Эффективность дозревания ооцитов, полученных в ходе овариэктомии у онкологических пациенток


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель. Изучение дозревания в условиях in vitro ооцитов, полученных в ходе овариэктомии у пациенток с онкологией. Материалы и методы. В исследование были включены 24 пациентки в возрасте от 16 до 42 лет, проходившие лечение по поводу онкологических заболеваний. Во время операции производилась частичная или полная овариэктомия, из мозгового слоя яичника после овариэктомии извлекали ооцит-кумулюсные комплексы, проводили дозревание полученных клеток, оплодотворение ооцитов и культивирование эмбрионов. Оценивали частоту дозревания ооцитов, оплодотворения, дробления и формирования бластоцист. Результаты. Было получено 287 ооцит-кумулюсных комплексов. Частота дозревания ооцитов составила 41,4%, оплодотворения - 20,0%, дробления - 100%, формирования бластоцист - 27,3%. Генетический анализ трофэктодермы бластоцист показал наличие в них эуплоидного хромосомного набора. Заключение. Несмотря на то, что частота дозревания ооцитов, полученных из мозгового слоя яичника, в условиях in vitro мала, метод является перспективным для сохранения репродуктивного потенциала у пациенток с онкологией.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Евгения Владимировна Ковальская

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: kovalskaya.evgeniya@gmail.com
эмбриолог 1-го гинекологического отделения

Анастасия Олеговна Кириллова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: stasia.kozyreva@gmail.com
к.б.н., эмбриолог 1-го гинекологического отделения

Екатерина Святославовна Буняева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: es_bunyaeva@mail.ru
аспирант 1-го гинекологического отделения

Григорий Николаевич Хабас

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: khabas@list.ru
к.м.н., руководитель отделения инновационной онкологии и гинекологии

Наиль Садекович Камалетдинов

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: sunsh86@mail.ru
эмбриолог 1-го гинекологического отделения

Татьяна Алексеевна Назаренко

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: t.nazarenko@mail.ru
д.м.н., профессор, директор института репродуктивной медицины

Айдар Назимович Абубакиров

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: nondoc555@yahoo.com
к.м.н., руководитель 1-го гинекологического отделения

Список литературы

  1. Donnez J., Dolmans M.M. Ovarian cortex transplantation: 60 reported live births bring the success and worldwide expansion of the technique towards routine clinical practice. J. Assist. Reprod. Genet. 2015; 32: 1167-70
  2. Abir R., Feinmesser M., Yaniv I., Fisch B., Cohen I.J., Ben-Haroush A., Meirow D., Felz C., Avigad S. Occasional involvement of the ovary in Ewing sarcoma. Hum. Reprod. 2010; 25: 1708-12.
  3. Abir R., Aviram A., Feinmesser M., Stein J., Yaniv I., Parnes D., Ben-Haroush A., Meirow D., Rabizadeh E., Fisch B. Ovarian minimal residual disease in chronic myeloid leukaemia. Reprod. Biomed. Online. 2014; 28: 255-60.
  4. Dolmans M.M., Luyckx V., Donnez J., Andersen C.Y., Greve T. Risk of transferring malignant cells with transplanted frozen-thawed ovarian tissue. Fertil. Steril. 2013; 99: 1514-22.
  5. Park C.W., Lee S.H., Yang K.M., Lee I.H., Lim K.T., Lee K.H., Kim T.J. Cryopreservation of in vitro matured oocytes after ex vivo oocyte retrieval from gynecologic cancer patients undergoing radical surgery. Clin. Exp. Reprod. Med. 2016; 43(2): 119-25.
  6. Kedem A., Yerushalmi G.M., Brengauz M., Raanani H., Orvieto R., Hourvitz A., Meirow D. Outcome of immature oocytes collection of 119 cancer patients during ovarian tissue harvesting for fertility preservation. J. Assist. Reprod. Genet. 2018; 35(5): 851-6.
  7. Fasano G., Dechene J., Antonacci R., Biramane J., Vannin A.S., Van Langendonckt A., Devreker F., Demeestere I. Outcomes of immature oocytes collected from ovarian tissue for cryopreservation in adult and prepubertal patients. Reprod. Biomed. Online. 2017; 34(6): 575-82.
  8. Shirasawa H., Terada Y. In vitro maturation of human immature oocytes for fertility preservation and research material. Reprod. Med. Biol. 2017; 16(3): 258-67.
  9. Prasath E.B., Chan M.L., Wong W.H., Lim C.J., Tharmalingam M.D., Hendricks M., Loh S.F., Chia Y.N. First pregnancy and live birth resulting from cryopreserved embryos obtained from in vitro matured oocytes after oophorectomy in an ovarian cancer patient. Hum. Reprod. 2014; 29: 276-8.
  10. Uzelac P.S., Delaney A.A., Christensen G.L., Bohler H.C., Nakajima S.T. Live birth following in vitro maturation of oocytes retrieved from extracorporeal ovarian tissue aspiration and embryo cryopreservation for 5 years. Fertil. Steril. 2015; 104: 1258-60.
  11. Segers I., Mateizel I., Van Moer E., Smitz J., Tournaye H., Verheyen G., De Vos M. In vitro maturation (IVM) of oocytes recovered from ovarectomy specimens in the laboratory: a promising ‘ex vivo’ method of oocyte cryopreservation resulting in the first report of an ongoing pregnancy in Europe. J. Assist. Reprod. Genet. 2015; 32: 1221-31.
  12. Sauerbrun-Cutler M.T., Vega M., Keltz M., McGovern P.G. In vitro maturation and its role in clinical assisted reproductive technology. Obstet. Gynecol. Surv. 2015; 70: 45-57.
  13. Revel A., Koler M., Simon A., Lewin A., Laufer N., Safran A. Oocyte collection during cryopreservation of the ovarian cortex. Fertil. Steril. 2003;79(5):1237-9.
  14. Friedler S., Koc O., Gidoni Y., Raziel A., Ron-El R. Ovarian response to stimulation for fertility preservation in women with malignant disease: a systematic review and meta-analysis. Fertil. Steril. 2012; 97(1): 125-33.
  15. Sanchez F., Smitz J. Molecular control of oogenesis. Biochim. Biophys. Acta. 2012; 1822(12): 1896-912.
  16. Zhang Y., Wang H., Liu W., Yang Y., Wang X., Zhang Z., Guo Q., Wang C., Xia G. Natriuretic peptides improve the developmental competence of in vitro cultured porcine oocytes. Reprod. Biol. Endocrinol. 2017; 15(1): 41.
  17. Franciosi F., Coticchio G., Lodde V., Tessaro I., Modina S.C., Fadini R., Dal Canto M., Renzini M.M., Albertini D.F., Luciano A.M. Natriuretic peptide precursor C. delays meiotic resumption and sustains gap junction-mediated communication in bovine cumulus-enclosed oocytes. Biol. Reprod. 2014; 91(3): 61.
  18. Sanchez F., Lolicato F., Romero S., De Vos M., Van Ranst H., Verheyen G., Anckaert E., Smitz J.E.J. An improved IVM method for cumulus-oocyte complexes from small follicles in polycystic ovary syndrome patients enhances oocyte competence and embryo yield. Hum. Reprod. 2017; 32(10): 2056-68.
  19. Albuz F.K., Sasseville M., Lane M., Armstrong D.T., Thompson J.G., Gilchrist R.B. Simulated physiological oocyte maturation (SPOM): a novel in vitro maturation system that substantially improves embryo yield and pregnancy outcomes. Hum. Reprod. 2010; 25(12): 2999-3011.
  20. Lierman S., Tilleman K., Braeckmans K., Peynshaert K., Weyers S., T’Sjoen G., De Sutter P. Fertility preservation for trans men: frozen-thawed in vitro matured oocytes collected at the time of ovarian tissue processing exhibit normal meiotic spindles. J. Assist. Reprod. Genet. 2017; 34(11): 1449-56.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2019