Ecological geneticsEcological geneticsЭкологическая генетика1811-09322411-9202Eco-Vector539510.17816/ecogen7219-25ArticlesСтатьиResearch ArticlePolymorphism among Sinorhizobium meliloti isolates native to the origins of alfalfa diversity differed in soil-climate characteristicsПОЛИМОРФИЗМ ШТАММОВ SINORHIZOBIUM MELILOTI, ВЫДЕЛЕННЫХ В ЦЕНТРАХ РАЗНООБРАЗИЯ ЛЮЦЕРНЫ, РАЗЛИЧАЮЩИХСЯ ПО ПОЧВЕННО-КЛИМАТИЧЕСКИМ УСЛОВИЯМRoumiantsevaMarina LРумянцеваМарина Львовнаgenet@yandex.ruOnishchukOlga PОнищукОльга Петровнаolony@yandex.ruBelovaViktoriya SБеловаВиктория Спартаковнаgenet@yandex.ruKurchakOksana NКурчакОксана Николаевнаgenet@yandex.ruSimarovBoris VСимаровБорис Васильевичgenet@yandex.ruAll-Russia Research Institute for Agricultural Microbiology, Saint-Petersburg, RFВсероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии, Санкт-Петербург, РФ1506200972VOL 7, NO2 (2009)ТОМ 7, №2 (2009)192514112016Copyright ©; 2009, Roumiantseva M.L., Onishchuk O.P., Belova V.S., Kurchak O.N., Simarov B.V.Copyright ©; 2009, Румянцева М.Л., Онищук О.П., Белова В.С., Курчак О.Н., Симаров Б.В.2009Roumiantseva M.L., Onishchuk O.P., Belova V.S., Kurchak O.N., Simarov B.V.Румянцева М.Л., Онищук О.П., Белова В.С., Курчак О.Н., Симаров Б.В.http://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://journals.eco-vector.com/ecolgenet/article/view/5395

Sinorhizoboium meliloti populations native to the 4 distinct gene centers (GC) of alfalfa were explored toward the tolerance to salinity, cryptic plasmid profiles and symbiotic properties. The significant correlations detected among nodule (N) and trapped (T) isolates related to the similar or distinct populations. more than 60 % N- and 77 % T-isolates tolerant to 3,5 % NaCl; salt tolerant N-isolates formed effective symbiosis with Medicago sativa and M. truncatula significantly more often. Isolates native to the GC area next to aral Sea had possessed the reduced level of salt tolerance in comparison with the isolates originated from Central asian, North-Caucasian and Europe-Siberian GC; that, has related to adaptation processes, which have ensured their viability in extremely salted soils.<img src="http://elibrary.ru/pic/1pix.gif" />

Анализ солеустойчивости, составов плазмид и симбиотических свойств у изолятов Sinorhizoboium meliloti, выделенных в 4-х генцентрах (Гц) люцерны, выявил достоверные различия между клубеньковыми (к) и почвенными (П) субпопуляциями. более 60 % к- и 77 % П-изолятов устойчивы к 3,5 % NaCl; солеустойчивые к-изоляты достоверно чаще формировали эффективный симбиоз с Medicago sativa и M. truncatula. Изоляты S. meliloti из Приаральского Гц имели сниженный уровень солеустойчивости в сравнении с изолятами из Среднеазиатского, Северо-кавказского и Европейско-Сибирского Гц, что связано с адаптационными процессами, обусловившими их жизнеспособность в экстремально засоленных почвах.<img src="http://elibrary.ru/pic/1pix.gif" />

