Микробиом супрагляциальных систем на ледниках Альдегонда и Бертель (о. Западный Шпицберген)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Изучена микробная биомасса, разнообразие культивируемых бактерий и микромицетов, а также численность функциональных генов цикла азота в супрагляциальных системах ледников Альдегонда и Бертель. Биомасса микроорганизмов варьировала от 2.54 до 722 мкг/г субстрата. Впервые показано, что большая часть (78.7–99.8%) микробной биомассы супрагляциальных объектов представлена грибами, а не прокариотами. Основную часть (от 70 до 90%) биомассы грибов составлял мицелий, длина которого изменялась от 6.70 до 537.51 м/г субстрата. Численность прокариот варьировала от 2.4 × 108 до 1.95 × 109 кл./г субстрата. Длина мицелия актиномицетов изменялась от 2.6 до 62.61 м/г субстрата. Численность культивируемых бактерий и актиномицетов варьировала от 3.3 × 104 до 1.2 × 106 КОЕ/г субстрата, а микромицетов – от 2.2 × 101 до 1.7 × 104 КОЕ/г субстрата. Доминировали бактерии родов Arthrobacter, Bacillus, Rhodococcus и Streptomyces, а также микромицеты родов Antarctomyces, Cadophora, Hyphozyma, Teberdinia, Thelebolus. Микромицеты Antarctomyces psychrotrophicus, Hyphozyma variabilis и Teberdinia hygrophila обнаружены на Шпицбергене впервые. Численность генов amoA окисляющих аммоний бактерий варьировала от 5.33 × 106 до 4.86 × 109; генов азотфиксации nifH – от 9.89 × 107 до 9.81 × 1010; генов денитрификации nirK – от 4.82 × 107 до 3.34×1010 копий генов/г субстрата. Полученные результаты косвенно свидетельствуют о ведущей роли грибов в микробиоме супрагляциальных объектов Шпицбергена и значительном вкладе прокариот в эмиссию из них парниковых газов.

Об авторах

Д. А. Никитин

Почвенный институт им. В.В. Докучаева; Институт географии РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: dimnik90@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8533-6536
Россия, Москва; Москва

