Метод жидкостной цитологии для диагностики предраковых поражений маточной трубы при опухолях яичников


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Изучение цитологических препаратов мазков фимбриального отдела маточной трубы для выявления особенностей цитологической картины при серозных опухолях яичника и возможностей использования метода для диагностики серозного рака яичников на ранних стадиях. Материал и методы. В исследование была включена 21 пациентка (средний возраст 45,6±13,7года), у которой были взяты 36 мазков из 36 маточных труб. Материал помещался в контейнер с запатентованным концентрирующим раствором, являющимся буферной средой с низким содержанием метанола, после окраски по Папаниколау оценивался микроскопически. При выявлении атипических железистых клеток проводилось иммуноцитохимическое исследование с помощью антител к p16INK4a (клон E6H4, RTU) и Ki67(клон 274-11AC3, RTU) в виде набора CINtec PLUS (Roche) и антител к р53 (клон DO-7, RTU, Dako). Результаты исследования. В маточных трубах при серозных пограничных опухолях при гистологической диагностике во всех случаях выявлялась папиллярная гиперплазия, однако четких цитологических признаков данной патологии выявлено не было. Наиболее характерными были изменения цитологических характеристик клеток при серозных карциномах яичников высокой степени злокачественности, которые в большей степени касались особенностей ядерного аппарата клеток и были подтверждены иммуноцитохимически с помощью маркеровр16, р53 и Ki-67. Заключение. Дальнейшее изучение цитологических особенностей мазков при интраэпителиальной патологии маточной трубы необходимо для разработки цитологических критериев, которые позволят диагностировать интраэпителиальные поражения на начальных стадиях, создать платформу для развития новых подходов к поиску ранних диагностических маркеров серозных карцином яичников.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Александра Вячеславовна Асатурова

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: a_asaturova@oparina4.ru
к.м.н., с.н.с. отделения патологической анатомии

Майя Викторовна Санникова

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: m_sannikova@oparina4.ru,mvs6103@gmail.com
к.м.н., научный сотрудник отделения комбинированных и комплексных методов лечения гинекологических заболеваний

Григорий Николаевич Хабас

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: g_khabas@oparina4.ru
к.м.н., руководитель отделения комбинированных и комплексных методов лечения гинекологических заболеваний

Анжелика Владимировна Тимофеева

ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: v_timofeeva@oparina4.ru
к.б.н., с.н.с. лаборатории молекулярной патофизиологии

