Влияние ионов меди(II) на физико-химические свойства липосом из лецитина в водной среде

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Изучено взаимодействие ионов меди(II) c природными липидами (соевый лецитин, имеющий различный состав фосфолипидов) в водной среде. Используя методы тонкослойной хроматографии, динамического светорассеяния и математической обработки УФ-спектров по методу Гаусса, выявлено, что в водной среде лецитин образует достаточно крупные липосомы диаметром около 900 нм, размер которых уменьшается в присутствии ионов меди(II) независимо от их концентрации. Установлено, что ионы меди(II) как инициируют процессы перекисного окисления липидов, так и образуют комплексы с полярными «головками» фосфолипидов. Показано, что данные процессы зависят от состава липидов лецитина и их способности к окислению.

Об авторах

П. Д. Белецкая

Институт биохимической физики им. Н. М. Эмануэля РАН

Email: belet-polina@yandex.ru
Москва, Россия

А. С. Дубовик

Институт биохимической физики им. Н. М. Эмануэля РАН

Москва, Россия

В. О. Швыдкий

Институт биохимической физики им. Н. М. Эмануэля РАН

Москва, Россия

Л. Н. Шишкина

Институт биохимической физики им. Н. М. Эмануэля РАН

Москва, Россия

Список литературы

  1. Бурлакова Е.Б., Храпова Н.Г. // Успехи химии. 1985. Т. 54. № 9. С. 1540
  2. Frankel E.N. // Chem. And Phys. of Lipids. 1987. V. 44. № 2—4. P. 73.
  3. Hensley K., Robinson K.A., Gabbita P., et al. // Free Radic. Biol. and Med. 2000. V. 28 (10). P. 1456
  4. Niki E. // Free Radic. Biol. and Med. 2009. V. 47. № 5. P. 469. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2009.05.032
  5. Oxidative Stress / Ed. by H. Sies. London: Academic Press, 1985. 507 p.
  6. Burlakova Ye.B., Pal’mina N.P., Mal’tseva Ye.L. Membrane Lipid Oxidation / Ed. Carmen Vigo-Pelfrey. Boca Raton, Ann Arbor, Boston: CRC Press, 1991. V. III. P. 209
  7. Valko M., Leibfritz D., Moncol J., et al. // Int. J. Boichem. Cell Biol. 2007. V. 39. P. 44. doi: 10.1016/j.biocel.2006.07.001
  8. Wadhwa N., Mathew B.B., Jatawa S.K., Tiwari A. // Int. J. Curr. Sci. 2012. V. 3. P. 29 doi: 10.4103/0022-3859.123156
  9. Крайник В.В., Ушкалова В.Н. // Журн. физ. химии. 2010. Т. 84. № 5. С. 998 [Kraynik V.V., Ushkalova V.N. // Russ. J. Phys. Chem. A. 2010. V. 84. № 5. P. 896]. doi: 10.1134/S003602441005033X
  10. Zhang Y.M., Dong Zh. L., Yang H. Sh., et al. // J. Trace Elements in Med. and Biol. 2020. V. 61. P. 126561. doi: 10.1016/j.jtemb.2020.126561
  11. Шишкина Л.Н., Дубовик А.С., Козлов М.В. и др. // Актуал. вопросы биолог. физики и химии. 2022. Т. 7. № 1. С. 160. doi: 10.29039/rusjbpc.2022.0499
  12. Rigobello M.P., Scutari G., Boscolo R., Bindoli A. // Free Radic. Res. 2002. V. 36. P. 1071 doi: 10.1080/1071576021000006680
  13. Lee S., Barin G., Ackerman C.M. et al. // J. Am. Chem. Soc. 2016. V. 138. P. 7603. doi: 10.1021/jacs.6b02515
  14. Bui N.T., Kang H., Teat S.J. et al. // Nature Commun. 2020. V. 11. P. 3947. doi: 10.1038/s41467-020-17757-6
  15. Lutsenko S. // Curr. opinion in chem. biology. 2010. V. 14. P. 211. doi: 10.1016/j.cbpa.2010.01.003
  16. Winter J. // Sci. Insights. 2024. V. 44. № 2. P. 1253. doi: 10.15354/si.24.re916
  17. Awewomom J., Dzeble F., Takyi Y.D. et al. // Discov. Envir. 2024. V. 2. № 8. doi: 10.1007/s44274-024-00033-5
  18. Sagheer U., Al-Kindi S., Abohashem S. et al. // JACC Adv. 2024. V. 3. № 2. doi: 10.1016/j.jacadv.2023.100815
  19. Swain C.K. // Discov. Envir. 2024. V. 2. № 5. doi: 10.1007/s44274-024-00030-8
  20. Gautam R., Priyadarshini E., Patel A.K. and Arora T. // J. of Envir. Sci. and Health. Part C. 2024. P. 1. doi: 10.1080/26896583.2024.2302738
  21. Мудрый И.В. // Гигиена и санитария. 1997. № 1. С. 16.
  22. Махниченко А.С., Пащенко А.Е. // Sci. Time. 2016. № 2 (26). С. 395.
  23. Zhushan F. and Shuhua X. // Toxic. Mechanisms and Methods. 2020. V. 30. № 3. P. 167. doi: 10.1080/15376516.2019.1701594
  24. Cheng S. // Envir. Sci. Res. Int. 2003. V. 10 (3). P. 192. doi: 10.1065/espr2002.11.141.1
  25. Shrivastava A.K. // Indian J. of Envir. Protection. 2009. V. 29. № 6. P. 552.
  26. Zhang Y., Zang W., Qin L. et al. // PLoS ONE. 2017. V. 12 (2). P. 1. doi: 10.1371/journal.pone.0170105
  27. Rehman M., Liu L., Wang Q. et al. // Envir. Sci. Pollut. Res. 2019. V. 26. P. 18003. doi: 10.1007/s11356-019-05073-6
  28. Li Q., Wang Y., Chang Zh. et al. // J. of Water Process Engin. 2024. V. 58. P. 104746. doi: 10.1016/j.jwpe.2023.104746
  29. Барсукова Л.И. Биологические мембраны: Методы. М.: Мир, 1990. 423 с.
  30. Shishkina L.N., Kushnireva Ye.V., Smotryaeva M.A. // Oxidation Commun. 2001. V. 24. № 2. P. 276.
  31. Шишкина Л.Н., Кушнирева Е.В., Смотряева М.А. // Радиац. биология. Радиоэкология. 2004. Т. 44. № 3. С. 289. doi: 10.31857/S0869803123020108
  32. Shishkina L.N., Klimovich M.A., Kozlov M.V. // Pharmaceutical and Medical Biotechnology: New Perspective. N.Y.: Nova Science Publishers, 2013. Р. 151.
  33. Jiang X., Zhang J., Zhou B., et al. // Sci. Rep. 2018. V. 8 (1). P. 14093. doi: 10.1038/s41598-018-32322-4
  34. Шишкина Л.Н., Козлов М.В., Повх А.Ю., Швыдкий В.О. // Хим. физика. 2021. Т. 40. № 9. С. 57. doi: 10.31857/S0207401X21090089 [Shishkina L.N., Kozlov M.V., Povkh A. Yu., Shvydkiy V.O. // Russ. J. Phys. Chemistry B. 2021. V. 15. № 5. P. 57. doi: 10.1134/S19907931210500880]
  35. Jaklová D.J., Jakl M., Nováková K. et al. // Monatsh Chem. 2015. V. 146. P. 831. doi: 10.1007/s00706-014-1385-4
  36. Poyton F.M., Sendecki A.M., Cong X., and Cremer P.S. // J. Am. Soc. 2016. V. 138 (5). P. 1584. doi: 10.1021/jacs.5b11561
  37. Kusler K., Odoh S.O., Silakov A., et al. // J. Phys. Chem. B. 2016. V. 120 (50). P. 12883. doi: 10.1021/acs.jpcb.6b10675
  38. Шишкина Л.Н., Парамонов Д.В., Климович М.А., Козлов М.В. // Биофизика. 2023. Т. 68. № 6. С. 1172. doi: 10.31857/S000630292306008X [Shishkina L.N., Paramonov D.V., Klimovich M.A., Kozlov M.V. // Biophysics. 2023. V. 68. № 6. P. 371. doi: 10.1134/s0006350923060179]

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025