Сравнение информативности исследования биологического материала, полученного из цервикального канала и влагалища, при обследовании небеременных пациентов на наличие генитальных инфекций


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Оценить информативность исследования биологического материала из шейки матки и влагалища для диагностики вульвовагинальных и цервикальных инфекций у пациенток, обратившихся к гинекологу. Материал и методы. В исследование были включены 206 небеременных пациенток. Проводилось исследование биологического материала, полу ченного из цервикального канала и влагалища, методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в реальном времени. Результаты. С. trachomatis и T. vaginalis чаще обнаруживали в вагинальных образцах, M. genitalium и N. gonorrhoreae - с одинаковой частотой в вагинальных и цервикальных образцах. Условно- патогенные генитальные микоплазмы также чаще обнаруживали в вагинальном биоматериале; концентрация ДНК этих микроорганизмов в вагинальных и цервикальных образцах демонстрировала достоверную корреляцию. Заключение. Информативность исследования биологического материала, полученного из влагалища, превышает информативность исследования материала, полученного из цервикального канала при обследовании небеременных пациенток.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Татьяна Андреевна Румянцева

ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: Ivanovatatiana86@yandex.ru
научный сотрудник лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции

Тамара Игоревна Долгова

ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: tamara.dolgova89@gmail.com
м.н.с. лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции

Елена Николаевна Головешкина

ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: elenagoloveshkina@yandex.ru
к.б.н., м.н.с. лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции

Александр Евгеньевич Гущин

ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: aguschin1965@pcr.ru
к.б.н., руководитель лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции

Список литературы

  1. Савичева А.М., Шипицына Е.В., Соколовский Е.В., Башмакова М.А., Смирнова Т.С., Крысанова А.А. и др. Лабораторная диагностика урогенитальной хламидийной инфекции. Методические рекомендации для врачей. СПб.: Н-Л; 2009. 56с.
  2. Никонов А.П., Асцатурова О.Р., Чилова Р.А., Ищенко А.И., Рафальский В.В. Инфекции в акушерстве и гинекологии: диагностика и антимикробная химиотерапия. Пособие для врачей. М.: ПАГРИ; 2006. 28с.
  3. Соколовский Е.В., Савичева А.М., Кисина В.И., Потекаев Н.Н., Домейка М. Гонококковаяинфекция. Ведение больных. Рекомендации для врачей. СПб.: ФОЛИАНТ; 2008. 120с.
  4. Lanjouw E., Ossewaarde J.M., Stary A., Boag F., Van der Meijden W.I. 2010 European guideline for the management of Chlamydia trachomatis infections. Int. J. STD AIDS. 2010; 21:729-37.
  5. Workowski K.A., Berman S.; Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Sexually transmitted disease treatment guidelines, 2010. MMWR Recomm. Rep. 2010; 59(RR-12): 1-110.
  6. Иванова Т.А., Гущин А.Е., Белова А.В., Асцатурова О.Р., Никонов А.П. Выбор локуса для получения биологического материала при обследовании беременных на генитальные инфекции. Акушерство и гинекология. 2013; 3: 98-101.
  7. Гомберг М.А., Гущин А.Е. Хламидийная инфекция в современной гинекологии: основные аспекты профилактики и лечения воспалительных заболеваний органов малого таза. Гинекология. 2012; 14(4):19-22.
  8. Bignell C., Unemo M. 2012 European guideline on the diagnosis and treatment of gonorrhoea in adults. Int. J. STD AIDS. 2013; 24(2): 85-92. doi: 10.1177/0956462412472837.
  9. Shipitsyna E., Zolotoverkhaya E., Agné-Stadling I., Krysanova A., Savicheva A., Sokolovsky E. et al. First evaluation of six nucleic acid amplification tests widely used in the diagnosis of Chlamydia trachomatis in Russia. J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2009; 23(3): 268-76. doi: 10.1111/j.1468-3083.2008.03038.x.
  10. Shipitsyna E., Zolotoverkhaya E., Hjelmevoll S.O., Maximova A., Savicheva A., Sokolovsky E. et al. Evaluation of six nucleic acid amplification tests used for diagnosis of Neisseria gonorrhoeae in Russia compared with an international strictly validated real-time porA pseudogene polymerase chain reaction. J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2009; 23(11): 1246-53. doi: 10.1111/j.1468-3083.2009.03290.x.
  11. Shafer M.A., Moncada J., Boyer C.B., Betsinger K., Flinn S.D., Schachter J. Comparing first-void urine specimens, self-collected vaginal swabs, and endocervical specimens to detect Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae by a nucleic acid amplification test. J. Clin. Microbiol. 2003; 41(9): 4395-9.
  12. Cosentino L.A., Landers D.V., Hillier S.L. Detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae by strand displacement amplification and relevance of the amplification control for use with vaginal swab specimens. J. Clin. Microbiol. 2003; 41(8): 3592-6.
  13. Ginocchio C.C., Chapin K., Smith J.S., Aslanzadeh J., Snook J., Hill C.S. et al. Prevalence of Trichomonas vaginalis and coinfection with Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae in the United States as determined by the Aptima Trichomonas vaginalis nucleic acid amplification assay. J. Clin. Microbiol. 2012; 50 (8): 2601-8. doi: 10.1128/JCM.00748-12.
  14. Munson E., Napierala M., Schell R.F. Insights into trichomoniasis as a result of highly sensitive molecular diagnostics screening in a high-prevalence sexually transmitted infection community. Expert Rev. Anti Infect. Ther. 2013; 11(8): 845-63. doi: 10.1586/14787210.2013.814429.
  15. Wroblewski J.K., Manhart L.E., Dickey K.A., Hudspeth M.K., Totten P.A. Comparison of transcription-mediated amplification and PCR assay results for various genital specimen types for detection of Mycoplasma genitalium. J. Clin. Microbiol. 2006; 44(9): 3306-12.
  16. Hardick J., Giles J., Hardick A., Hsieh Y.H., Quinn T., Gaydos C. Performance of the gen-probe transcription-mediated [corrected] amplification research assay compared to that of a multitarget real-time PCR for Mycoplasma genitalium detection. J. Clin. Microbiol. 2006; 44(4): 1236-40.
  17. Shipitsyna E., Zolotoverkhaya E., Dohn B., Benkovich A., Savicheva A., Sokolovsky E. et al. First evaluation of polymerase chain reaction assays used for diagnosis of Mycoplasma genitalium in Russia. J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2009; 23(10): 1164-72.
  18. Sherrard J., Donders G.G., White D., Jensen J.S. European (IUSTI/WHO) guideline on the management of vaginal discharge, 2011. Int. J. STD AIDS. 2011; 22(8): 421-9.
  19. Shipitsyna E., Zolotoverkhaya E., Chen C.Y., Chi K.H., Grigoryev A., Savicheva A. et al. Evaluation of polymerase chain reaction assays for the diagnosis of Trichomonas vaginalis infection in Russia. J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2013; 27(2): e217-23. doi: 10.1111/j. 1468-3083.2012.04593.x.
  20. Schwebke J.R., Hobbs M.M., Taylor S.N., Sena A.C., Catania M.G., Weinbaum B.S. et al. Molecular testing for Trichomonas vaginalis in women: results from a prospective U.S. clinical trial. J. Clin. Microbiol. 2011; 49(12): 4106-11. doi: 10.1128/JCM.01291-11.
  21. Прилепская В.Н., Кисина В.И., Соколовский Е.В., Савичева А.М., Гомберг М.А., Гущин А.Е. и др. К вопросу о роли генитальных микоплазм в урогенитальной патологии. Гинекология. 2007; 9(1): 31-8.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2015