Курение матери и нарушения метилирования ДНК у детей на ранних стадиях развития

  • Авторы: Одинцова В.В.1,2,3,4, Сайфитдинова А.Ф.5,6, Наумова О.Ю.7,8
  • Учреждения:
    1. ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова
    2. VU Университет
    3. Санкт-Петербургский государственный университет
    4. ФГБУ Центральный НИИ организации и информатизации здравоохранения Минздрава России
    5. ФГБОУ ВО Санкт Петербургский государственный университет
    6. АО «Международный центр репродуктивной медицины»
    7. Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН
    8. Хьюстонский университет
  • Выпуск: № 9 (2018)
  • Страницы: 5-12
  • Раздел: Статьи
  • URL: https://journals.eco-vector.com/0300-9092/article/view/248265
  • DOI: https://doi.org/10.18565/aig.2018.9.5-12
  • ID: 248265

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Проанализированы результаты современных исследований роли метилирования ДНК в эмбриональном развитии человека и влияния табачного дыма при курении матери на эпигенетический статус развивающегося ребенка. Молекулярные механизмы, обеспечивающие связь между материнским курением и его эффектами на развитие и здоровье потомка, особенно отдаленными эффектами, проявляемые в течение всей его жизни, являются объектом активного изучения медицины и биологии. Исследования последних лет в области геномики человека показали, что одним из таких механизмов может являться эпигенетическая регуляция активности генов, а именно устойчивые альтерации в этой системе под влиянием табачного дыма могут обусловливать сопутствующие курению нарушения развития и здоровья. Материнское курение во время беременности оказывает двойной эффект: во-первых, негативно влияет на здоровье женщины, а во-вторых, приводит к непоправимым нарушениям развития плода, сказывается на здоровье и развитии новорожденного, качестве его последующей жизни.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Вероника Викторовна Одинцова

ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова; VU Университет; Санкт-Петербургский государственный университет; ФГБУ Центральный НИИ организации и информатизации здравоохранения Минздрава России

Email: veronika.od@gmail.com
к.м.н., PhD исследователь кафедры биологической психологии Vrije Universiteit; ведущий научный сотрудник; советник директора

Алсу Фаритовна Сайфитдинова

ФГБОУ ВО Санкт Петербургский государственный университет; АО «Международный центр репродуктивной медицины»

Email: saifitdinova@mail.ru
к.б.н., директор ресурсного центра «Центр коллективного пользования оборудованием «Хромас»; зам. зав. лабораторией вспомогательных репродуктивных технологий

Оксана Юрьевна Наумова

Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН; Хьюстонский университет

Email: oksana.yu.naumova@gmail.com
к.б.н., старший научный сотрудник

Список литературы

  1. Fagerström К. The epidemiology of smoking: health consequences and benefits of cessation. Drugs. 2002; 62(Suppl. 2): 1-9.
  2. Lambers D.S., Clark K.E. The maternal and fetal physiologic effects of nicotine. Semin. Perinatol. 1996; 20(2): 115-26.
  3. Neuman A., Hohmann C., Orsini N., Pershagen G., Eller E., Kjaer H.F. et al.; ENRIECO Consortium. Maternal smoking in pregnancy and asthma in preschool children: a pooled analysis of eight birth cohorts. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2012; 186(10): 1037-43.
  4. Roza S.J., Verbürg B.O., Jaddoe V.W., Hofman A., Mackenbach J.P., Steegers E.A. et al. Effects of maternal smoking in pregnancy on prenatal brain development. The Generation R Study. Eur. J. Neurosci. 2007; 25(3): 611-7.
  5. Janssen B.G., Gyselaers W., Byun H.M., Roels H.A., Cuypers A., Baccarelli A.A., Nawrot T.S. Placental mitochondrial DNA and CYP1A1 gene methylation as molecular signatures for tobacco smoke exposure in pregnant women and the relevance for birth weight. J. Transl. Med. 2017; 15(1): 5.
  6. Banik A., Kandilya D., Ramya S., Stünkel W., Seng Chong Y., Dheen S.T. Maternal factors that induce epigenetic changes contribute to neurological disorders in offspring. Genes (Basel). 2017; 8(6). pii: E150.
  7. van Otterdijk S.D., Binder A.M., Michels K.B. Locus-specific DNA methylation in the placenta is associated with levels of pro-inflammatory proteins in cord blood and they are both independently affected by maternal smoking during pregnancy. Epigenetics. 2017; 12(10): 875-85.
  8. Meberg A., Sande H., Foss O.P., Stenwig J.T. Smoking during pregnancy--effects on the fetus and on thiocyanate levels in mother and baby. Acta Paediatr. Scand. 1979; 68(4): 547-52.
  9. Dolinoy D.C., Weidman J.R., Jirtle R.L. Epigenetic gene regulation: linking early developmental environment to adult disease. Reprod. Toxicol. 2007; 23(3): 297-307.
  10. Razin A. CpG methylation, chromatin structure and gene silencing-a three-way connection. EMBO J. 1998; 17(17): 4905-8.
  11. Escamilla-Del-Arenal M., DaRocha S.T., Heard E. Evolutionary diversity and developmental regulation of X-chromosome inactivation. Hum. Genet. 2011; 130(2): 307-27.
  12. Fazzari M.J., Greally J.M. Epigenomics: beyond CpG islands. Nat. Rev. Genet. 2004; 5(6): 446-55.
  13. Eckhardt F., Lewin J., Cortese R., Rakyan V.K., Attwood J., Burger M. et al. DNA methylation profiling of human chromosomes 6, 20 and 22. Nat. Genet. 2006; 38(12): 1378-85.
  14. Okano M., Bell D. W, Haber D.A., Li E. DNA methyltransferases Dnmt3a and Dnmt3b are essential for de novo methylation and mammalian development. Cell. 1999; 99(3): 247-57.
  15. Ramchandani S., Bhattacharya S.K., Cervoni N., Szyf M. DNA methylation is a reversible biological signal. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999; 96(11): 6107-12.
  16. Efimova O.A., Pendina A.A., Tikhonov A.V., Fedorova I.D., Krapivin M.I., Chiryaeva O.G., Shilnikova E.M., Bogdanova M.A., Kogan I.Y., Kuznetzova T.V., Gzgzyan A.M., Ailamazyan E.K., Baranov V.S. Chromosome hydroxymethylation patterns in human zygotes and cleavage-stage embryos. Reproduction. 2015; 149(3): 223-33.
  17. Wu H., D’Alessio A.C., Ito S., Xia K., Wang Z., Cui K. et al. Dual functions ofTet1 in transcriptional regulation in mouse embryonic stem cells. Nature. 2011; 473(7347): 389-93.
  18. Meaney M.J., Szyf M. Environmental programming of stress responses through DNA methylation: life at the interface between a dynamic environment and a fixed genome. Dialogues Clin. Neurosci. 2005; 7(2): 103-23.
  19. Naumova O.Y., Hein S., Suderman M., Barbot B., Lee M., Raefski A. et al. Epigenetic patterns modulate the connection between developmental dynamics of parenting and offspring psychosocial adjustment. Child Dev. 2016; 87(1): 98-110.
  20. Calvanese V., Lara E., Kahn A., Fraga M.F. The role of epigenetics in aging and age-related diseases. Aging Res. Rev. 2009; 8(4): 268-76.
  21. Landgrave-Gomez J., Mercado-Gomez O., Guevara-Guzmân R. Epigenetic mechanisms in neurological and neurodegenerative diseases. Front. Cell. Neurosci. 2015; 9: 58.
  22. Robertson K.D. DNA methylation and human disease. Nat. Rev. Genet. 2005; 6(8): 597-610.
  23. Jirtle R.L., Skinner M.K. Environmental epigenomics and disease susceptibility. Nat. Rev. Genet. 2007; 8(4): 253-62.
  24. Rakyan V.K., Down T.A., Balding D.J., Beck S. Epigenome-wide association studies for common human diseases. Nat. Rev. Genet. 2011; 12(8): 529-41.
  25. Chavez L., Jozefczuk J., Grimm C., Dietrich J., Timmermann B., Lehrach H. et al. Computational analysis of genome-wide DNA methylation during the differentiation of human embryonic stem cells along the endodermal lineage. Genome Res. 2010; 20(10): 1441-50.
  26. Haaf T. Methylation dynamics in the early mammalian embryo: implications of genome reprogramming defects for development. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2006; 310: 13-22.
