ИССЛЕДОВАНИЕ ДЕЙСТВИЯ АНТИМИКОТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ НА БИОПЛЕНКИ, СФОРМИРОВАННЫЕ ГРИБАМИ РОДА CANDIDA


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель работы. Оценить антибиопленочный и антикандидозный эффект некоторых актуальных антимикотических препаратов (композиция «кетоконазол-полиэтиленоксиды», нистатина, флуконазола) в отношении биопленочных клеток грибов рода Candida. Материал и методы. В работе использовались следующие методы: 1) моделирование биопленок грибов рода Candida в условиях in vitro; 2) исследование биопленочной антибиотикорезистентности грибов рода Candida на основе оценки их жизнеспособности методом колониеобразующих единиц; 3) оценка патогенности кандид на основе исследования гифообразования методом дифференциально-интерференционного контраста; 4) сканирующая электронная микроскопия; 5) лазерная сканирующая конфокальная микроскопия. Биопленки были сформированы на основе штаммов C. albicans, C. glabrata и C. parapsilosis. Результаты. Из исследованных антимикотических (антикандидозных) препаратов самый сильный антибиопленочный эффект проявляла композиция «кетоконазол-ПЭО», которая при 48-часовой экспозиции с кандидозными биопленками вызывала гибель 100% клеток у всех изученных штаммов. Композиция «кетоконазол-ПЭО» демонстрировала антивирулентные свойства - подавляла гифообразование в ранних (24 часа) биопленках. Заключение. Композиция «кетоконазол-ПЭО» может эффективно использоваться для борьбы с кандидозными биопленками.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Игорь Викторович ЧЕБОТАРЬ

Нижегородская государственная медицинская академия Минздрава России

Email: nizarnn@yandex.ru
кандидат медицинских наук, доцент кафедры микробиологии и иммунологии 603005, Россия, Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д. 10/1

Владимир Вячеславович ПАРШИКОВ

Нижегородская государственная медицинская академия Минздрава России

Email: pv1610@mail.ru
доктор медицинских наук, профессор кафедры госпитальной хирургии им. Б.А. Королева 603005, Россия, Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д. 10/1

Список литературы

  1. Сергеев А.Ю., Сергеев Ю.В. Кандидоз. Природа инфекции, механизмы агрессии и защиты, лабораторная диагностика, клиника и лечение. М.: Триада-Х; 2001. 472 с.
  2. Sobel J.D., Faro S., Force R.W., Foxman B., Ledger W.J., Nyirjesy P.R. et al. Vulvovaginal candidiasis: epidemiologic, diagnostic, and therapeutic considerations. Am. J. Obstet. Gynecol. 1998; 178: 203-11.
  3. Harriott M.M., Lilly E.A., Rodriguez T.E., Fidel P.L. Jr., Noverr M.C. Candida albicans forms biofilms on the vaginal mucosa. Microbiology. 2010; 156(Pt12): 3635-44.
  4. Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Бактериальная биопленка как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011; 3: 99-109.
  5. Бехало В.А., Бондаренко В.М., Сысолятина Е.В., Нагурская Е.В. Иммунобиологические особенности бактериальных клеток медицинских биопленок. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2010; 4: 97-105.
  6. Costerton J.W., Stewart P.S., Greenberg E.P. Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections. Science. 1999; 284: 1318-22.
  7. Khot P.D., Suci P.A., Miller R.L., Nelson R.D., Tyler B.J. A small subpopulation of blastospores in Candida albicans biofilms exhibit resistance to amphotericin B associated with differential regulation of ergosterol and beta-1,6-glucan pathway genes. Antimicrob. Agents Chemother. 2006; 50(11): 3708-16.
  8. Ramage G., Vande Walle K., Wickes B.L., Lopez-Ribot J.L. Standardized method for in vitro antifungal susceptibility testing of Candida albicans biofilms. Antimicrob. Agents Chemother. 2001; 45(9):2475-9.
  9. Чеботарь И.В., Маянский А.Н., Кончакова Е.Д., Лазарева А.В., Чистякова В.П. Антибиотикорезистентность биопленочных бактерий. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2012; 14(1): 51-8.
  10. Чеботарь И.В. Механизмы антибиопленочного иммунитета. Вестник РАМН. 2012; 12: 22-9.
  11. Frank K.L., Reichert E.J., Piper K.E., Patel R. In vitro effects of antimicrobial agents on planktonic and biofilm forms of Staphylococcus lugdunensis clinical isolates. Antinicrob. Agents Chemother. 2007; 51(3): 888-95.
  12. Moskowitz S.M., Foster J.M., Emerson J., Burns J.L. Clinically feasible biofilm susceptibility assay for isolates of Pseudomonas aeruginosa from patients with cystic fibrosis. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(5): 1915-22.
  13. Sepandj F., Ceri H., Gibb A., Read R., Olson M. Minimum inhibitory concentration (MIC) versus minimum biofilm eliminating concentration (MBEC) in evaluation of antibiotic sensitivity of gram-negative bacilli causing peritonitis. Perit. Dial. Int. 2004; 24(1): 65-7.
  14. Liu H., Kohler J., Fink G.R. Suppression of hyphal formation in Candida albicans by mutation of a STE12 homolog. Science. 1994; 266:1723-5.
  15. Danby C.S., Boikov D., Rautemaa-Richardson R., Sobel J. Effect of pH on in vitro susceptibility of Candida glabrata and Candida albicans to 11 antifungal agents and implications for clinical use. Antimicrob. Agents Chemother. 2012; 56(3): 1403-6.
  16. Batrakova E.V., Kabanov A.V. Pluronic block copolymers: evolution of drug delivery concept from inert nanocarriers to biological response modifiers. J. Control Release. 2008; 130(2): 98-106.
  17. Савичева А.М., Кисина В.И., Соколовский Е.В., Башмакова М.А., Гриненко Г.В., Смирнова Т.С. и др. Кандидозный вульвовагинит: Методические рекомендации для врачей. СПб.: «Изд-во Н-Л»; 2009. 88

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО «Бионика Медиа», 2013

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах