Experimental purulent corneal ulcer in rabbits as a model to study ocular dosage forms

Full Text

Зрение — один из важнейших факторов выживания человека, позволяющий получить информацию об окружающем мире. Заболевания роговицы, поражая трудоспособное население, являются социально-значимой проблемой, так как в структуре глазной патологии занимают более 35% [1, 2].
Роговица подвержена повышенной опасности, потому что выступает в роли защитного барьера для внутренних структур глаза. Она препятствует проникновению не только инородных тел, но и лекарственных препаратов [3, 4].

Этиопатогенетические факторы, приводящие к нарушению прозрачности и целостности роговой оболочки глаза, могут быть весьма разнообразны [5]. К ним относятся воспалительные заболевания, травмы органов зрения и дистрофические изменения [6]. Из-за развития осложнений, таких как появление вторичной инфекции, грубое ­помутнение (бельмо), васкуляризация различной степени, функции поражённого глаза ухудшаются [7].

Создание эффективных методов лечения воспалительных процессов, вызванных травмами органов зрения, — актуальная задача современной офтальмологии. Моделирование экспериментальной гнойной язвы роговицы у кроликов можно взять за основу при разработке новых терапевтических подходов. Такие исследования важны не только для лечения глазных травм у человека [8], но и у домашних животных [9].

Ранее Колесников и соавт. [10] сообщали об использовании экспериментальной гнойной язвы роговицы и биохимическом исследовании воспалительного процесса. Авторами показано, что развитие стафилококковой язвы сопровождается повышением уровня малонового диальдегида, которое свидетельствует о местном и системном окислительном стрессе. Помимо этого, установлена связь между концентрацией малонового диальдегида в лизате эритроцитов и роговице, что легло в основу разработки патогенетически-ориентированного применения антиоксидантов при гнойной язве роговицы. В другом сообщении того же автора [11] было отмечено, что применение ципрофлоксацина не предотвращает развития окислительного стресса в ранние сроки, тогда как ацетилцистеин в комплексной терапии снижает выраженность местного окислительного стресса.

В результате вышеизложенного следует, что в патогенетической терапии нужно учитывать эти нюансы при различных стадиях патологического процесса.

В данной работе нами было проведено исследование развития инфекционного процесса при экспериментальной гнойной язве роговицы у кроликов путём ежедневного контроля температуры тела и отбора микробиологических проб на золотистый стафилококк, а также объективных показателей клинической картины.

Экспериментальные исследования проведены на глазах 30 половозрелых кроликов породы шиншилла с массой тела 2500–3300 г. Наблюдение, уход, операции на животных, а также выведение их из эксперимента производили в соответствии с «Конвенцией по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других научных целей», принятой Советом Европы [12]. Данные эксперименты были одобрены этическим комитетом Государственного медицинского университета (г. Семей, выписка из протокола №4 от 14.10.2015).

В каждой серии экспериментов у кроликов развитие гнойной язвы роговицы вызывали только на левом глазу, правый выступал в качестве контроля. Все животные находились в стандартных условиях содержания, на стандартном питании в виварии учебно-методической лаборатории Государственного медицинского университета (г. Семей, Республика Казахстан). Температуру тела кроликов измеряли ректально перед нанесением травмы и ежедневно в ходе 10-дневного эксперимента (электронный термометр производства Шеринг, Республика Казахстан). Все кролики были разделены на три группы (по 10 особей в каждой):
– первая — контрольная (без нанесения травмы и без лечения);
– вторая — экспериментальная (с нанесением травмы, но без лечения);
– третья — экспериментальная (с нанесением травмы с последующим лечением антибиотиком).

Развитие экспериментальной гнойной язвы роговицы вызывали путём нанесения травмы по методике, адаптированной из работ А.В. Колесникова и соавт. [10, 11]. При нанесении травмы кролики находились в специальной деревянной коробке с отверстием для головы. После местной анестезии 0,4% раствором оксибупрокаина (инокаина; три инстилляции 2 капель препарата в левый глаз кролика с интервалом 15 с) при помощи скальпеля в центральных отделах роговицы наносили насечку длиной 5 мм, которая приводила к расслоению роговицы. Далее в полученный дефект втирали 1 стандартную петлю [107–108 колониеобразующих единиц (КОЕ)] чистой культуры золотистого стафилококка. Через сутки на всех экспериментальных глазах развивались типичные гнойные язвы роговицы.

Стафилококк для эксперимента был взят из бактериологической лаборатории Казённого государственного коммунального предприятия «Инфекционная больница г. Семей» (Республика Казахстан), который был выращен на скошенной желточно-солевой среде в течение 3 сут. Далее через сутки после вызванной травмы глаза и затем ежедневно в течение 9 дней делали мазок стерильным ватным тампоном, и материал транспортировали в течение 12 ч в лабораторию в стерильной пробирке в молочно-солевой среде. В ходе эксперимента пробирку после забора материала содержали в термостате при температуре 37 °С.

С доставкой пробирки в лабораторию в течение 2 ч содержимое пересевали штрихом для обильного роста на желточно-солевой агар и затем помещали в термостат при температуре 37 °С на 2 сут. В течение этого времени бактерии образовывали колонии, окружённые зоной полного гемолиза, которые имели золотистый оттенок. При хорошем освещении их можно увидеть в виде радужного венчика.

На третьем этапе из выросших колоний делали мазок на предметном стекле для окрашивания по Граму и микроскопирования. При наличии в мазке чистой культуры стафилококка оставшуюся часть пересевали на мясо-пептонный агар для идентификации со стрептококком (проба на каталазу — стафилококк выделяет пузырьки). Готовые колонии стафилококка представляли собой округлые диски ­средней величины, ­гомогенной или мелкозернистой структуры.

В третьей группе кроликов лечение гнойной язвы левого глаза проводили с помощью инстилляций 2 капель 0,3% раствора ципрофлоксацина (ципролета, производство «Доктор Редди'c», Индия) как модельного антибактериального препарата, 4 раза в день. В контрольный глаз инстиллировали дистиллированную воду в том же режиме.

За каждой группой животных наблюдали в течение 10 сут. Затем животных второй и третьей групп выводили из эксперимента методом воздушной эмболии под тиопенталовым наркозом (инъекция раствора тиопентала натрия из расчёта 40 мг/кг массы тела в краевую вену уха кроликов). Извлечённые роговицы помещали в 1% раствор формалина для дальнейшего изучения патоморфологических изменений. Статистическую обработку полученных результатов выполняли с помощью пакета прикладных программ GraphPad Prism 7.04 (t-test).

Степень выраженности воспалительной реакции в опытной группе с лечением и отсутствием лечения была различной. Так, через сутки у всех кроликов в экспериментальной группе без лечения были зарегистрированы гнойное ­отделяемое, ­умеренный отёк век и выраженная смешанная инъецированность сосудов глазного яблока. По центру роговицы сформировался средней интенсивности гнойный инфильтрат желтоватого цвета около 5 мм в диаметре.

При закапывании 1 мг/мл раствора флуоресцеина в дистиллированной воде на 2-е сутки после нанесения травмы определялся дефект эпителия размером 4–4,5 мм, соответствующий инфильтрату. Вокруг инфильтрата был перифокальный отёк, при этом отмечалось появление диффузной инфильтрации стромы окружающих отделов роговицы.

Рис. 1 демонстрирует наличие всех симптомов на протяжении 10 дней в группе без лечения.

 

Рис. 1. Фотографии глаз кроликов, демонстрирующие развитие экспериментальной гнойной язвы (без лечения) на 1-е, 5-е и 10-е сутки после травмы

 

На 5-е сутки сохранялся умеренный отёк век, гнойное отделяемое несколько уменьшалось, при этом сохранялась выраженная смешанная инъецированность сосудов глазного яблока. Интенсивность гнойной инфильтрации роговицы и перифокальная реакция нарастали, диффузная инфильтрация стромы также несколько увеличивалась.

В 90% случаев у животных с наиболее тяжёлым процессом в отдельных секторах появилась смешанная васкуляризация роговицы протяжённостью до 2–2,5 мм от лимба. На 10-е сутки на веках сохранялось небольшое гнойное отделяемое, а также отмечалась умеренная смешанная инъецированность сосудов склеры. Инфильтрат уменьшался по площади и интенсивности. При анализе всех данных в экспериментальной группе кроликов без лечения в 90% случаев развился язвенный дефект роговицы, разный по площади и глубине.

Экспериментальная группа кроликов, леченных каплями ципрофлоксацина, имела картину, отличную от той, в которой антибактериальный препарат не использовали. Так, несмотря на своевременно начатое лечение, в течение 12–24 ч после нанесения травмы было зафиксировано развитие гнойной язвы. На рис. 2 видны все признаки стадии инфильтрации.

 

Рис. 2. Фотографии глаз кроликов, демонстрирующие развитие экспериментальной гнойной язвы (с лечением антибиотиком) на 1-е, 5-е и 10-е сутки после травмы

 

При монотерапии ципрофлоксацином с 1-х суток патологии в течение 12–24 ч также было отмечено развитие гнойной язвы с различной степенью гнойного отделяемого у 90% подопытных животных. По сравнению с группой, где лечение антибиотиком не проводили, уровень отёка век был умеренным, нарастание выделений зарегистрировано в 70% случаев. На 5-е сутки интенсивность инфильтрации и смешанная инъецированность сосудов глазного яблока также отмечены у 80% животных. Гнойное отделяемое уменьшилось у 3 (30%) кроликов. На 10-е сутки наблюдения экспериментальной группы с лечением гнойное отделяемое было зафиксировано у 40%, при этом зарегистрирована лёгкая смешанная инъецированность сосудов глазного яблока. Инфильтрат уменьшился в размерах у 60% кроликов.

Для бактериологического анализа на стафилококк в ходе экспериментов в экспериментальных группах проводили ежедневный забор микробиологических проб стафилококка для дальнейшего посева в условиях лаборатории. На рис. 3 показано изменение показателей КОЕ со временем (на протяжении 10 дней).

 

Рис. 3. Изменение уровня стафилококка (колониеобразующие единицы — КОЕ) в глазах кроликов в экспериментальных группах (с лечением и без него) в зависимости от времени

 

Показатель КОЕ в группе с нанесённой травмой и без лечения антибиотиком на момент внесения культуры стафилококка и на 10-й день эксперимента составил 1,0×107 и 4,3×106 КОЕ соответственно, что не показало статистически значимой разницы (p >0,1). В экспериментальной группе с использованием антибиотика эти показатели составляли 1,0×107 и 4,6×103 КОЕ соответственно, что свидетельствовало о статистически значимом снижении концентрации стафилококка в глазу (p <0,0001). Эти результаты отлично коррелируют с изменением температуры тела у кроликов.

Для количественной оценки характера воспалительного процесса в ходе экспериментов у кроликов проводили измерения ректальной температуры. Среднее значение температуры в контрольной группе без нанесения травмы составило 38,6±0,1 °С, что согласуется с литературными данными для кроликов породы шиншилла [13].
Рис. 4 отображает изменение температуры в экспериментальных (с лечением и без него) и контрольной группах со временем.

 

Рис. 4. Изменение ректальной температуры кроликов в контрольной и экспериментальной группах в зависимости от времени, прошедшего с момента нанесения травмы роговицы

 

Результаты такого анализа показывают, что в экспериментальной группе без лечения происходили стойкое повышение температуры в течение первых 4 дней до 40,3±0,3 °С и удержание на данном уровне до 8-го дня. Далее зарегистрировано её постепенное снижение, при этом температура на 10-е сутки составила 39,6±0,1 °С, что указывает на продолжение воспалительного процесса.

При использовании капель ципрофлоксацина изменение температуры тела кроликов имело иной характер. Повышение температуры зафиксировано в течение 3 сут, достигая 39,6±0,2 °С, а затем произошло её закономерное снижение. На 10-е сутки эксперимента средняя температура тела кроликов, получавших лечение антибиотиком, составила 38,6±0,1 °С, что соответствует значениям, характерным для здоровых животных.

После выведения животных из эксперимента их глаза извлекали и проводили патоморфологическое исследование. Согласно данным микроскопического исследования извлечённой роговицы, язва на фоне применения ципрофлоксацина не поддавалась положительной динамике и распространялась как по глубине, так и по площади поражения. При гистологическом исследовании энуклеированных глаз кроликов с гнойными язвами роговицы были выявлены изъязвления роговицы, отёк, расслоение, глубокие дефекты эпителия, десквамация эндотелия и инфильтрация роговицы нейтрофилами.

Язвы роговицы зафиксированы с прободением в 30% и без прободения в 70% случаев. При исследовании глаз с прободением язвы отмечали перфорацию роговицы с выпадением подлежащих оболочек, тампонаду ими отверстия и инфильтрацию всех слоёв роговицы нейтрофилами. Полученные результаты патоморфологического анализа указывают на наличие воспалительного процесса на всех травмированных роговицах у кроликов, получавших и не получавших лечение.

Выводы

1. Формирование экспериментальной гнойной язвы роговицы приводит к повышению температуры тела кроликов, которая изменяется и зависит от своевременно начатого лечения. Измерение температуры тела кроликов ректально в ходе развития гнойной язвы роговицы можно использовать как критерий оценки воспалительного процесса.

2. Бактериологический анализ подсчёта колоний золотистого стафилококка показывает, что с лечением происходит снижение роста бактерий, тогда как без лечения этого нет. Полученные результаты патоморфологического анализа указывают на наличие воспалительного процесса на всех травмированных роговицах у кроликов, получавших лечение и не получавших.

3. Экспериментальная гнойная язва роговицы у кроликов может быть предложена в качестве модели для исследования новых лекарственных форм для лечения глазной патологии.

 

Авторы выражают благодарность сотрудникам Государственного медицинского университета г. Семей (Республика Казахстан) А.О. Изгутеновой и к.м.н. С.А. Апбасовой за техническую помощь в проведении экспериментов и патоморфологического анализа соответственно.

Конфликт интересов отсутствует.

About the authors

E K Ozhmukhametova

Semey State Medical University

Author for correspondence.
Email: v.khutoryanskiy@reading.ac.uk
Semey, Republic of Kazakhstan

M N Mussin

Semey State Medical University

Email: v.khutoryanskiy@reading.ac.uk
Semey, Republic of Kazakhstan

A Bayachmetov

Semey State Medical University

Email: v.khutoryanskiy@reading.ac.uk
Semey, Republic of Kazakhstan

B Adambosynov

Semey State Medical University

Email: v.khutoryanskiy@reading.ac.uk
Semey, Republic of Kazakhstan

V V Khutoryanskiy

Reading School of Pharmacy, University of Reading

Email: v.khutoryanskiy@reading.ac.uk
Whiteknights, Reading, United Kingdom

References

Supplementary files