  27. Dean W. DNA methylation and demethylation: a pathway to gametogenesis and development. Mol.Reprod. Dev. 2014; 81(2): 113-25.
  28. Reik W., Surani M.A. Germline and pluripotent stem cells. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2015; 7(11). pii: a019422.
  29. Breton C.V, Byun H.M., Wenten M., Pan F., Yang A., Gillil F.D. Prenatal tobacco smoke exposure affects global and gene-specific DNA methylation. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2009; 180(5): 462-7.
  30. Joubert B.R., Hâberg S.E., Nilsen R.M., Wang X., Vollset S.E., Murphy S.K. et al. 450K epigenome-wide scan identifies differential DNA methylation in newborns related to maternal smoking during pregnancy. Environ. Health Perspect. 2012; 120(10): 1425-31.
  31. Tehranifar P., Wu H.C., McDonald J.A., Jasmine F., Santella R.M., Gurvich I. et al. Maternal cigarette smoking during pregnancy and offspring DNA methylation in midlife. Epigenetics. 2018; 13(2): 129-34.
  32. Rzehak P., Saffery R., Reischl E., Covic M., Wahl S., Grote V. et al.; European Childhood Obesity Trial Study Group. Maternal smoking during pregnancy and DNA-methylation in children at age 5.5 years: epigenome-wide-analysis in the European Childhood Obesity Project (CHOP)-study. PLoS One. 2016; 11(5): e0155554.
  33. Sengupta S.M., Smith A.K., Grizenko N., Joober R. Locus-specific DNA methylation changes and phenotypic variability in children with attention-deficit hyperactivity disorder. Psychiatry Res. 2017; 256: 298-304.
  34. Shorey-Kendrick L.E., McEvoy C.T., Ferguson B., Burchard J., Park B.S., Gao L. et al. Vitamin C prevents offspring DNA methylation changes associated with maternal smoking in pregnancy. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2017; 196(6): 745-55.
  35. Rotroff D.M., Joubert B.R., Marvel S.W., Hâberg S.E., Wu M.C., Nilsen R.M. et al. Maternal smoking impacts key biological pathways in newborns through epigenetic modification in utero. BMC Genomics. 2016; 17(1): 976.
  36. Morales E., Vilahur N., Salas L.A., Motta V., Fernandez M.F., Murcia M. et al. Genome-wide DNA methylation study in human placenta identifies novel loci associated with maternal smoking during pregnancy. Int. J. Epidemiol. 2016; 45(5): 1644-55.
  37. Suter M., Ma J., Harris A., Patterson L., Brown K.A., Shope C. Maternal tobacco use modestly alters correlated epigenome-wide placental DNA methylation and gene expression. Epigenetics. 2011; 6(11): 1284-94.
  38. Joubert B.R., Felix J.F., Yousefi P., Bakulski K.M., Just A.C., Breton C. et al. DNA methylation in newborns and maternal smoking in pregnancy: genome-wide consortium meta-analysis. Am. J. Hum. Genet. 2016; 98(4): 680-96.
  39. Richmond R.C., Simpkin A.J., Woodward G., Gaunt T.R., Lyttleton O., McArdle W.L. et al. Prenatal exposure to maternal smoking and offspring DNA methylation across the lifecourse: findings from the Avon Longitudinal Study of Parents and Children (ALSPAC). Hum. Mol. Genet. 2015; 24(8): 2201-17.
  40. Markunas C.A., Xu Z., Harlid S., Wade P.A., Lie R.T., Taylor J.A., Wilcox A.J. Identification of DNA methylation changes in newborns related to maternal smoking during pregnancy. Environ. Health Perspect. 2014; 122(10): 1147-53.
  41. Meyer K.F., Verkaik-Schäkel R.N., Timens W, KobzikL., Plösch T., Hylkema M.N. The fetal programming effect of prenatal smoking on Igflr and Igfl methylation is organ- and sex-specific. Epigenetics. 2017; 12(12): 1076-91.
  42. Chatterton Z., Hartley B.J., Seok M.H., Mendelev N., Chen S., Milekic M. et al. In utero exposure to maternal smoking is associated with DNA methylation alterations and reduced neuronal content in the developing fetal brain. Epigenetics Chromatin. 2017; 10: 4.
  43. Fa S., Larsen T.V., Bilde K., Daugaard T.F., Ernst E.H., Olesen R.H. et al. Assessment of global DNA methylation in the first trimester fetal tissues exposed to maternal cigarette smoking. Clin. Epigenetics. 2016; 8: 128.
  44. Fa S., Larsen T.V., Bilde K., Daugaard T.F., Emst E.H., Lykke-Hartmann К. et al. Changes in first trimester fetal CYP1A1 and AHRR DNA methylation and mRNA expression in response to exposure to maternal cigarette smoking. Environ. Toxicol. Pharmacol. 2017; 57: 19-27.
  45. Peters I., Vaske B., Albrecht K., Kuczyk M.A., Jonas If., Serth J. Adiposity and age are statistically related to enhanced RASSF1A tumor suppressor gene promoter methylation in normal autopsy kidney tissue. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 2007; 16(12): 2526-32.
  46. Satta R., Maloku E., Zhubi A., Pibiri E, Hajos M., Costa E., Guidotti A. Nicotine decreases DNA methyltransferase 1 expression and glutamic acid decarboxylase 67 promoter methylation in GABAergic interneurons. Proc. Natl. Acad. Sei. USA 2008; 105(42): 16356-61.
  47. Mann B.S., Johnson J.R., Cohen M.H., Justice R., Pazdur R. FDA approval summary: vorinostat for treatment of advanced primary cutaneous T-cell lymphoma. Oncologist. 2007; 12(10): 1247-52.
  48. Mikaelsson M.A., Miller C.A. The path to epigenetic treatment of memory disorders. Neurobiol. Learn. Mem. 2011; 96(1): 13-8.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах