Возрастная и сезонная динамика клеточной популяции гемоцитов у двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Клеточный состав гемолимфы мидии Crenomytilus grayanus представлен гемобластами, гиалиноцитами, базофильными, нейтрофильными и эозинофильными гранулоцитами с существенным преобладанием последних. С возрастом моллюска увеличивались средние значения размера и гранулярности гемоцитов за счет накопления в гемолимфе гранулоцитов (вплоть до 100% от всех клеток) и их зрелых высокодифференцированных эозинофильных форм (вплоть до 99% от всех клеток), что свидетельствует о снижении скорости обновления клеточной популяции. В осенний период половой инертности в гемолимфе мидий наблюдали уменьшение числа клеток с увеличением возраста моллюска, но без связи с размером раковины. Однако летом, в период нереста, концентрация гемоцитов либо не менялась, либо росла по мере увеличения размера тела, прямо коррелируя с количеством молодых базофильных гранулоцитов. Последнее может указывать либо на взаимосвязь между количеством гемоцитов и способностью мидий достигать крупных размеров, либо на более высокие потенции возрастных мидий к экстренной мобилизации системы иммунитета в летний сезон за счет быстрого восполнения пула циркулирующих клеток с последующим перераспределением молодых и зрелых клеточных форм между гемолимфой и внутренними органами.

Об авторах

А. А. Анисимова

Институт Мирового океана, Дальневосточный федеральный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: anisan77@mail.ru
Россия, 690922, Владивосток

М. Н. Дягилева

Институт Мирового океана, Дальневосточный федеральный университет

Email: anisan77@mail.ru
Россия, 690922, Владивосток

А. В. Синенко

Институт Мирового океана, Дальневосточный федеральный университет

Email: anisan77@mail.ru
Россия, 690922, Владивосток

И. А. Дмитриева

Институт Мирового океана, Дальневосточный федеральный университет

Email: anisan77@mail.ru
Россия, 690922, Владивосток

Список литературы

  1. Анисимова А.А. Идентификация клеточных субпопуляций гемоцитов Modiolus kurilensis (Bernard, 1983) (Bivalvia: Mytilidae) методами проточной цитометрии и световой микроскопии // Биол. моря. 2012. Т. 38. № 5. С. 400–408.
  2. Анисимова А.А. Морфофункциональные параметры гемоцитов в оценке физиологического состояния двустворчатых моллюсков // Биол. моря. 2013. Т. 39. № 6. С. 389–399.
  3. Анисимова А.А., Пономарева А.Л., Гринченко А.В. и др. Состав и сезонная динамика клеточной популяции гемоцитов двустворчатого моллюска Corbicula japonica Prime, 1864 из эстуария реки Киевка (бассейн Японского моря) // Биол. моря. 2017. Т. 43. № 2. С. 125–132.
  4. Анисимова А.А., Дягилева М.Н., Карушева О.А. и др. Состав и кинетика клеточной популяции гемоцитов у двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) // Биол. моря. 2022. Т. 48. № 4. С. 251–261.
  5. Одинцова Н.А. Лейкемия-подобный рак у двустворчатых моллюсков // Биол. моря. 2020. Т. 46. № 2. С. 75–84.
  6. Явнов С.В. Атлас двустворчатых моллюсков дальневосточных морей России. Владивосток: Дюма. 2000. 168 с.
  7. Andreyeva A.Y., Efremova E.S., Kukhareva T.A. Morphological and functional characterization of hemocytes in cultivated mussel (Mytilus galloprovincialis) and effect of hypoxia on hemocyte parameters // Fish Shellfish Immunol. 2019. V. 89. P. 361–367.
  8. Batel I., Fafanđel M., Smodlaka Tanković M. et al. Cell cycle alterations in the mussel Mytilus galloprovincialis hemocytes caused by environmental contamination // Acta Adriat. 2018. V. 59. № 2. P. 161–172.
  9. Burioli E.A.V., Trancart S., Simon A. et al. Implementation of various approaches to study the prevalence, incidence and progression of disseminated neoplasia in mussel stocks // J. Invertebr. Pathol. 2019. V. 168. 107271. https://doi.org/10.1016/j.jip.2019.107271
  10. Carballal M.J., López C., Azevedo C., Villalba A. In vitro study of phagocytic ability of Mytilus galloprovincialis Lmk. Haemocytes // Fish Shellfish Immunol. 1997. V. 7. № 6. P. 403–416.
  11. Carballal M.J., Villalba A., López C. Seasonal variation and effects of age, food availability, size, gonadal development, and parasitism on the hemogram of Mytilus galloprovincialis // J. Invertebr. Pathol. 1998. V. 72. № 3. P. 304–312.
  12. Cima F., Matozzo V. Proliferation and differentiation of circulating haemocytes of Ruditapes philippinarum as a response to bacterial challenge // Fish Shellfish Immunol. 2018. V. 81. P. 73–82.
  13. Delaporte M., Soudant P., Lambert C. et al. Impact of food availability on energy storage and defense related hemocyte parameters of the Pacific oyster Crassostrea gigas during an experimental reproductive cycle // Aquaculture. 2006. V. 254. № 1–4. P. 571–582.
  14. Donaghy L., Lambert C., Choia K-S., Soudant P. Hemocytes of the carpet shell clam (Ruditapes decussatus) and the Manila clam (Ruditapes philippinarum): current know-ledge and future prospects // Aquaculture. 2009. V. 297. № 1–4. P. 10–24.
  15. Dos Santos F.S., Neves R.A., Crapez M.A.C. et al. How does the brown mussel Perna perna respond to environmental pollution? A review on pollution biomarkers // J. Environ. Sci. 2022. V. 111. P. 412–428. https://doi.org/10.1016/j.jes.2021.04.006
  16. Farrington J.W., Tripp B.W., Tanabe S. et al. Edward D. Goldberg’s proposal of “the Mussel Watch”: Reflections after 40 years // Mar. Pollut. Bull. 2016. V. 110. № 1. P. 501–510.
  17. Fisher W.S., Oliver L.M., Edwards P. Hematologic and serologic variability of Eastern oysters from Apalachicola Bay, Florida // J. Shellfish Res. 1996. V. 15. № 3. P. 555–564.
  18. Flye-Sainte-Marie J., Soudant P., Lambert C. et al. Variabi-lity of the hemocyte parameters of Ruditapes philippinarum in the field during an annual cycle // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2009. V. 377. № 1. P. 1–11.
  19. Galimany E., Place A.R., Ramón M. et al. The effects of feeding Karlodinium veneficum (PLY # 103; Gymnodinium veneficum Ballantine) to the blue mussel Mytilus edulis // Harmful Algae. 2008. V. 7. № 1. P. 91–98.
  20. Garcia-Garcia E., Prado-Alvarez M., Novoa B. et al. Immune responses of mussel hemocyte subpopulations are differentially regulated by enzymes of the PI 3-K, PKC, and ERK kinase families // Dev. Comp. Immunol. 2008. V. 32. № 5. P. 637–653.
  21. Hine P.M. The inter-relationships of bivalve haemocytes // Fish Shellfish Immunol. 1999. V. 9. № 5. P. 367–385.
  22. Jemaà M., Morin N., Cavelier P. et al. Adult somatic proge-nitor cells and hematopoiesis in oysters // J. Exp. Biol. 2014. V. 217. № 17. P. 3067–3077.
  23. Le Foll F., Rioult D., Boussa S., Pasquier J. Characterisation of Mytilus edulis hemocyte subpopulations by single cell time-lapse motility imaging // Fish Shellfish Immunol. 2010. V. 28. № 2. P. 372–386.
  24. Malagoli D., Casarini L., Sacchi S., Ottaviani E. Stress and immune response in the mussel Mytilus galloprovincialis // Fish Shellfish Immunol. 2007. V. 23. № 1. P. 171–177. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2006.10.004
  25. Matozzo V., Marin M.G., Cima F., Ballarin L. First evidence of cell division in circulating haemocytes from the Manila clam Tapes philippinarum // Cell Biol. Int. 2008. V. 32. № 7. P. 865–868.
  26. Metzger M.J., Villalba A., Carballal M.J. et al. Widespread transmission of independent cancer lineages within multiple bivalve species // Nature. 2016. V. 534. P. 705–709.
  27. Mix M.C. A general model for leukocyte cell renewal in bivalve mollusks // Mar. Fish. Rev. 1976. V. 38. № 10. P. 37–41.
  28. Mosca F., Narcisi V., Cargini D. et al. Age-related properties of the Adriatic clam Chamelea gallina (L. 1758) hemocytes // Fish Shellfish Immunol. 2011. V. 31. № 6. P. 1106–1112. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2011.09.017
  29. Oliver L.M., Fisher W.S. Appraisal of prospective bivalve immunomarkers // Biomarkers. 1999. V. 4. № 6. P. 510–530.
  30. Ottaviani E., Franchini A., Barbieri D., Kletsas D. Compa-rative and morphofunctional studies on Mytilus galloprovincialis hemocytes: Presence of two aging-related hemocyte stages // Ital. J. Zool. 1998. V. 65. № 4. P. 349–354.
  31. Parrino V., Costa G., Cannavà C. et al. Flow cytometry and micro-Raman spectroscopy: Identification of hemocyte populations in the mussel Mytilus galloprovincialis (Bivalvia: Mytilidae) from Faro Lake and Tyrrhenian Sea (Sicily, Italy) // Fish Shellfish Immunol. 2019. V. 87. P. 1–8.
  32. Pipe R.K., Coles J.A., Thomas M.E. et al. Evidence for environmentally derived immunomodulation in mussels from the Venice Lagoon // Aquat. Toxicol. 1995. V. 32. № 1. P. 59–73. https://doi.org/10.1016/0166-445X(94)00076-3
  33. Renault T. Immunotoxicological effects of environmental contaminants on marine bivalves // Fish Shellfish Immunol. 2015. V. 46. № 1. P. 88–93. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2015.04.011
  34. Renwrantz L., Siegmund E., Woldmann M. Variations in hemocyte counts in the mussel, Mytilus edulis: similar reaction patterns occur in disappearance and return of molluscan hemocytes and vertebrate leukocytes // Comp. Biochem. Physiol., Part A: Mol. Integr. Physiol. 2013. V. 164. № 4. P. 629–637.
  35. Sendra M., Carrasco-Braganza M.I., Yeste P.M. et al. Immunotoxicity of polystyrene nanoplastics in different hemocyte subpopulations of Mytilus galloprovincialis // Sci. Rep. 2020. V. 10. № 1. article ID 8637. https://doi.org/10.1038/s41598-020-65596-8
  36. Skazina M., Odintsova N., Maiorova M. et al. First description of a widespread Mytilus trossulus-derived bivalve transmissible cancer lineage in M. trossulus itself // Sci. Rep. 2021. V. 11. № 1. article ID 5809. https://doi.org/10.1038/s41598-021-85098-5
  37. Soudant P., Paillard C., Choquet G. et al. Impact of season and rearing site on the physiological and immunological parameters of the Manila clam Venerupis (=Tapes=Ruditapes) philippinarum // Aquaculture. 2004. V. 229. № 1–4. P. 401–418. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00352-1
  38. Strahl J., Abele D. Cell turnover in tissues of the long-lived ocean quahog Arctica islandica and the short-lived scallop Aequipecten opercularis // Mar. Biol. 2010. V. 157. № 6. P. 1283–1292.
  39. Wootton E.C., Dyrynda E.A., Ratcliffe N.A. Bivalve immunity: comparisons between the marine mussel (Mytilus edulis), the edible cockle (Cerastoderma edule) and the razor-shell (Ensis siliqua) // Fish Shellfish Immunol. 2003. V. 15. № 3. P. 195–210. https://doi.org/10.1016/s1050-4648(02)00161-4

Дополнительные файлы


© А.А. Анисимова, М.Н. Дягилева, А.В. Синенко, И.А. Дмитриева, 2023