Сравнительный анализ диагностической эффективности количественной полимеразой цепной реакции и культурального метода в диагностике урогенитальных инфекций и оценке влагалищной микрофлоры

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Современная диагностика инфекционно-воспалительных заболеваний и нарушений микрофлоры женского урогенитального тракта требует выбора оптимального лабораторного метода. На основе анализа литературы проводится сравнение диагностической эффективности количественной полимеразной цепной реакции и культурального (микробиологического) метода. Рассматриваются достоинства и недостатки методов. Рациональное использование методов, основанное на их преимуществах и ограничениях, является ключом к эффективной диагностике.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

В. А. Каптильный

Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

Автор, ответственный за переписку.
Email: rtchilova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2656-132X
SPIN-код: 4312-3455

кандидат медицинских наук, доцент

Россия

Р. А. Чилова

Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

Email: rtchilova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6331-3109
SPIN-код: 4137-4848

доктор медицинских наук, профессор

Россия

Д. В. Лысцев

Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

Email: rtchilova@gmail.com
ORCID iD: 0009-0006-3826-3174
Россия

М. В. Позняк

Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

Email: rtchilova@gmail.com
ORCID iD: 0009-0006-8217-0784
Россия

Список литературы

  1. Workowski K.A., Bachmann L.H., Chan P.A. et al. Sexually transmitted infections treatment guidelines, 2021. MMWR Recomm Rep. 2021; 70 (4): 1–187. doi: 10.15585/mmwr.rr7004a1
  2. Unemo M., Bradshaw C.S., Hocking J.S. et al. Sexually transmitted infections: challenges ahead. Lancet Infect Dis. 2017; 17 (8), e235-e279. doi: 10.1016/S1473-3099(17)30310-9
  3. Национальное руководство по акушерству. Под ред. Г.М. Савельевой, Г.Т. Сухих, В.Н. Серова, В.Е. Радзинского. 2-е изд., перераб. и доп. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2022; 1080 с. [National Guidelines for Obstetrics. Ed. by G.M. Savelyeva, G.T. Sukhikh, V.N. Serov, V.E. Radzinsky. 2nd ed., revised and expanded. Moscow: GEOTAR-Media, 2022; 1080 pp. (in Russ.)].
  4. Национальное руководство по лабораторной диагностике. Под ред. В.В. Долгова, В.В. Меньшикова. М., 2013; 928 с. [National Guidelines for Laboratory Diagnostics. Edited by V.V. Dolgov, V.V. Menshikov. Moscow, 2013; 928 p. (in Russ.)].
  5. Chernesky M., Jang D., Luinstra K. et al. High analytical sensitivity and low rates of inhibition may contribute to detection of Chlamydia trachomatis in significantly more women by the APTIMA Combo 2 assay. J Clin Microbiol. 2006; 44 (2): 400–5. doi: 10.1128/JCM.44.2.400-405.2006
  6. Schachter J., Chernesky M.A., Willis D.E. et al. Vaginal swabs are the specimens of choice when screening for Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae: results from a multicenter evaluation of the APTIMA assays for both infections. Sex Transm Dis. 2005; 32 (12): 725–8. doi: 10.1097/01.olq.0000190092.59482.96
  7. Unemo M., Shafer W.M. Antimicrobial resistance in Neisseria gonorrhoeae in the 21st century: past, evolution, and future. Clin Microbiol Rev. 2014; 27 (3): 587–613. doi: 10.1128/CMR.00010-14
  8. Van Der Pol B., Ferrero D.V., Buck-Barrington L. et al. Multicenter evaluation of the BDProbeTec ET System for detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae in urine specimens, female endocervical swabs, and male urethral swabs. J Clin Microbiol. 2001; 39 (3): 1008–16. doi: 10.1128/JCM.39.3.1008-1016.2001
  9. Schwebke J.R., Hobbs M.M., Taylor S.N. et al. Molecular testing for Trichomonas vaginalis in women: results from a prospective U.S. clinical trial. J Clin Microbiol. 2011; 49 (12): 4106–11. doi: 10.1128/JCM.01291-11
  10. Huppert J.S., Mortensen J.E., Reed J.L. et al. Rapid antigen testing compares favorably with transcription-mediated amplification assay for the detection of Trichomonas vaginalis in young women. Clin Infect Dis. 2007; 45 (2): 194–8. doi: 10.1086/518851
  11. Jensen J.S., Cusini M., Gomberg M. et al. 2016 European guideline on Mycoplasma genitalium infections. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2016; 30 (10): 1650–6. doi: 10.1111/jdv.13849
  12. Lis R., Rowhani-Rahbar A., Manhart L.E. (2015). Mycoplasma genitalium infection and female reproductive tract disease: a meta-analysis. Clin Infect Dis. 2015; 61 (3): 418–26. doi: 10.1093/cid/civ312
  13. Shipitsyna E., Roos A., Datcu R. et al. (2013). Composition of the vaginal microbiota in women of reproductive age – sensitive and specific molecular diagnosis of bacterial vaginosis is possible? PLoS One. 2013; 8 (4): e60670. doi: 10.1371/journal.pone.0060670
  14. Fredricks D.N., Fiedler T.L., Marrazzo J.M. (2005). Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N Engl J Med. 2005; 353 (18): 1899–911. doi: 10.1056/NEJMoa043802
  15. Rumyantseva T.A., Bellen G., Romanuk T.N. et al. Utility of microscopic techniques and quantitative real-time polymerase chain reaction for the diagnosis of vaginal microflora alterations. J Low Genit Tract Dis. 2015; 19 (2): 124–8. doi: 10.1097/LGT.0000000000000060
  16. Menard J.P., Mazouni C., Salem-Cherif I. et al. (2010). High vaginal concentrations of Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis in women undergoing preterm labor. Obstet Gynecol. 2010; 115 (1): 134–40. doi: 10.1097/AOG.0b013e3181c391d7
  17. Mushi M.F., Bader O., Taverne-Ghadwal L. et al. Crucial role of fluconazole-diffusion tests for the identification of Candida glabrata in resource-limited settings. Journal of Fungi. 2010; 2 (4): 29.
  18. Ahmad A., Khan A.U. Prevalence of Candida species and potential risk factors for vulvovaginal candidiasis in Aligarh, India. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2009; 144 (1): 68–71. doi: 10.1016/j.ejogrb.2008.12.020

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ИД "Русский врач", 2025