MEDICAGO SATIVAM. TRUNCATULAСОЛЕУСТОЙЧИВОСТЬ КЛУБЕНЬКОВЫХ БАКТЕРИЙПОПУЛЯЦИИКРИПТИЧЕСКИЕ ПЛАЗМИДЫЭФФЕКТИВНОСТЬ СИМБИОЗАВавилов Н. И., 1926. Центры происхождения культурных растений//Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. Т. 16. Вып. 2. С. 3-248.Жуковский П. М., 1971. Мировой генофонд растений для селекции. В книге: Вавилов и сельскохозяйственная наука. Москва. Колос. C. 120-202.Иванов А. И., 1980. Люцерна. Москва. Колос. 350 с.Мишустин Е. Н., Шильникова В. К., 1973. Клубеньковые бактерии и инокуляционный процесс. -М.: Наука. С. 288.Проворов Н. А., Воробьев Н. И., Андронов Е.Е., 2008. Макро-и микроэволюция бактерий в системах симбиоза//Генетика. T. 44. № 1. C. 1-16.Румянцева М. Л., 2009. Генетические ресурсы клубеньковых бактерий люцерны (обзор)//Генетика. 2009. Т. 45. № 9. С. 1-15.Федоров С. Н., Бутвина О. Ю., Симаров Б. В., 1983. Мутагенное действие УФ-излучения на клубеньковые бактерии люцерны и анализ симбиотических свойств полученных ауксотрофных мутантов//Генетика. Т. 19. С. 727-736.Aguilar O. M., Riva O., Peltzer E., 2004. Analysis of Rhizobium etli and of its symbiosis with wild Phaseolus vulgaris supports coevolution in centres of host diversification//PNAS. Vol. 101. N 37. Р. 13548-13553.Bena G., Liet A., Huguet T., Olivieri I., 2005. Medicago-Sinorhizobium symbiotic specificity evolution and the geographic expansion of Medicago//J. Evol. Biol. Vol. 18. P. 1547-1558.Bever J. D., Simms E. L. 2000. Evolution of nitrogen fixation in spatially structured populations of rhizobium//Heredity. Vol. 85. P. 366-372.Boncompagni E, Osteras M, Poggi MC, le Rudulier D., 1999. Occurrence of choline and glycine betaine uptake and metabolism in the family rhizobiaceae and their roles in osmoprotection//Appl. Environ. Microbiol. Vol. 65. N 5. P. 2072-2077.Bromfield E. S. P., Barran L. R., Wheatcroft R., 1995. Relative genetic structure of a population of Rhizobium meliloti isolated directly from soil and from nodules of alfalfa (Medicago sativa) and sweet clover (Melilotus alba)//Mol. Ecol. Vol. 4. P. 183-188.Gage D. J. 2004. Infection and nvasion of roots by symbiotic, nitrogen-fixing rhizobia during nodulation of temperate legumes // Microbiol Mol Biol Re.Vol. 68 N 2. P. 280-300. FAO, 2005. Crops and drops: making the best use of water for agriculture // Rome. P. 22.Jimйnez-Zurdo JI, Garcнa-Rodrнguez FM, Toro N., 1997. The Rhizobium meliloti putA gene: its role in the establishment of the symbiotic interaction with alfalfa//Mol Microbiol. Vol. 23. № 1. P. 85-93.Hartmann A., Giraud J. J., Catroux G., 1998. Genotypic diversity of Sinorhizobium (formely Rhizobium) meliloti strains isolated directly from soil and from nodules of alfalfa (Medicago sativa) grown in the same soil//FEMS Microbiol. Ecol. Vol. 25. P. 107-116.Galibert F., T. M. Finan S. R. Long A. et al., 2001. The composite genome of the legume symbiont Sinorhizobium meliloti//Science. Vol. 293. P. 668-672.Mahajan S, Tuteja N., 2005 Cold, salinity and drought stresses: an overview//Arch Biochem Biophys. Vol. 444. N 2. P. 139-158.Molbak L., Molin S, Kroer N., 2007. Root growth and exudate production define the frequency of horizontal plasmid transfer in the Rhizosphere//FEMS Microbiol Ecol. Vol. 59. N 1. P. 167-176.Percuoco S., Salzano G., Percuoco G., 1990. Plasmids and symbiotic properties in Rhizobium leguminosarum biovar viciae field isolates//Ann. Microbiol. Vol. 40. P. 141-154.Roumiantseva M. L., Andronov E. E., Sharypova L. A. et al., 2002. Diversity of Sinorhizobium meliloti from the Central Asian alfalfa gene center//Appl. EnVol. Microbiol. Vol. 68. N 9. P. 4694-4697.Stiens M., Schneiker S., Pühler A., Schlьter A., 2007. Sequence analysis of the 181-kb accessory plasmid pS-meSM11b, isolated from a dominant Sinorhizobium meliloti strain identified during a long-term field release experiment//FEMS Microbiol. Lett. Vol. 271. N 2. P. 297-309.Teplitski M., Robinson J. B., Bauer W. D., 2000. Plants secrete substances that mimic bacterial N-acyl homoserine lactone signal activities and affect population density-dependent behaviors in associated bacteria//Mol Plant Microbe Interact. Vol. 13. N 6. P. 637-648.Yan A. M., Wang E. T., Kan F. L. et al, 2000. Sinorhizobium meliloti associated with Medicago sativa and Melilotus sp. in arid saline soils in Xinjiang, China//Int. J. Syst. Evol. Microbiol. Vol. 50 № 5, P. 1887-1891.Zahran H. H., 2001. Rhizobia from wild legumes: diversity, taxonomy, ecology, nitrogen fixation and biotechnology//J. Biotechnol. Vol. 91. № 2-3. Р. 143-153.Андронов Е.Е., Румянцева М. Л., Сагуленко В. В., Симаров Б. В., 1999. Влияние растения-хозяина на генетическое разнообразие природной популяции Sinorhizobium meliloti//Генетика. T. 35, № 10. С. 1169-1176.Ибрагимова М. В., Румянцева М. Л., Онищук О. П. и др., 2006. Симбиоз клубеньковых бактерий Sinorhizobium meliloti с люцерной Medicago sativa в условиях засоления//Микробиология. Т. 75. № 1. С. 94-100.