Л. В. Лысак

Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова

Email: dimnik90@mail.ru
Россия, Москва

Э. П. Зазовская

Институт географии РАН; Университет штата Джорджия-Атенс

Email: dimnik90@mail.ru
Россия, Москва; Атенс, США

Н. С. Мергелов

Институт географии РАН

Email: dimnik90@mail.ru
Россия, Москва

С. В. Горячкин

Институт географии РАН

Email: dimnik90@mail.ru
Россия, Москва

Список литературы

  1. Белкина О.А., Мавлюдов Б.Р. Мхи на ледниках Шпицбергена. // Ботанический журнал. 2011. № 96(5). С. 582–596.
  2. Бубнова Е.Н., Никитин Д.А. Грибы в донных грунтах Баренцева и Карского морей // Биология моря. 2017. № 43(5). С. 366–371.
  3. Власов Д.Ю., Кирцидели И.Ю., Абакумов Е.В., Новожилов Ю.К., Зеленская М.С., Баранцевич Е.П. Антропогенная инвазия микромицетов в ненарушенные экосистемы оазиса Холмы Ларсеманн (Восточная Антарктида) // Российский журнал биологических инвазий. 2020. № 13(2). С. 23–34.
  4. Глазовская М.А. Эоловые мелкоземистые накопления на ледниках хребта Терскей Ала-Тау // Тр. Ин-та географии АН СССР. 1952. Вып. 49. С. 55–69.
  5. Глазовская М.А. Эоловые отложения на ледниках Тянь-Шаня // Природа. 1954. № 2. С. 90–92.
  6. Глушакова А.М., Качалкин А.В., Чернов И.Ю. Особенности динамики эпифитных и почвенных дрожжевых сообществ в зарослях недотроги железконосной на перегнойно-глеевой почве // Почвоведение. 2011. № 8. С. 966–972.
  7. Зазовская Э.П., Мергелов Н.С., Шишков В.А., Долгих А.В., Добрянский А.С., Лебедева М.П., Турчинская С.М., Горячкин С.В. Криокониты как факторы развития почв в условиях быстрого отступания ледника Альдегонда, Западный Шпицберген // Почвоведение. 2022. № 3. С. 281–295. https://doi.org/10.31857/S0032180X22030157
  8. Звягинцев Д.Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1991. С. 60.
  9. Кирцидели И.Ю. Микромицеты из почв и грунтов Северо-восточной Земли (архипелаг Шпицберген) // Микология и фитопатология. 2010. № 44(2). С. 116–125.
  10. Кирцидели И.Ю. Микроскопические грибы в почвах и грунтах арктических горных систем // Биосфера. 2016. № 8(1). С. 63–78.
  11. Кирцидели И.Ю. Микроскопические грибы в почвах острова Хейса (Земля Франца-Иосифа) // Новости систематики низших растений. 2015. № 49. С. 151–160.
  12. Кирцидели И.Ю., Власов Д.Ю., Зеленская М.С., Ильюшин В.А., Новожилов Ю.К., Чуркина И.В., Баранцевич Е.П. Оценка антропогенной инвазии микроскопических грибов в арктические экосистемы (архипелаг Шпицберген) // Гигиена и санитария. 2020. № 99(2). С. 145–151.
  13. Корнейкова М.В., Редькина В.В., Мязин В.А., Фокина Н.В., Шалыгина Р.Р. Микроорганизмы почв полуострова Рыбачий // Тр. Кольского научного центра РАН. 2019. № 10. С. 108–122. https://doi.org/10.25702/KSC.2307-5252.2019.4.108-122
  14. Кочкина Г.А., Иванушкина Н.Е., Карасев С.Г., Гавриш Е.Ю., Гурина Л.И., Евтушенко Л.И., Спирина Е.В., Воробьева Е.А., Гиличинский Д.А., Озерская С.М. Микромицеты и актинобактерии в условиях многолетней естественной криоконсервации // Микробиология. 2001. Т. 70. № 3. С. 412–420.
  15. Лысак Л.В., Максимова И.А., Никитин Д.А., Иванова А.Е., Кудинова А.Г., Соина В.С., Марфенина О.Е. Микробные сообщества почв российских полярных станций Восточной Антарктиды // Вестник Моск. ун-та. Сер. 16, биология. 2018. № 3. С. 132–140.
  16. Лысак Л.В., Скворцова И.Н., Добровольская Т.Г. Методы оценки бактериального разнообразия почв и идентификации почвенных бактерий. 2003. М.: Макс-пресс, 120 с.
  17. Марфенина О.Е., Никитин Д.А., Иванова А.Е. Структура грибной биомассы и разнообразие культивируемых микромицетов в почвах Антарктиды (станции Прогресс и Русская) // Почвоведение. 2016. № 8. С. 991–999. https://doi.org/10.7868/S0032180X16080074
  18. Мергелов Н.С., Горячкин С.В., Зазовская Э.П., Карелин Д.В., Никитин Д.А., Кутузов С.С. Супрагляциальные почвы и почвоподобные тела: разнообразие, генезис, функционирование (обзор) // Почвоведение. 2023. № 12. С. 1522–1539. https://doi.org/10.31857/S0032180X23601494
  19. Мигунова В.Д., Кураков А.В. Структура микробной биомассы и трофические группы нематод в дерново-подзолистых почвах постагрогенной сукцессии в южной тайге (Тверская область) // Почвоведение. 2014. № 5. С. 584–584. https://doi.org/10.7868/S0032180X14050165
  20. Никитин Д.А., Лысак Л.В., Бадмадашиев Д.В. Молекулярно-биологическая характеристика почвенного микробиома северной части архипелага Новая Земля // Почвоведение. 2022. № 8. С. 1035–1045.
  21. Никитин Д.А., Лысак Л.В., Бадмадашиев Д.В., Холод С.С., Мергелов Н.С., Долгих А.В., Горячкин С.В. Биологическая активность почв в условиях покровного оледенения в северной части архипелага Новая Земля // Почвоведение. 2021. № 10. С. 1207–1230. https://doi.org/10.31857/S0032180X21100087
  22. Никитин Д.А., Лысак Л.В., Кутовая О.В., Грачева Т.А. Эколого-трофическая структура и таксономическая характеристика сообществ микроорганизмов почв северной части архипелага Новая Земля // Почвоведение. 2021. №. 11. С. 1346–1362. https://doi.org/10.31857/S0032180X21110101
  23. Никитин Д.А., Лысак Л.В., Мергелов Н.С., Долгих А.В., Зазовская Э.П., Горячкин С.В. Микробная биомасса, запасы углерода и эмиссия СО2 в почвах Земли Франца-Иосифа: высокоарктические тундры или полярные пустыни? // Почвоведение. 2020. № 4. С. 1–19. https://doi.org/10.31857/S0032180X20040115
  24. Никитин Д.А., Марфенина О.Е., Кудинова А.Г., Лысак Л.В., Мергелов Н.С., Долгих А.В., Лупачев А.В. Микробная биомасса и биологическая активность почв и почвоподобных тел береговых оазисов Антарктиды // Почвоведение. 2017. № 9. С. 1122–1133. https://doi.org/10.7868/S0032180X17070073
  25. Никитин Д.А., Марфенина О.Е., Максимова И.А. Использование сукцессионного подхода при изучении видового состава микроскопических грибов и содержания грибной биомассы в антарктических почвах // Микология и фитопатология. 2017. № 51(4). С. 211–219.
  26. Никитин Д.А., Семенов М.В., Семиколенных А.А., Максимова И.А., Качалкин А.В., Иванова А.Е. Биомасса грибов и видовое разнообразие культивируемой микобиоты почв и субстратов о. Нортбрук (Земля Франца-Иосифа) // Микология и фитопатология. 2019. Т. 53. № 4. С. 210–222. https://doi.org/10.1134/S002636481904010X
  27. Полянская Л.М., Звягинцев Д.Г. Содержание и структура микробной биомассы как показатели экологического состояния почв // Почвоведение. 2005. № 6. С. 706–714.
  28. Семенов В.М. Функции углерода в минерализационно-иммобилизационном обороте азота в почве // Агрохимия. 2020. № 6. С. 78–96. https://doi.org/10.31857/S0002188120060101
  29. Хабибуллина Ф.М., Кузнецова Е.Г., Васенева И.З. Микромицеты подзолистых и болотно-подзолистых почв в подзоне средней тайги на северо-востоке европейской части России // Почвоведение. 2014. № 10. С. 1228–1228. https://doi.org/10.7868/S0032180X14100049
  30. Хоулт Дж., Крига Н., Снита П., Стейли Дж., Уилльямса С. Определитель бактерий Берджи (в 2 томах) // Пер. с анг. под ред. Заварзина Г.А. М.: Мир, 1997. 800 с.
  31. Чернов И.Ю. Широтно-зональные и пространственно-сукцессионные тренды в распределении дрожжевых грибов // Журнал общей биологии. 2005. № 66(2). С. 123–135.
  32. Aalto J., Scherrer D., Lenoir J., Guisan A., Luoto M. Biogeophysical controls on soil-atmosphere thermal differences: implications on warming Arctic ecosystems // Environ. Res. Lett. 2018. V. 13(7). P. 074003. https://doi.org/10.1088/1748-9326/aac83e
  33. Abakumov E., Nizamutdinov T., Polyakov V. Analysis of the polydispersity of soil-like bodies in glacier environments by the laser light scattering (diffraction) method // Biol. Comm. 2021. V. 66(3). P. 198–209. https://doi.org/10.21638/spbu03.2021.302
  34. Adhikari K., Hartemink A.E. Linking soils to ecosystem services—A global review // Geoderma. 2016. V. 262. P. 101–111. https://doi.org/10.1016/j.geoderma.2015.08.009
  35. Anesio A.M., Laybourn-Parry J. Glaciers and ice sheets as a biome // TREE. 2012. V. 27(4). P. 219–225. https://doi.org/10.1016/j.tree.2011.09.012
  36. Bekku Y.S., Nakatsubo T., Kume A., Koizumi H. Soil microbial biomass, respiration rate, and temperature dependence on a successional glacier foreland in Ny-Ålesund, Svalbard // Arct. Antarct. Alp. Res. 2004. V. 36(4). P. 395–399. https://doi.org/10.1657/1523-0430(2004)036[0395:SMBRRA]2.0.CO;2
  37. Braker G., Fesefeldt A., Witzel K.P. Development of PCR primer systems for amplification of nitrite reductase genes (nirK and nirS) to detect denitrifying bacteriain environmental samples // Appl. Environ. Microbiol. 1998. V. 64. P. 3769–3775.
  38. Bubnova E.N. Fungal diversity in bottom sediments of the Kara Sea // Botanica marina. 2010. V. 53(6). P. 595–600. https://doi.org/10.1515/BOT.2010.063
  39. Buzzini P., Turchetti B., Yurkov A. Extremophilic yeasts: the toughest yeasts around? // Yeast. 2018. V. 35(8). P. 487–497. https://doi.org/10.1002/yea.3314
  40. Cameron K., Hodson A.J., Osborn M. Carbon and nitrogen biogeochemical cycling potentials of supraglacial cryoconite communities // Polar Biology. 2012. V. 35. P. 1375–1393. https://doi.org/10.1007/s00300-012-1178-3
  41. Chapin F.S., Matson P.A., Vitousek P.M. Nutrient cycling // Principles of Terrestrial Ecosystem Ecology. 2011. P. 259–296. https://doi.org/10.1007/978-1-4419-9504-9
  42. De Hoog G.S., Gottlich E., Platas G., Genilloud O., Leotta G., Van Brummelen J. Evolution, taxonomy and ecology of the genus Thelebolus in Antarctica // Studies in Mycology. 2004. V. 51. P. 33.
  43. Dix N.J., Webster J. Fungal ecology. Springer Science & Business Media, 2012. P. 376.
  44. Domsch K.H., Gams W., Anderson T. Compendium of soil fungi. Eching: IHW-Verlag, 2007.
  45. Edwards A., Anesio A.M., Rassner S.M., Sattler B., Hubbard B., Perkins W.T., Youn M., Gareth W.G. Possible interactions between bacterial diversity, microbial activity and supraglacial hydrology of cryoconite holes in Svalbard // ISME J. 2011. V. 51(1). P. 150–160. https://doi.org/10.1038/ismej.2010.100
  46. Edwards A., Douglas B., Anesio A., Rassner S.M., Irvine-Fynn T.D., Sattler B., Griffith G.W. A distinctive fungal community inhabiting cryoconite holes on glaciers in Svalbard // Fungal Ecology. 2013. V. 6. P. 168–176. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2012.11.001
  47. Flimban S., Oh S.E., Joo J.H., Hussein K.A. Characterization and identification of cellulose-degrading bacteria isolated from a microbial fuel cell reactor // Biotechnology and Bioprocess Engineering. 2019. V. 24(4). P. 622–631. https://doi.org/10.1007/s12257-019-0089-3
  48. Freitag T.E., Chang L., Prosser J.I. Changes in the community structure and activity of betaproteobacterial ammonia-oxidizing sediment bacteria along a freshwater-marine gradient // Environ. Microbiol. 2006. V. 8(4). P. 684–696.
  49. Hassan N., Rafiq M., Hayat M., Shah A.A., Hasan F. Psychrophilic and psychrotrophic fungi: a comprehensive review // Rev. Environ. Sci. 2016. V. 15. P. 147–172. https://doi.org/10.1007/s11157-016-9395-9
  50. Hoham R.W., Remias D. Snow and glacial algae: a review // J. Phycol. 2020. V. 56(2). P. 264–282. https://doi.org/10.1111/jpy.12952
  51. Hutchins D.A., Jansson J.K., Remais J.V., Rich V.I., Singh B.K., Trivedi P. Climate change microbiology—problems and perspectives // Nat. Rev. Microbiol. 2019. V. 17(6). P. 391–396. https://doi.org/10.1038/s41579-019-0178-5
  52. Imhoff J.F. New dimensions in microbial ecology—functional genes in studies to unravel the biodiversity and role of functional microbial groups in the environment // Microorganisms. 2016. V. 4(2). P. 19. https://doi.org/10.3390/microorganisms4020019
  53. Joergensen R.G., Emmerling C. Methods for evaluating human impact on soil microorganisms based on their activity, biomass, and diversity in agricultural soils // JPNSS. 2006. V. 169(3). P. 295–309. https://doi.org/10.1002/jpln.200521941
  54. Jones C.M., Hallin S. Ecological and evolutionary factors under lying global and local assembly of denitrifier communities. ISMEJ. Nature Publishing Group. 2010. V. 4. P. 633–641. PMID: 2009078549. https://doi.org/10.1038/ismej.2009.152
  55. Joshi S., Bajpai A., Johri B.N. Extremophilic fungi at the interface of climate change // Fungi Bio-Prospects in Sustainable Agriculture, Environment and Nano-technology. P. 1–22. Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-821925-6.00001-0
  56. Kaczmarek L., Jakubowska N., Sofia C.G. et al. The microorganisms of cryoconite holes (algae, Archaea, bacteria, cyanobacteria, fungi, and protista): a review // Polar Record. 2015. V. 52(2). P. 176–203. https://doi.org/10.1017/S0032247415000637.
  57. Kochkina G.A., Ivanushkina N.E., Lupachev A.V., Starodumova I.P., Vasilenko O.V., Ozerskaya S.M. Diversity of mycelial fungi in natural and human-affected Antarctic soils // Polar Biol. 2019. V. 42(1). P. 47–64. https://doi.org/10.1007/s00300-018-2398-y
  58. Kochkina G.A., Ozerskaya S.M., Ivanushkina N.E., Chigineva N.I., Vasilenko O.V., Spirina E.V., Gilichinskii D.A. Fungal diversity in the Antarctic active layer // J. Microbiol. 2014. V. 83(1). P. 94–101. https://doi.org/10.1134/S002626171402012X
  59. Kotas P., Šantrůčková H., Elster J., Kaštovská E. Soil microbial biomass, activity and community composition along altitudinal gradients in the High Arctic (Billefjorden, Svalbard) // Biogeosciences. 2018. V. 15(6). P. 1879. https://doi.org/10.5194/bg-15-1879-2018
  60. Kudinova A.G., Petrova M.A., Dolgikh A.V., Soina V.S., Lysak L.V., Maslova O.A. Taxonomic Diversity of Bacteria and Their Filterable Forms in the Soils of Eastern Antarctica (Larsemann Hills and Bunger Hills) // J. Microbiol. 2020. V. 89(5). P. 574–584. https://doi.org/10.1134/S0026261720050136
  61. Kumar S., Suyal D.C., Yadav A., Shouche Y., Goel R. Microbial diversity and soil physiochemical characteristic of higher altitude // PloS One. 2019. V. 14(3). P. e0213844. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0213844
  62. Lang C., Fettweis X., Erpicum M. Stable climate and surface mass balance in Svalbard over 1979–2013 despite the Arctic warming // The Cryosphere. 2015. V. 9(1). P. 83–101. https://doi.org/10.5194/tc-9-83-2015
  63. Li Y., Dick W.A., Tuovinen O.H. Fluorescence microscopy for visualization of soil microorganisms—a review // Biol. Fertil. Soils. 2004. V. 39(5). P. 301–311. https://doi.org/10.1007/s00374-004-0722-x
  64. Ma W., Jiang S., Assemien F., Qin M., Ma B., Xie Z. Response of microbial functional groups in volved in soil N cycle to P and N fertilizationin Tibetanal pine meadows // Soil Biol. Biochem. 2016. V. 101. P. 195–206. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2016.07.023
  65. Malcheva B., Nustorova M., Zhiyanski M., Sokolovska M., Yaneva R., Abakumov E. Diversity and activity of microorganisms in Antarctic polar soils // One Ecosystem. 2020. V. 5. P. e51816. https://doi.org/10.3897/oneeco.5.e51816
  66. Martínez-Espinosa R.M. Microorganisms and their metabolic capabilities in the context of the biogeochemical nitrogen cycle at extreme environments // Int. J. Mol. Sci. 2020. V. 21(12). P. 4228. https://doi.org/10.3390/ijms21124228
  67. Musilova M., Tranter M., Bamber J.L., Takeuchi N., Anesio A.M. Experimental evidence that microbial activity lowers the albedo of glaciers // Geochem. Perspect. Lett. 2016. V. 2. P. 106–116. https://doi.org/10.7185/geochemlet.1611
  68. Nakatsubo T., Yoshitake S., Uchida M., Uchida M., Shibata Y., Koizumi H. Organic carbon and microbial biomass in a raised beach deposit under terrestrial vegetation in the High Arctic, Ny-Ålesund, Svalbard // Polar Res. 2008. V. 27(1). P. 23–27. https://doi.org/10.1111/j.1751-8369.2008.00037.x
  69. Nizamutdinov T., Mavlyudov B., Polyakov V., Abakumov E. Sediments from cryoconite holes and dirt cones on the surface of Svalbard glaciers: main chemical and physicochemical properties // Acta Geochimica. 2023. V. 42(2). P. 346–359. https://doi.org/10.1007/s11631-022-00586-3
  70. Pittino F., Maglio M., Gandolfi I., Azzoni R.S., Diolaiuti G., Ambrosini R., Franzetti A. Bacterial communities of cryoconite holes of a temperate alpine glacier show both seasonal trends and year-to-year variability // Ann. Glaciol. 2018. V. 59(77). P. 1–9. https://doi.org/10.1017/aog.2018.16
  71. Polyakov V., Zazovskaya E., Abakumov E. Molecular composition of humic substances isolated from selected soils and cryconite of the Grønfjorden area, Spitsbergen // Pol. Polar Res. 2019. V. 40(2). P. 105–120. https://doi.org/10.24425/ppr.2019.128369
  72. Polyanskaya L.M., Yumakov D.D., Tyugay Z.N., Stepanov A.L. Fungi and Bacteria in the Dark-Humus Forest Soil // Eurasian Soil Sci. 2020. V. 53(9). P. 1255–1259. https://doi.org/10.1134/S1064229320090124
  73. Prosser J.I., Nicol G.W. Prosser J.I., Nicol G.W. Archaeal and bacterial ammonia-oxidisers in soil: the quest for niche specialisation and differentiation // Trends in Microbiol. 2012. V. 20. P. 523–531. PMID: 22959489. https://doi.org/10.1016/j.tim.2012.08.001
  74. Purkhold U., Pommerening-Röser A., Juretschko S., Schmid M.C., Koops H.P., Wagner M. Phylogeny of all recognized species of ammonia oxidizers based on comparative 16S rRNA and amoA sequence analysis: implications for molecular diversity surveys // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V. 66(12). P. 5368. https://doi.org/10.1128/aem.66.12.5368-5382.2000
  75. Ravolainen V., Soininen E.M., Jónsdóttir I.S., Eischeid I., Forchhammer M., van der Wal R., Pedersen Å.Ø. High Arctic ecosystem states: Conceptual models of vegetation change to guide long-term monitoring and research // Ambio. 2020. V. 49(3). P. 666–677. https://doi.org/10.1007/s13280-019-01310-x
  76. Regan K., Stempfhuber B., Schloter M., Rasche F., Prati D., Philippot L., Boeddinghaus R.S., Kandeler E., Marhan S. Spatial and temporal dynamics of nitrogen fixing, nitrifying and denitrifying microbes in an unfertilized grassland soil // Soil Biol. Biochem. 2017. V. 109. P. 214–226. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2016.11.01145.
  77. Rozwalak P., Podkowa P., Buda J., Niedzielski P., Kawecki S., Ambrosini R., Azzoni R.S. et al. Cryoconite–From minerals and organic matter to bioengineered sediments on glacier’s surfaces // Sci. Total Environ. 2022. V. 807. P. 150874. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.150874
  78. Salcher M.M. Isolation and cultivation of planktonic freshwater microbes is essential for a comprehensive understanding of their ecology // Aquat. Microb. Ecol. 2016. V. 77(3). P. 183–196. https://doi.org/10.3354/ame01796
  79. Schuler T.V., Kohler J., Elagina N., Hagen J.O.M., Hodson A.J., Jania J.A., et al. Reconciling Svalbard glacier mass balance // Front. Earth Sci. 2020. V. 9. P. 156. https://doi.org/10.3389/feart.2020.00156
  80. Segawa T., Takeuchi N., Mori H., Rathnayake R.M., Li Z., Akiyoshi A., Satoh H., Ishii S. Redox stratification within cryoconite granules influences the nitrogen cycle on glaciers // FEMS microbiology ecol. 2020. V. 96(11). P. fiaa199. https://doi.org/10.1093/femsec/fiaa199
  81. Seifert K.A., Gams W. The genera of Hyphomycetes–2011 update // Persoonia: Mol. Phylogeny Evol. of Fungi. 2011. V. 27(1). P. 119–129. https://doi.org/10.3767/003158511X617435
  82. Singh P., Singh S.M. Characterisation of yeasts and filamentous fungi isolated from cryoconite holes of Svalbard, Arctic // Polar Biol. 2012. V. 35. P. 575–583. https://doi.org/10.1007/s00300-011-1103-1
  83. Singh P., Singh S.M., Singh R.N., Naik S., Roy U., Srivastava A., Bölter M. Bacterial communities in ancient permafrost profiles of Svalbard, Arctic // J. basic microbiol. 2017. V. 57(12). P. 1018–1036. https://doi.org/10.1002/jobm.201700061
  84. Sogonov M.V., Schroers H.J., Gams W., Dijksterhuis J., Summerbell R. C. The hyphomycete Teberdinia hygrophila gen. nov., sp. nov. and related anamorphs of Pseudeurotium species // Mycologia. 2005. V. 97(3). P. 695–709. https://doi.org/10.1080/15572536.2006.11832799
  85. Stibal M., Sabacka M., Kastova K. Microbial communities on glacier surfaces in Svalbard: impact of physical and chemical properties on abundance and structure of cyanobacteria and algae // Microb. Ecol. 2006. V. 52(4). P. 644–654. https://doi.org/10.1007/s00248-006-9083-3
  86. Takeuchi N. Optical characteristics of cryoconite (surface dust) on glaciers: the relationship between light absorbency and the property of organic matter contained in the cryoconite // Ann. Glaciol. 2002. V. 34. P. 409–414.
  87. Taş N., Prestat E., Wang S., Wu Y., Ulrich C., Kneafsey T., et al. Landscape topography structures the soil microbiome in arctic polygonal tundra // Nat Commun. 2018. V. 9. P. 777. PMID: 29472560. https://doi.org/10.1038/s41467-018-03089-z
  88. Tourna M., Stieglmeier M., Spang A., Könneke M., Schintlmeister A., Urich T., Engel M., Schloter M., Wagner M., Richter A., Schleper C. Nitrososphaera viennensis, an ammonia oxidizing archaeon from soil // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. V. 108(20). P. 8420–8425. https://doi.org/10.1073/pnas.1013488108
  89. Wang M., Jiang X., Wu W., Hao Y., Su Y., Cai L., Xiang M., Liu X. Psychrophilic fungi from the world’s roof. Persoonia // Mol. Phylogenet. Evol. Fungi. 2015. V. 34. P. 100–112. https://doi.org/10.3767/003158515X685878
  90. Wang M., Tian J., Xiang M., Liu X. Living strategy of cold-adapted fungi with the reference to several representative species // Mycology. 2017. V. 8(3). P. 178–188. https://doi.org/10.1080/21501203.2017.1370429
  91. Wong M.L., Medrano J.F. Real-time PCR for mRNA quantitation // Biotechniques. 2005. V. 39(1). P. 75–85. https://doi.org/10.2144/05391RV01
  92. Wouters B., Gardner A.S., Moholdt G. Global glacier mass loss during the GRACE satellite mission (2002–2016) // Front. Earth Sci. 2019. V. 7. P. 96. https://doi.org/10.3389/feart.2019.00096
  93. Yang Y., Zhao J., Jiang Y., Hu Y., Zhang M., Zeng Z. Response of bacteria harboring nir Sand nir Kgenesto different N fertilization rates in an alkaline northern Chinese soil // Eur. J. Soil Biol. 2017. V. 82. P. 1–9. https://doi.org/10.1016/j.ejsobi.2017.05.006Microbiomeshiftsduringsoilformationin tundraPLO
  94. Yoshitake S., Uchida M., Koizumi H., Nakatsubo T. Carbon and nitrogen limitation of soil microbial respiration in a High Arctic successional glacier foreland near Ny-Ålesund, Svalbard // Polar Res. 2007. V. 26(1). P. 22–30. https://doi.org/10.1111/j.1751-8369.2007.00001.x
  95. Yurkov A. Temporal and geographic patterns in yeast distribution / Yeasts in Natural Ecosystems: Ecology. 2017. P. 101–130. https://doi.org/10.1007/978-3-319-61575-2_4
  96. Zdanowski M.K., Bogdanowicz A., Gawor J., Gromadka R., Wolicka D., Grzesiak J. Enrichment of cryoconite hole anaerobes: implications for the subglacial microbiome // Microb. Ecol. 2017. V. 73(3). P. 532–538. https://doi.org/10.1007/s00248-016-0886-6
  97. Zhang T., Wang N.F., Liu H.Y., Zhang Y.Q., Yu L.Y. Soil pH is a key determinant of soil fungal community composition in the Ny-Ålesund Region, Svalbard (High Arctic) // Front. Microbiol. 2016. V. 7. P. 227. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.00227
  98. Zhelezova A., Chernov T., Tkhakakhova A., Xenofontova N., Semenov M., Kutovaya O. Prokaryotic community shifts during soil formation on sands in the tundra zone // PloS one. 2019. V. 14(4). P. e0206777. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0206777

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Расположение ледников Бертель и Альдегонда на о. Западный Шпицберген, а также основные группы объектов исследования в супрагляциальной и ближней перигляциальной зонах ледников: I – шарообразная подушка мха на леднике (“ледниковая мышка”) с микропрофилем почвы; IIa – инситный криоконит в стаканах протаивания; IIb – биогенные гранулы криоконита на дне стакана протаивания; III – переотложенный дисперсный криоконит, структура биогенных гранул частично утрачена; IV – переотложенный криоконит, коническая форма с ледяным ядром, структура биогенных гранул сильно деградирована или утрачена; V – слаборазвитая почва (пелозем) на молодой морене с участием материала криоконита

Скачать (637KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Общая биомасса микроорганизмов: 1 – микобиоты, 2 – прокариот

Скачать (201KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Численность и таксономическое разнообразие микроскопических грибов

Скачать (207KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Численность копий функциональных генов amoA, nifH бактерий и nirK

Скачать (316KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024