Doklady Biological SciencesDoklady Biological SciencesДоклады Российской академии наук. Науки о жизни2686-73893034-5057The Russian Academy of Sciences69770510.7868/S3034543X25050016ArticlesСтатьиResearch ArticleFATTY ACID CONTENT OF JUVENILE PINK SALMON ONCORHYNCHUS GORBUSCHA DURING ITS SMOLTLIFICATION FROM THE RIVER INDERA TO THE WHITE SEAЖИРНОКИСЛОТНЫЙ СОСТАВ МОЛОДИ ГОРБУШИ ONCORHYNCHUS GORBUSCHA В ПЕРИОД ЕЕ СМОЛТИФИКАЦИИ ИЗ РЕКИ ИНДЕРА В БЕЛОЕ МОРЕKhurtinaS. NХуртинаС. Нpek-svetlana@mail.ruVoroninV. PВоронинВ. ПManoilovaD. IМанойловаД. ИEfremovD. AЕфремовД. АNemovaN. NНемоваН. Н

Academician of the RAS

академик РАН

MurzinaS. AМурзинаС. АInstitute of Biology of the Karelian Research Centre of the Russian Academy of SciencesИнститут биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”151020255241VOL 524, NO1 (2025)ТОМ 524, №1 (2025)49350104122025Copyright ©; 2025, Russian Academy of SciencesCopyright ©; 2025, Российская академия наук2025Russian Academy of SciencesРоссийская академия наукhttps://journals.eco-vector.com/2686-7389/article/view/697705

The changes in the fatty acid composition of pink salmon smolts during the migration process (from start to finish) in the Indera River and as part of an experiment at the locations where cages were installed (river, estuary, White Sea), taking into account differences in water temperature and salinity were studied. Changes in the quantitative composition of fatty acids were found in pink salmon smolts in the middle of their downstream migration and in the experimental group of smolts kept in cages in the sea for 72 hours (higher content of total saturated and monounsaturated fatty acids and lower polyunsaturated fatty acids). The qualitative composition of the dominant fatty acids in pink salmon smolts is the same for all studied groups (16:0, 18:1(n-9) and 20:5(n-3) and 22:6(n-3)) and is similar to that at earlier stages of pink salmon development. In the framework of experimental works, variations in the content of 20:5(n-3) and 22:6(n-3) were established, which confirm the important role of these PUFAs in the processes of adaptation of pink salmon smolts to the transition from a freshwater river ecosystem to living in the sea.

Исследовали изменение жирнокислотного состава у смолтов горбуши в реке Индера в процессе ската (от начала до завершения) и в рамках эксперимента в местах установки садков (река, эстуарий, Белое море) с учетом различий по температуре и солености воды. Установлены изменения по количественному составу жирных кислот у смолтов горбуши в середине ската и в экспериментальной группе смолтов, выдерживаемых в садках в море 72 часа (более высокое содержание насыщенных и мононенасыщенных жирных кислот и более низкое полиненасыщенных жирных кислот). Качественный состав доминирующих жирных кислот смолтов горбуши является одинаковым для всех исследованных групп (16:0, 18:1(n-9) и 20:5(n-3) и 22:6(n-3)) и сходен с таковым на более ранних стадиях развития горбуши. В рамках экспериментальных работ установлены вариации в содержании 20:5(n-3) и 22:6(n-3), которые подтверждают важную роль этих полиненасыщенных жирных кислот в процессах адаптации смолтов горбуши к переходу из пресноводной экосистемы реки к обитанию в море.