Список литературы

  1. Siegel R., Ma J., Zou Z., Jemal A. Cancer statistics. 2014. CA Cancer J. Clin. 2014; 64(1): 9-29.
  2. Чиссов В.И., Старинский В.В., Петрова Г.В. ред. Злокачественные заболевания в России в 2011году (заболеваемость и смертность). М.: ФГБУ «МНИОИ им. П.А. Герцена» Минздрава России; 2013. 289с. [Chissov V.I., Starinsky V.V., Petrova G.V., ed. Malignant diseases in Russia in 2011 (morbidity and mortality). Moscow: FGBU P.A. Herzen MNIOI, Ministry of Health of Russia; 2013. 289p. (in Russian)]
  3. Стерджен К.М., Даффи М.Дж., Стенман У.-Х., Лилья Г., Брюннер Н., Дэниэл У. Чан Д.У. и др. Клиническое руководство Национальной академии клинической биохимии США по применению маркеров опухолей яичка, предстательной железы, прямой и ободочной кишки, молочной железы и яичников в медицинских лабораториях. Лабораторная диагностика. 2013; 3: 3-13. [Stufen K.M., Duffy M.J., Stenman U.-H., Lilya G., Brunner N., Daniel U., Chan D.U. et al. Clinical guidelines of the National Academy of Clinical Biochemistry of the United States on the use of markers of tumors of the testicle, prostate, rectum and colon, breast and ovaries in medical laboratories. Laboratornaya diagnostika. 2013; 3: 3-13. (in Russian)]
  4. Hoskins P., Gotlieb W. Ovarian cancer screening: UKCTOCS trial. Lancet. 2016; 387(10038): 2602-3. doi: 10.1016/S0140-6736(16)30848-0.
  5. Wei S.U., Li H., Zhang B. The diagnostic value of serum HE4 and CA-125 and ROMA index in ovarian cancer. Biomed. Rep. 2016; 5(1): 41-4.
  6. Kurman R.J., Shih I.M. The origin and pathogenesis of epithelial ovarian cancer: a proposed unifying theory. Am. J. Surg. Pathol. 2010; 34(3): 433-43. doi: 10.1097/PAS.0b013e3181cf3d79.
  7. Gershenson D.M. Low-grade serous carcinoma of the ovary or peritoneum. Ann. Oncol. 2016; 27(Suppl. 1): i45-i49. doi: 10.1093/annonc/mdw085.
  8. Karst A.M., Drapkin R. Ovarian cancer pathogenesis: a model in evolution. J. Oncol. 2010; 2010: 932371. doi: 10.1155/2010/932371.
  9. Powell C.B., Kenley E., Chen L.M., Crawford B., McLennan J., Zaloudek C.J. et al. Risk-reducing salpingo-oophorectomy in BRCA mutation carriers: role of serial sectioning in the detection of occult malignancy. J. Clin. Oncol. 2005; 23(1): 127-32.
  10. Finch A., Shaw P., Rosen B., Murphy J., Narod S.A., Colgan T.J. Clinical and pathologic findings of prophylactic salpingo-oophorectomies in 159 BRCA1 and BRCA2 carriers. Gynecol. Oncol. 2006; 100(1): 58-64.
  11. Ren Z., Zhang Y., Yang H., Zhu L., Maeda D., Takazawa Y. Liquid-based cytology aids in primary fallopian tube cancer diagnosis. J. Zhejiang Univ. Sci B. 2009; 10(8): 635-8.
  12. Maeda D., Takazawa Y., Ota S., Takeuchi Y., Seta A., Nakagawa S. et al. Bilateral microscopic adenocarcinoma of the fallopian tubes detected by an endometrial cytologic smear. Int. J Gynecol. Pathol. 2010; 29(3): 273-7.
  13. Minato H., Shimizu M., Hirokawa M., Fujiwara K., Kohno I., Manabe T. Adenocarcinoma in situ of the fallopian tube. A case report. Acta Cytol. 1998; 42(6): 1455-7.
  14. Dudkiewicz J. Quantitative and qualitative changes of epithelial cells of fallopian tubes in women according to the phase of menstrual cycle. A cytologic study. Acta Cytol. 1970; 14(8): 531-7.
  15. Dhanani M., Nassar A., Dinh T. Classification of fallopian tube cytology sampling to develop a model for future peritoneal and ovarian cancer screening. J. Am. Soc. Cytopathol. 2014; 3(5): S35-6. doi: 10.1016/j.jasc.2014.09.076.
  16. Lum D., Guido R., Rodriguez E., Lee T., Mansuria S., D'Ambrosio L., Austin R.M. Brush cytology of the fallopian tube and implications in ovarian cancer screening. J. Minim. Invasive Gynecol. 2014; 21(5): 851-6. doi: 10.1016/j. jmig.2014.03.017.
  17. Herzberg A.J., Raso D.S., Silverman J.F. Color atlas of normal cytology. Churchill Livingstone; 1999.
  18. Haeusler G., Tempfer C., Lehner R., Sam C., Kainz C. Fallopian tissue sampling with a cytobrush during hysteroscopy: a new approach for detecting tubal infection. Fertil. Steril. 1997; 67(3): 580-2.
  19. Matsushima T., Kaseki H., Ishihara K., Araki T. J Assessment of fallopian tube cytology for the diagnosis of endometriosis and hydrosalpinx. Nippon Med. Sch. 2002; 69(5): 445-50.
  20. Mulvany N.J., Arnstein M., Ostör A.G. Fallopian tube cytology: a histocorrelative study of 150 washings. Diagn. Cytopathol. 1997; 16(6): 483-8.
  21. Kurman R.J., Shih Ie.M. Molecular pathogenesis and extraovarian origin of epithelial ovarian cancer--shifting the paradigm. Hum. Pathol. 2011; 42(7): 918-31. doi: 10.1016/j.humpath.2011.03.003.
  22. Асатурова А.В., Коган Е.А., Ежова Л.С., Жарков Н.В., Файзуллина Н.М., Хабас Г.Н. Папиллярная гиперплазия маточной трубы: сочетание с серозными пограничными опухолями яичника и молекулярно-биологическая характеристика. Акушерство и гинекология. 2015; 11: 58-64. [Asaturova A.V., Kogan E.A., Ezhova L.S., Zharkov N.V., Faizullina N.M., Khabas G.N. Papillary tubal hyperplasia: Concurrence with serous borderline ovarian tumors and molecular biological characteristics. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2015; 11: 58-64. (in Russian)]
  23. Kuhn E., Kurman R.J., Soslow R.A., Han G., Sehdev A.S., Morin P.J. et al. The diagnostic and biological implications of laminin expression in serous tubal intraepithelial carcinoma. Am. J. Surg. Pathol. 2012; 36(12): 1826-34. doi: 10.1097/PAS.0b013e31825ec07a.
  24. Matjusaitis M., Chin G., Sarnoski E.A., Stolzing A. Biomarkers to identify and isolate senescent cells. Ageing Res. Rev. 2016; 29: 1-12.
  25. Vang R., Visvanathan K., Gross A., Maambo E., Gupta M., Kuhn E. et al. Validation of an algorithm for the diagnosis of serous tubal intraepithelial carcinoma. Int. J. Gynecol. Pathol. 2012; 31(3): 243-53. doi: 10.1097/PGP.0b013e31823b8831.
  26. Mahe E., Tang S., Deb P., Sur M., Lytwyn A., Daya D. Do deeper sections increase the frequency of detection of serous tubal intraepithelial carcinoma (STIC) in the „sectioning and extensively examining the fimbriated end” (SEE-FIM) protocol? Int. J. Gynecol. Pathol. 2013; 32(4): 353-7. doi: 10.1097/ PGP.0b013e318264ae09.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2017