antifungal agents and enzymatic activity of Candida haemulonii and Cutaneotrichosporon dermatis isolated from soft corals on the Brazilian reefs // Archives of Microbiology. 2016. V. 198. P. 963–971.Edrada R.A., et al. Online analysis of Xestodecalactones A− C, novel bioactive metabolites from the fungus Penicillium cf. montanense and their subsequent isolation from the sponge Xestospongia exigua // Journal of natural products. 2002. V. 65. P. 1598–1604.Flewelling A.J., Johnson J.A., Gray C.A. Isolation and bioassay screening of fungal endophytes from North Atlantic marine macroalgae // Botanica Marina. 2013. V. 56. P. 287–297.Olivier F.A., et al. Aerial warfare: An inducible production of volatile bioactive metabolites in a novel species of Scytinostroma sp. // Fungal Genetics and Biology. 2022. V. 158. 103646.Никитин Д.А., и др. Ферментативная и антимикробная активность полярных штаммов почвенных микроскопических грибов // Микология и фитопатология. 2021. Т. 55. P. 36–50.Girardi N., et al. Ecophysiological characteristics of the nematophagous fungus, Plectosphaerella plurivora, with biocontrol potential on Nacobbus aberrans s.l. in tomato // European Journal of Plant Pathology. 2023. V. 167. P. 867–881.Han L., et al. First report of Plectosphaerella plurivora causing root rot disease in Panax notoginseng in China // Journal of Phytopathology. 2020. V. 168. P. 375–379.Zhang T., et al. Diversity and distribution of cultured endolichenic fungi in the Ny-Ålesund Region, Svalbard (High Arctic) // Extremophiles. 2016. V. 20. P. 461–470.