Факторы риска развития эндофтальмитов при факоэмульсификации катаракты (обзор литературы)

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Наиболее частые источники заноса микробной флоры внутрь глазного яблока — глазная поверхность, очаги параокулярной инфекции пациента. В посевах стекловидного тела при эндофтальмитах обнаруживают микроорганизмы, являющиеся сапрофитной флорой глазной поверхности. В основном она представлена стафилококками, из которых количественно преобладает эпидермальный стафилококк. Иммунодефицитные состояния, сахарный диабет, терминальные заболевания печени и почек повышают риск развития эндофтальмита. Эрадикация условно-патогенной флоры в локусах-источниках, санация очагов параокулярной инфекции, коррекция соматической патологии профильными специалистами более актуальна для профилактики эндофтальмита. Необходимо учитывать проблему растущей антибиотикорезистентности. Таким образом, при отборе пациентов на операцию следует руководствоваться данными об устойчивости к антибиотикам выделенной флоры, обращать внимание на наличие очагов инфекции и общесоматическое состояние пациента. Это позволит дать более правильный вектор развития рекомендации по оптимальной профилактике.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Татьяна Юрьевна Богданова

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Автор, ответственный за переписку.
Email: kalistayaros@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6545-3092

врач-офтальмолог отделения неотложной помощи (хирургии катаракты) клиники офтальмологии

Россия, Санкт-Петербург

Алексей Николаевич Куликов

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: alexey.kulikov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5274-6993
SPIN-код: 6440-7706

д-р мед. наук, профессор, начальник кафедры (клиники) офтальмологии им. В.В. Волкова

Россия, Санкт-Петербург

Екатерина Владимировна Даниленко

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: danilka83@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-8211-6327
SPIN-код: 1871-3060

канд. мед. наук, врач-офтальмолог, заведующая отделением неотложной помощи (хирургии катаракты) клиники офтальмологии

Россия, Санкт-Петербург

Елена Николаевна Колосовская

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: Kolosovskaya@yandex.ru
SPIN-код: 3348-5290

д-р мед. наук, доцент, начальник отдела санитарного-эпидемиологического надзора

Россия, Санкт-Петербург

Людмила Александровна Краева

Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера

Email: lykraeva@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9115-3250
SPIN-код: 4863-4001

д-р мед. наук, заведующая лабораторией медицинской бактериологии; профессор кафедры микробиологии

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Казайкин В.Н., Пономарев В.О., Тахчиди Х.П. Современные аспекты лечения острых бактериальных послеоперационных эндофтальмитов // Офтальмология. 2017. Т. 1, № 14. С. 12–17. doi: 10.18008/1816-5095-2017-1-12-17
  2. Garg P., Roy A., Sharma S. Endophthalmitis after cataract surgery: epidemiology, risk factors, and evidence on protection // Curr Opin Ophthalmol. 2017. Vol. 28, No. 1. P. 67–72. doi: 10.1097/ICU.0000000000000326
  3. Shi S.-L., Yu X.-N., Cui Y.-L., et al. Incidence of endophthalmitis after phacoemulsification cataract surgery: a meta-analysis // Int J Ophthalmol. 2022. Vol. 15, No. 2. P. 327–335. doi: 10.18240/ijo.2022.02.20
  4. Antimicrobial Resistance Collaborators. Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a systematic analysis // The Lancet. 2022. Vol. 399, No. 10325. P. 629–655. doi: 10.1016/S0140-6736(21)02724-0
  5. Kato J.M., Tanaka T., de Oliveira L.M.S., et al. Surveillance of post-cataract endophthalmitis at a tertiary referral center: a 10-year critical evaluation // Int J Retin Vitr. 2021. Vol. 7. ID 4. doi: 10.1186/s40942-021-00280-1
  6. Teng Y.T., Teng M.C., Kuo H.K., et al. Isolates and antibiotic susceptibilities of endophthalmitis in postcataract surgery: a 12-year review of culture-proven cases // Int Ophthalmol. 2017. Vol. 37, No. 3. P. 513–518. doi: 10.1007/s10792-016-0288-2
  7. Joseph J., Sontam B., Guda S.J.M., et al. Trends in microbiological spectrum of endophthalmitis at a single tertiary care ophthalmic hospital in India: a review of 25 years // Eye. 2019. Vol. 33, No. 7. P. 1090–1095. doi: 10.1038/s41433-019-0380-8
  8. Solborg Bjerrum S., Hamoudi H., Friis-Møller A., la Cour M. A Prospective study on the clinical and microbiological spectrum of endophthalmitis in a specific region in Denmark // Ophthalmologica. 2016. Vol. 235, No. 1. P. 26–33. doi: 10.1159/000441662
  9. Кочергин С.А., Чернакова Г.М., Клещева Е.А., и др. Иммунитет глазного яблока и конъюнктивальная микрофлора // Инфекция и иммунитет. 2012. Т. 2, № 3. С. 635–644.
  10. Simina D.S., Larisa I., Otilia C., Ghita A.C. The ocular surface bacterial contamination and its management in the prophylaxis of post cataract surgery endophthalmitis // Rom J Ophthalmol. 2021. Vol. 65, No. 1. P. 2–9. doi: 10.22336/rjo.2021.2
  11. Barry P., Cordoves L., Susanne G. ESCRS Guidelines for prevention and treatment of endophthalmitis following cataract surgery: data, dilemmas and conclusions 2013. Dublin: ESCRS, 2013. 51 p.
  12. Willcox M.D.P. Characterization of the normal microbiota of the ocular surface // Exp Eye Res. 2013. Vol. 117. P. 99–105. doi: 10.1016/j.exer.2013.06.003
  13. Eom Y., Na K.S., Hwang H.S., et al. Clinical efficacy of eyelid hygiene in blepharitis and meibomian gland dysfunction after cataract surgery: a randomized controlled pilot trial // Sci Rep. 2020. Vol. 10, No. 1. ID11796. doi: 10.1038/s41598-020-67888-5
  14. Peral A., Alonso J., García-García C., et al. Importance of lid hygiene before ocular surgery: qualitative and quantitative analysis of eyelid and conjunctiva microbiota // Eye and Contact Lens: Sci Clin Pract. 2016. Vol. 42, No. 6. P. 366–370. doi: 10.1097/ICL.0000000000000221
  15. Ye T., Chen W., Congdon N., Liu Y. Increase in microbial contamination risk with compression of the lid margin in eyes having cataract surgery // J Cataract Refract Surg. 2014. Vol. 40, No. 8. P. 1377–1381. doi: 10.1016/j.jcrs.2013.11.046
  16. Lopez P.F., Beldavs R.A., al-Ghamdi S., et al. Pneumococcal endophthalmitis associated with nasolacrimal obstruction // Am J Ophthalmol. 1993. Vol. 116, No. 1. P. 56–62. doi: 10.1016/s0002-9394(14)71744-1
  17. Zemba M., Papadatu C.A., Enache V.E., Sarbu L.N. Suprafaţa oculară la pacienţii cu tratament antiglaucomatos topic // Oftalmologia. 2011. Vol. 55, No. 3. P. 94–98.
  18. Wong A.B.C., Wang M.T.M., Liu K., et al. Exploring topical anti-glaucoma medication effects on the ocular surface in the context of the current understanding of dry eye // The Ocular Surface. 2018. Vol. 16, No. 3. P. 289–293. doi: 10.1016/j.jtos.2018.03.002
  19. Arita R., Itoh K., Maeda S., et al. Effects of long-term topical anti-glaucoma medications on meibomian glands // Graefe’s Arch Clin Exp Ophthalmol. 2012. Vol. 250, No. 8. P. 1181–1185. doi: 10.1007/s00417-012-1943-6
  20. Lu Q., Lu Y., Zhu X. Dry eye and phacoemulsification cataract surgery: a systematic review and meta-analysis // Front Med. 2021. Vol. 8. ID649030. doi: 10.3389/fmed.2021.649030
  21. Jung J.W., Han S.J., Nam S.M., et al. Meibomian gland dysfunction and tear cytokines after cataract surgery according to preoperative meibomian gland status // Clin Exp Ophthalmol. 2016. Vol. 44, No. 7. P. 555–562. doi: 10.1111/ceo.12744
  22. Ram J., Sharma A., Pandav S., et al. Cataract surgery in patients with dry eyes // J Cataract Refract Surg. 1998. Vol. 24, No. 8. P. 1119–1124. doi: 10.1016/s0886-3350(98)80107-7
  23. Бойко Э.В., Сосновский С.В., Харитонова Н.Н., и др. Оценка влияния очагов параокулярной инфекции на течение пролиферативной витреоретинопатии и рецидивирование отслоек сетчатки // Вестник офтальмологии. 2008. Т. 124, № 4 С. 45–48.
  24. Попова Е.В., Фабрикантов О.Л. Анализ случаев эндофтальмита в Тамбовском филиале «ФГАУ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Фёдорова» // Вестник Тамбовского университета. 2017. Т. 22, № 4. С. 704–707. doi: 10.20310/1810-0198-2017-22-4-704-707
  25. Chau S.-F., Lee C.-Y., Huang J.-Y., et al. The existence of periodontal disease and subsequent ocular diseases: a population-based cohort study // Medicina. 2020. Vol. 56, No. 11. ID 621. doi: 10.3390/medicina56110621
  26. Matsuo T., Nakagawa H., Matsuo N. Endogenous Aspergillus endophthalmitis associated with periodontitis // Ophthalmologica. 1995. Vol. 209, No. 2. P. 109–111. doi: 10.1159/000310592
  27. Cunningham E.T. Jr., Flynn H.W., Relhan N., Zierhut M. Endo genous endophthalmitis // Ocul Immunol Inflamm. 2018. Vol. 26, No. 4. P. 491–495. doi: 10.1080/09273948.2018.1466561
  28. Bawankar P., Bhattacharjee H., Barman M., et al. Outbreak of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa endophthalmitis due to contaminated trypan blue solution // J Ophthalmic Vis Res. 2019. Vol. 14, No. 3. P. 257–266. doi: 10.18502/jovr.v14i3.4781
  29. Hoffmann K.K., Weber D.J., Gergen M.F., et al. Pseudomonas aeruginosa-related postoperative endophthalmitis linked to a contaminated phacoemulsifier // Arch Ophthalmol. 2002. Vol. 120, No. 1. P. 90–93.
  30. Pershing S., Lum F., Hsu S., et al. Endophthalmitis after cataract surgery in the United States: a report from the intelligent research in sight registry, 2013–2017 // Ophthalmology. 2020. Vol. 127, No. 2. P. 151–158. doi: 10.1016/j.ophtha.2019.08.026
  31. Ramappa M., Majji A.B., Murthy S.I., et al. An outbreak of acute post-cataract surgery Pseudomonas sp. endophthalmitis caused by contaminated hydrophilic intraocular lens solution // Ophthalmology. 2012. Vol. 119, No. 3. P. 564–570. doi: 10.1016/j.ophtha.2011.09.031
  32. Sohajda Z., Mályi K. Multirezisztens kórokozók szűrése szürkehályog-műtét előtt Screening for multiresistant pathogens before cataract surgery // Orvosi Hetilap. 2021. Vol. 162, No. 3. P. 106–111. doi: 10.1556/650.2021.31941
  33. Inagaki K., Yamaguchi T., Ohde S., et al. Bacterial culture after three sterilization methods for cataract surgery // Jpn J Ophthalmol. 2013. Vol. 57, No. 1. P. 74–79. doi: 10.1007/s10384-012-0201-0
  34. Cao H., Zhang L., Li L., Lo S. Risk factors for acute endophthalmitis following cataract surgery: a systematic review and meta-analysis // PLoS One. 2013. Vol. 8, No. 8. ID e71731. doi: 10.1371/journal.pone.0071731
  35. Kodjikian L., Beby F., Rabilloud M., et al. Influence of intraocular lens material on the development of acute endophthalmitis after cataract surgery? // Eye. 2008. Vol. 22, No. 2. P. 184–193. doi: 10.1038/sj.eye.6702544
  36. Krall E.M., Arlt E.M., Jell G., et al. Intraindividual aqueous flare comparison after implantation of hydrophobic intraocular lenses with or without a heparin-coated surface // J Cataract Refract Surg. 2014. Vol. 40, No. 8. P. 1363–1370. doi: 10.1016/j.jcrs.2013.11.043
  37. Chiquet C., Musson C., Aptel F., et al. Genetic and Phenotypic Traits of Staphylococcus Epidermidis Strains Causing Postcataract Endophthalmitis Compared to Commensal Conjunctival Flora // Am J Ophthalmol. 2018. Vol. 191. P. 76–82. doi: 10.1016/j.ajo.2018.03.042
  38. Baillif S., Ecochard R., Casoli E., et al. Adherence and kine tics of biofilm formation of Staphylococcus epidermidis to different types of intraocular lenses under dynamic flow conditions // J Cataract Refract Surg. 2008. Vol. 34, No. 1. P. 153–158. doi: 10.1016/j.jcrs.2007.07.058
  39. Menikoff J.A., Speaker M.G., Marmor M., Raskin E.M. A case-control study of risk factors for postoperative endophthalmitis // Ophthalmology. 1991. Vol. 98, No. 12. P. 1761–1768. doi: 10.1016/s0161-6420(91)32053-0
  40. Creuzot-Garcher C., Benzenine E., Mariet A., et al. Incidence of acute postoperative endophthalmitis after cataract surgery: a nationwide study in France from 2005 to 2014 // Ophthalmology. 2016. Vol. 123, No. 7. P. 1414–1420. doi: 10.1016/j.ophtha.2016.02.019
  41. Vasavada A.R., Praveen M.R., Pandita D., et al. Effect of stromal hydration of clear corneal incisions: quantifying ingress of trypan blue into the anterior chamber after phacoemulsification // J Cataract Refract Surg. 2007. Vol. 33, No. 4. P. 623–627. doi: 10.1016/j.jcrs.2007.01.010
  42. Belazzougui R., Monod S.D., Baudouin C., Labbé A. Ana lyse architecturale des incisions cornéennes par OCT Visante au cours des endophtalmies aiguës après chirurgie de la cataracte // Journal francais d’ophtalmologie. 2010. Vol. 33, No. 1. P. 10–15. doi: 10.1016/j.jfo.2009.11.010
  43. Низаметдинова Ю.Ш., Тахтаев Ю.В., Николаенко В.П. Влияние фемтосекундного лазера на самогерметизирующие свойства роговичного разреза различной протяжённости и профиля (экспериментальное исследование) // Офтальмологические ведомости. 2015. Т. 8, № 2. С. 41–46. doi: 10.17816/OV2015241-46
  44. Taban M., Rao B., Reznik J., et al. Dynamic morphology of sutureless cataract woundsdeffect of incision angle and location // Surv Ophthalmol. 2004. Vol. 49, No. 2–2. P. 62–72. doi: 10.1016/j.survophthal.2004.01.003
  45. Ng J.Q., Morlet N., Bulsara M.K., Semmens J.B. Reducing the risk for endophthalmitis after cataract surgery: population-based nested case-control study: endophthalmitis population study of Western Australia sixth report // J Cataract Refract Surg. 2007. Vol. 33, No. 2. P. 269–280. doi: 10.1016/j.jcrs.2006.10.067.
  46. Bandello F., Coassin M., Di Zazzo A., et al. One week of levofloxacin plus dexamethasone eye drops for cataract surgery: an innovative and rational therapeutic strategy // Eye. 2020. Vol. 34, No. 11. P. 2112–2122. doi: 10.1038/s41433-020-0869-1
  47. Бойко Э.В., Фокина Д.В., Рейтузов В.А., Алекперов С.И. Обоснование применения лечебных мягких контактных линз, насыщенных 5-фторхинолонами, в целях периоперационной профилактики инфекционных осложнений при факоэмульсификации // Офтальмологические ведомости. 2011. Т. 4, № 3. С. 11–17.
  48. Dave S., Toma H., Kim S. Changes in ocular flora in eyes exposed to ophthalmic antibiotics // Ophthalmology. 2013. Vol. 120, No. 5. P. 937–941. doi: 10.1016/j.ophtha.2012.11.005
  49. Шиловских О.В., Казайкин В.Н., Пономарев В.О., и др. Эффективность инстилляций антибактериальных препаратов в подавлении микрофлоры конъюнктивальной полости перед операциями на глазном яблоке // Практическая медицина. 2017. № 1. С. 196–201.
  50. Dorrepaal S.J., Gale J., El-Defrawy S., Sharma S. Resistance of ocular flora to gatifloxacin in patients undergoing intravitreal injections // Can J Ophthalmol. 2014. Vol. 49, No. 1. P. 66–71. doi: 10.1016/j.jcjo.2013.09.008
  51. Asbell P.A., DeCory H.H. Antibiotic resistance among bacterial conjunctival pathogens collected in the Antibiotic Resistance Monitoring in Ocular Microorganisms (ARMOR) surveillance study // PLoS One. 2018. Vol. 13, No. 10. ID e0205814. doi: 10.1371/journal.pone.0205814
  52. Starr C.E., Gupta P.K., Farid M., et al. An algorithm for the preoperative diagnosis and treatment of ocular surface disorders // J Cataract Refract Surg. 2019. Vol. 45, No. 5. P. 669–684. doi: 10.1016/j.jcrs.2019.03.023
  53. Fine I.H., Hoffman R.S., Packer M. Profile of clear corneal cataract incisions demonstrated by ocular coherence tomography // J Cataract Refract Surg. 2007. Vol. 33, No. 1. P. 94–97. doi: 10.1016/j.jcrs.2006.09.016
  54. Sykakis E., Karim R., Kinsella M., et al. Study of fluid ingress through clear corneal incisions following phacoemulsification with or without the use of a hydrogel ocular bandage: a prospective comparative randomised study // Acta ophthalmologica. 2014. Vol. 92, No. 8. P. e663–e666. doi: 10.1111/aos.12436

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Эко-Вектор», 2023


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77-65574 от 04 мая 2016 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах