Полуавтоматическая система для выделения стромально-васкулярной фракции жировой ткани


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Представлена новая автоматизированная система выделения стромально-васкулярной фракции (СВФ) жировой ткани, сочетающая требуемое качество с высокой скоростью работы и доступной стоимостью. Описаны необходимые условия выполнения процедуры липосакции и инфильтрационной анестезии, а также хранения липоаспирата, представлены оригинальный протокол выделения СВФ и производственный эксперимент по контролю качества.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. Веремеев

ООО «ДжоинТекСэлл»

Email: al.veremeev@gmail.com
кандидат медицинских наук

Н. Кац

ООО «ДжоинТекСэлл»

кандидат медицинских наук

Р. Болгарин

ООО «ДжоинТекСэлл»

М. Петкова

ООО «ДжоинТекСэлл»

И. Корниенко

Московский физико-технический институт (государственный университет)

А. Мелерзанов

Московский физико-технический институт (государственный университет)

кандидат медицинских наук

Н. Мантурова

Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова

доктор медицинских наук

В. Нестеренко

ФНИЦ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи

доктор медицинских наук, профессор

Список литературы

  1. Johal K., Lees V., Reid A. Adipose-derived stem cells: selecting for translational success // Regen. Med. - 2015; 10 (1): 79-96.
  2. Minteer D., Marra K., Rubin J. Adipose stem cells: biology, safety, regulation, and regenerative potential // Clin. Plast. Surg. - 2015; 42 (2): 169-79.
  3. Lim M., Ong W., Sugii S. The current landscape of adipose-derived stem cells in clinical applications // Expert Rev. Mol. Med. - 2014; 16: e8.
  4. Uzbas F., May I., Parisi A. et al. Molecular physiognomies and applications of adipose-derived stem cells // Stem. Cell. Rev. - 2015; 11 (2): 298-308.
  5. De Francesco F., Ricci G., D'Andrea F. et al. Human adipose stem cells: from bench to bedside // Tissue Eng. Part B Rev. - 2015; 21 (6): 572-84.
  6. Mizuno H., Tobita M., Uysal A. Concise review: Adipose-derived stem cells as a novel tool for future regenerative medicine // Stem. Cells. - 2012; 30 (5): 804-10.
  7. Huang S., Fu R., Shyu W. et al. Adipose-derived stem cells: isolation, characterization, and differentiation potential // Cell. Transplant. - 2013; 22 (4): 701-9.
  8. Gentile P., Orlandi A., Scioli M. et al. Concise review: adipose-derived stromal vascular fraction cells and platelet-rich plasma: basic and clinical implications for tissue engineering therapies in regenerative surgery // Stem. Cells Transl. Med. - 2012; 1 (3): 230-6.
  9. Liao H., Chen C. Osteogenic potential: Comparison between bone marrow and adipose-derived mesenchymal stem cells // World J. Stem Cells. - 2014; 6 (3): 288-95.
  10. Zuk P., Zhu M., Mizuno H. et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies // Tissue Eng. - 2001; 7 (2): 211-28.
  11. Morris M., Beare J., Reed R. et al. Systemically delivered adipose stromal vascular fraction cells disseminate to peripheral artery walls and reduce vasomotor tone through a CD11b+-cell-dependent mechanism // Stem Cells Transl. Med. -2015; 4 (4): 369-80.
  12. Granel B., Daumas A., Jouve E. et al. Safety, tolerability and potential efficacy of injection of autologous adipose-derived stromal vascular fraction in the fingers of patients with systemic sclerosis: an open-label phase I trial // Ann. Rheum. Dis. - 2015; 74 (12): 2175-82.
  13. Atalay S., Coruh A., Deniz K. Stromal vascular fraction improves deep partial thickness burn wound healing // Burns. - 2014; 40 (7): 1375-83.
  14. Rodriguez J., Boucher F., Lequeux C. et al. Intradermal injection of human adipose-derived stem cells accelerates skin wound healing in nude mice // Stem Cell Res. Ther. - 2015; 6: 241.
  15. Gotoh M., Yamamoto T., Kato M. et al. Regenerative treatment of male stress urinary incontinence by periurethral injection of autologous adipose-derived regenerative cells: 1-year outcomes in 11 patients // Int. J. Urol. - 2014; 21 (3): 294-300.
  16. Kim I., Bang S., Lee S. et al. Clinical implication of allogenic implantation of adipogenic differentiated adipose-derived stem cells // Stem Cells Transl. Med. -2014; 3 (11): 1312-21.
  17. Gir P., Oni G., Brown S. et al. Human adipose stem cells: current clinical applications // Plast. Reconstr. Surg. - 2012; 129 (6): 1277-90.