pink salmon Oncorhynchus gorbuschalipidsfatty acidssmoltificationWhite Sea basinгорбуша Oncorhynchus gorbuschaлипидыжирные кислотысмолтификациябассейн Белого моряРабота выполнена в рамках государственного задания КарНЦ РАН № FMEN–2022-0006Зубченко А. В., Веселов А. Е., Калюскин С. М. Горбуша (Oncorhynchus gorbuscha): проблемы акклиматизации на Европейском Севере России. Петрозаводск – Мурманск, 2004. 82 с.Ефремов Д. А. Воспроизводство горбуши Oncorhynchus gorbusha в реках Белого моря и ее воздействие на аборигенные виды // Лососевые рыбы: биология, воспроизводство, промысел: материалы всероссийской научно-практической конференции (г. Мурманск, 23–24 марта 2023 г.) / Полярный филиал ФГБНУ «ВНИРО» («ПИНРО» им. НМ Книновича); научный редактор КМ Соколов – Мурманск: ПИНРО им. НМ Книновича, 2023. С. 123.Sandlund O. T., Berntsen H. H., Fiske P. et al. Pink salmon in Norway: the reluctant invader // Biological Invasions. 2019. Vol. 21. № 4. P. 1033 – 1054.Зелеников О. В. Гаметогенез тихоокеанских лососей. 1. Горбуша Oncorhynchus gorbuscha // Известия ТИНРО (Тихоокеанского научно-исследовательского рыбохозяйственного центра). 2023. Т. 203. № 3. C. 499–518.Gallagher Z. S., Bystriansky J. S., Farrell A. P., Brauner C. J. A novel pattern of smotification in the most anadromous salmonid: pink salmon (Oncorhynchus gorbuscha) // Canadian journal of fisheries and aquatic sciences. 2013. V. 70(3). C. 349–357.Grant A., Gardner M., Nendick L. et al. Growth and ionoregulatory ontogeny of wild and hatchery-raised juvenile pink salmon (Oncorhynchus gorbuscha) // Canadian Journal of Zoology. 2009. V. 87(3). C. 221–228.Heard W. R. Life history of pink salmon (Oncorhynchus gorbuscha) // Pacific salmon life histories. 1991. C. 119–230.Moore J. W., Gordon J., Carr-Harris C. et al. Assessing estuaries as stopover habitats for juvenile Pacific salmon // Marine Ecology Progress Series. 2016. V. 559. C. 201–215.Чурова М. В., Шульгина Н. С., Крупнова М. Ю., Ефремов Д. А., Немова Н. Н. Активность ферментов энергетического и углеводного обмена у молоди горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Walb.) при переходе из пресной среды в морскую // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. 2021. № 5. C. 470–478.Мурзина С. А., Нефедова З. А., Пеккова С. Н., Веселов А. Е., Ефремов Д. А., Руколайнен Т. Р., Немова Н. Н. Динамика содержания липидов и жирных кислот на ранних стадиях онтогенеза горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Walbaum, 1792) в естественных условиях (река Индера, Кольский п-ов). Онтогенез. 2019. Т. 50(4). C. 237–246.Linga Prabu D., Ebeneczar S., Kalidas C., Chandrasekar S., Vijayagopal P. Ethics and humane practices of bleeding and euthanasia for experimental marine fishes in fish nutrition research // Marine Fisheries Information Service, Technical and Extension Series. 2022. V. 252. P. 23–25.Folch J., Lees M., Sloan-Stanley G. H. A simple method for the isolation and purification of total lipids animal tissue (for brain, liver and muscle) // J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226. P. 497 – 509.Цыганов Э. П. Метод прямого метилирования липидов после ТСХ без элюирования с силикагелем // Лабор. Дело. 1971. № 8. C. 490 – 493.Monteiro G., Shu-Chien A. C., Kabeyn N., Tocher D. R., Castro L. F. C. Desaturases and elongases involved in long-chain polyunsaturated fatty acid biosynthesis in aquatic animals: From genes to functions // Progress in lipid research. 2022. V. 86, 101157.Hallioglu H. I., Bayur A., Sirkecioglu A. N., Aras N. M., Atamanap M. Comparison of fatty acid composition in some tissues of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) living in seawater and freshwater // Food Chemistry. 2004. V. 86(1). P. 55–59.Tocher D. R. Fatty acid requirements in ontogeny of marine and freshwater fish. Aquac. Res. 2010. Vol. 41. P. 717 – 732.Sargent J. R., Tocher D. R., Bell J. G. The lipids // Fish Nutrition / Eds. Halver J.E., Hardy R.W., editors. 3rd ed. Academic Press; San Diego, CA, USA, 2002. P. 181 – 257.Киршова Е. А., Киршова П. И. Некоторые особенности питания молоди кожуча и микижи в период их покатной миграции // Сохранение биоразнообразия Камчатки и прилегающих морей: Материалы VII международной научной конференции, посвященной. 2006. C. 73–77.Шульгина Н. С., Юнева Т. В. Функциональная роль доказательственной кислоты в адаптации рыб // Первый симпозиум по экологической биохимии рыб (Ярославль, окт. 1987 г.) : тез. докл. Ярославль, 1987. C. 219–222.Рабинович А. Л. Температурная зависимость конформационных свойств опитомерных цепей природных липидов: компьютерное моделирование // Биофизика. 2008. Т. 53. Вып. 3. C. 426 – 433.Шульгина Н. С., Яковлева К. К. Гексаеновая кислота и естественная подвижность рыб // Журнал общей биологии. 1983. № 44(4). C. 529–540.Архипов А. В. Изменение обмена липидов у кур в онтогенезе // Сельскохозяйственная биология. 1980. Т. 15. № 5. C. 756 – 761.