  18. Oberbauer E., Steffenhagen C., Wurzer C. et al. Enzymatic and non-enzymatic isolation systems for adipose tissue-derived cells: current state of the art // Cell Regen. (Lond.). - 2015; 4: 7.
  19. Aronowitz J., Ellenhorn J. Adipose stromal vascular fraction isolation: a head-to-head comparison of four commercial cell separation systems // Plast. Reconstr. Surg. - 2013; 132 (6): 932-9.
  20. Doi K., Tanaka S., Iida H. et al. Stromal vascular fraction isolated from lipo-aspirates using an automated processing system: bench and bed analysis // J. Tissue Eng. Regen. Med. - 2013; 7 (11): 864-70.
  21. Güven S., Karagianni M., Schwalbe M. et al. Validation of an automated procedure to isolate human adipose tissue-derived cells by using the Sepax® technology // Tissue Eng. Part C Methods. - 2012; 18 (8): 575-82.
  22. Fraser J., Hicok K., Shanahan R. et al. The Celution® System: Automated Processing of Adipose-Derived Regenerative Cells in a Functionally Closed System // Adv. Wound Care (New Rochelle). - 2014; 3 (1): 38-45.
  23. Sundar-Raj S., Deshmukh A., Priya N. et al. Development of a System and Method for Automated Isolation of Stromal Vascular Fraction from Adipose Tissue Lipoaspirate // Stem Cells Int. - 2015; 2015: 109353.
  24. Cleveland E., Albano N., Hazen A. Roll, Spin, Wash, or Filter? Processing of Lipoaspirate for Autologous Fat Grafting: An Updated, Evidence-Based Review of the Literature // Plast. Reconstr. Surg. - 2015; 136 (4): 706-13.
  25. Torio-Padron N., Huotari A., Eisenhardt S. et al. Comparison of preadipocyte yield, growth and differentiation characteristics from excised versusaspirated adipose tissue // Cells Tissues Organs. - 2010; 191 (5): 365-71.
  26. Park H., Williams R., Goldman N. et al. Comparison of effects of 2 harvesting methods on fat autograft // Laryngoscope. - 2008; 118 (8): 1493-9.
  27. von Heimburg D., Hemmrich K., Haydarlioglu S. et al. Comparison of viable cell yield from excised versus aspirated adipose tissue // Cells Tissues Organs. -2004; 178 (2): 87-92.
  28. Sterodimas A., Boriani F., Magarakis E. et al. Thirtyfour years of liposuction: past, present and future // Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. - 2012; 16 (3): 393-406.
  29. Lozinski A., Huq N. Tumescent liposuction // Clin. Plast. Surg. - 2013; 40 (4): 593-613.
  30. Oedayrajsingh-Varma M., van Ham S., Knippenberg M. et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cell yield and growth characteristics are affected by the tissue-harvesting procedure // Cytotherapy. - 2006; 8 (2): 166-77.
  31. Chung M., Zimmermann A., Paik K. et al. Isolation of human adipose-derived stromal cells using laser-assisted liposuction and their therapeutic potential in regenerative medicine // Stem Cells Transl. Med. - 2013; 2 (10): 808-17.
  32. Mojallal A., Auxenfans C., Lequeux C. et al. Influence of negative pressure when harvesting adipose tissue on cell yield of the stromal-vascular fraction // Biomed. Mater. Eng. - 2008; 18 (4-5): 193-7.
  33. Muscari C., Bonafè F., Fiumana E. et al. Comparison between stem cells harvested from wet and dry lipoaspirates // Connect. Tissue Res. - 2013; 54 (1): 34-40.
  34. Iyyanki T., Hubenak J., Liu J. et al. Harvesting technique affects adipose-derived stem cell yield // Aesthet. Surg. J. - 2015; 35 (4): 467-76.
  35. Fraser J., Wulur I., Alfonso Z. et al. Differences in stem and progenitor cell yield in different subcutaneous adipose tissue depots // Cytotherapy. - 2007; 9 (5): 459-67.
  36. Faustini M., Bucco M., Chlapanidas T. et al. Nonexpanded mesenchymal stem cells for regenerative medicine: yield in stromal vascular fraction from adipose tissues // Tissue Eng. Part C Methods. - 2010; 16 (6): 1515-21.
  37. Matsumoto D., Shigeura T., Sato K. et al. Influences of preservation at various temperatures on liposuction aspirates // Plast. Reconstr. Surg. - 2007; 120 (6): 1510-7.
  38. Веремеев А.В., Болгарин Р.Н., Кац Н.Г. и др. Стромально-васкулярная фракция жировой ткани как альтернативный источник клеточного материала для регенеративной медицины // Гены и клетки. - 2016; XI (1): 35-42.
  39. Мелерзанов А.В., Мантурова Н.Е. и др. Липосакция и клеточная терапия // Врач. - 2014; 4: 12-4.
  40. Мелерзанов А.В., Мантурова Н.Е. Минимально манипулируемый клеточный продукт в пластической хирургии и регенеративной медицине // Врач. - 2015; 8: 78-80.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах