ОСОБЕННОСТИ ПРОФИЛЯ СЕКРЕТИРУЕМЫХ БЕЛКОВ КЛЕТКАМИ ИЗ ЭНДОМЕТРИОИДНЫХ ОЧАГОВ И ЭУТОПИЧЕСКОГО ЭНДОМЕТРИЯ ЖЕНЩИН С НАРУЖНЫМ ГЕНИТАЛЬНЫМ ЭНДОМЕТРИОЗОМ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель. Провести сравнительную оценку профиля секретируемых в культуре in vitro белков клетками из эндометриоидных очагов и эутопического эндометрия женщин с наружным генитальным эндометриозом. Материал и методы. Клетки, выделенные из образцов эндометриоидных гетеротопий и эутопического эндометрия 21 женщины с наружным генитальным эндометриозом, и клетки эндометрия 8 женщин без эндометриоза культивировали in vitro. Поверхностный фенотип клеток, взятых после первого пассажа, определяли с помощью проточного цитофлуориметра и стандартного набора моноклональных антител. В кондиционированной среде культур во время 2-го пассажа определяли концентрацию различных растворимых аналитов с использованием мультиплексного анализа. Результаты. Клетки из эндометриоидных очагов и эутопического эндометрия, культивированные до 2 пассажа, прилипали к пластику, имели фибробластоподобную морфологию, фенотипически соответствовали минимальным критериям, принятым для идентификации мезенхимальных стромальных клеток. В супернатантах культур выявлен различный уровень продукции исследованных белков клетками из очагов эндометриоза и эутопического эндометрия. Заключение. Продукция in vitro широкого спектра белков, характеризующих функциональное состояние стромальных клеток, выделенных из эктопических очагов эндометриоза, указывает на состояние повышенной активации клеток в эндометриоидных очагах, что является важным патогенетическим фактором развития эндометриоза.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Станислав Владиславович Павлович

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России; ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)» Минздрава России

Email: s_pavlovich@oparina4.ru
к.м.н., доцент, ученый секретарь 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Любовь Валентиновна Кречетова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: l_krechetova@oparina4.ru
к.м.н., заведующий лабораторией клинической иммунологии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Валентина Валентиновна Вторушина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: v_vtorushina@oparina4.ru
к.м.н., врач клинической лабораторной диагностики лаборатории клинической иммунологии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Людмила Викторовна Ванько

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: LVanko@oparina4.ru
д.м.н., профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории клинической иммунологии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Марина Николаевна Юшина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

младший научный сотрудник лаборатории молекулярной патофизиологии отдела системной биологии в репродукции 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Анастасия Михайловна Савилова

ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова Минздрава России; ФГБОУ «ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Email: lsavilova@gmail.com
к.б.н., заведующая информационно-аналитическим центром по биомедицине НИИ трансляционной медицины 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1

Зограб Николаевич Макиян

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: z_makiyan@oparina4.ru
д.м.н., ведущий научный сотрудник гинекологического отделения отдела оперативной гинекологии и общей хирургии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Екатерина Львовна Яроцкая

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: e_yarotskaya@oparina4.ru
доцент, д.м.н., заведующая отделом международного сотрудничества 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Елена Григорьевна Хилькевич

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: e_khilkevich@oparina4.ru
д.м.н., советник директора 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Владимир Дмитриевич Чупрынин

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: v_chuprynin@oparina4.ru
к.м.н., заведующий отделом оперативной гинекологии и общей хирургии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Геннадий Тихонович Сухих

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России; ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)» Минздрава России

Email: e_khilkevich@oparina4.ru
академик РАН, д.м.н., профессор, директор 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Список литературы

  1. Ahn S.H., Monsanto S.P., Miller C., Singh S.S., Thomas R., Tayade C. Pathophysiology and Immune Dysfunction in Endometriosis. Biomed. Res. Int. 2015; 2015: 795976.
  2. Miller J.E., Ahn S.H., Monsanto S.P., Khalaj K., Koti M., Tayade C. Implications of immune dysfunction on endometriosis associated infertility. Oncotarget. 2017; 8(4): 7138-47.
  3. Kobayashi H, Higashiura Y., Shigetomi H., Kajihara H. Pathogenesis of endometriosis: the role of initial infection and subsequent sterile inflammation (Review). Mol. Med. Rep. 2014; 9(1): 9-15.
  4. Krahckova M., Vetvicka V. Immunological aspects of endometriosis: a review. Ann. Transl. Med. 2015; 3(11): 153.
  5. Jeung I., Cheon K, Kim M.R. Decreased cytotoxicity of peripheral and peritoneal natural killer cell in endometriosis. Biomed. Res. Int. 2016; 2016: 2916070.
  6. Caserta D., Mallozzi M., Pulcinelli F.M., Mossa B., Moscarini M. Endometriosis allergic or autoimmune disease: pathogenetic aspects-- a case control study. Clin. Exp. Obstet. Gynecol. 2016; 43(3): 354-7.
  7. Thiruchelvam U., Wingfield M., O’Farrelly C. Natural killer cells: key players in endometriosis. Am. J. Reprod. Immunol. 2015; 74(4): 291-301.
  8. Eisenberg V.H., Zolti M., Soriano D. Is there an association between autoimmunity and endometriosis? Autoimmun. Rev. 2012; 11(11): 806-14.
  9. Agic A., Xu H., Finas D., Banz C., Diedrich K., Hornung D. Is endometriosis associated with systemic subclinical inflammation? Gynecol. Obstet. Invest. 2006; 62(3): 139-47.
  10. Sapkota Y., Low S.K., Attia J., Gordon S.D., Henders A.K., Holliday E.G. et al. Association between endometriosis and the interleukin 1A (IL1A) locus. Hum. Reprod. 2015; 30(1): 239-48.
  11. Sheveleva T., Bejenar V., Komlichenko E., Dedul A., Malushko A. Innovative approach in assessing the role of neurogenesis, angiogenesis, and lymphangiogenesis in the pathogenesis of external genital endometriosis. Gynecol. Endocrinol. 2016; 32(Suppl. 2): 75-9.
  12. JiangL., Yan Y., Liu Z., Wang Y. Inflammation and endometriosis. Front. Biosci. (Landmark Ed). 2016; 21: 941-8.
  13. Barcz E., Milewski L., Dziunycz P., Kaminski P., Ploski R., Malejczyk J. Peritoneal cytokines and adhesion formation in endometriosis: an inverse association with vascular endothelial growth factor concentration. Fertil. Steril. 2012; 97(6): 1380-6.
  14. Соколов Д.И., Кондратьева П.Г., Ярмолинская М.И., Крамарева Н.Л., Селютин А.В., Рулев В.В., Ниаури Д.А., Сельков С.А. Содержание хемокинов и цитокинов в перитонеальной жидкости больных наружным генитальным эндометриозом различной степени тяжести. Медицинская иммунология. 2007; 9(1): 85-90.
  15. Sukhikh G.T., Sotnikova N.Y., Antsiferova Y.S., Posiseeva L.V., Veryasov V.N., Van’ko L.V. Cytokine production by immunocompetent cells of peritoneal fluid in women with external genital endometriosis. Bull. Exp. Biol. Med. 2004; 137(6): 568-71.
  16. Podgaec S., Rizzo L.V., Fernandes L.F., Baracat E.C., Abrao M.S. CD4(+) CD25(high) Foxp3(+) cells increased in the peritoneal fluid of patients with endometriosis. Am. J. Reprod Immunol. 2012; 68(4): 301-8.
  17. Barcz E., Milewski L., Dziunycz P., Kaminski P., Ploski R., Malejczyk J. Peritoneal cytokines and adhesion formation in endometriosis: an inverse association with vascular endothelial growth factor concentration. Fertil. Steril. 2012; 97(6): 1380-6.
  18. Yuhki M., Kajitani T., Mizuno T., Aoki Y., Maruyama T. Establishment of an immortalized human endometrial stromal cell line with functional responses to ovarian stimuli. Reprod. Biol. Endocrinol. 2011; 9: 104.
  19. Chan R.W, Mak A.S., Yeung W.S., Lee K.F., Cheung A.N., Ngan H.Y., Wong A.S. Human female reproductive tract epithelial cell culture. Methods Mol. Biol. 2013; 945: 347-63.
  20. Delbandi A.A., Mahmoudi M., Shervin A., Akbari E., Jeddi-Tehrani M., Sankian M. et al. Eutopic and ectopic stromal cells from patients with endometriosis exhibit differential invasive, adhesive, and proliferative behavior. Fertil. Steril. 2013; 100(3): 761-9.
  21. Huang F., Cao J., Liu Q., Zou Y., Li H., Yin T. MAPK/ERK signal pathway involved expression of COX-2 and VEGF by IL-1 в induced in human endometriosis stromal cells in vitro. Int. J. Clin. Exp. Pathol. 2013; 6(10): 2129-36.
  22. Dominici M., Le B.K., Mueller I., Slaper-Cortenbach I., Marini F., Krause D. et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchimal stromal cells. The international society for cellular therapy position statement. Cytotherapy. 2006; 8: 315-7.
  23. Donnenberg A.D., Meyer E.M., Rubin J.P., Donnenberg V.S. The cell-surface proteome of cultured adipose stromal cells. Cytometry A. 2015; 87(7): 665-74.
  24. Uder C., Bruckner S., Winkler S., Tautenhahn H.M. Christ B. Mammalian MSC from selected species: Features and applications. Cytometry A. 2018; 93(1): 32-49.
  25. Bouquet De Joliniere J., Ayoubi J.M., Gianaroli L., Dubuisson J.B., Gogusev J., Feki A. Endometriosis: a new cellular and molecular genetic approach for understanding the pathogenesis and evolutivity. Front. Surg. 2014; 1: 16.
  26. Borrelli G.M., Abrao M.S., Mechsner S. Can chemokines be used as biomarkers for endometriosis? A systematic review. Hum. Reprod. 2014; 29(2): 253-66.
  27. Sikora J., Mielczarek-Palacz A., Kondera-Anasz Z., Strzelczyk J. Peripheral blood proinflammatory response in women during menstrual cycle and endometriosis. Cytokine. 2015; 76(2): 117-22.
  28. Maluhan A.M., Drugan T., Ciortea R., Mocan-Hognogi R.F., Bucuri C., Rada M.P., Mihu D. Serum anti-inflammatory cytokines for the evaluation of inflammatory status in endometriosis. J. Res. Med. Sci. 2015; 20(7): 668-74.
  29. Malutan A.M., Drugan T., Costin N., Ciortea R., Bucuri C., Rada M.P., Mihu D. Pro-inflammatory cytokines for evaluation of inflammatory status in endometriosis. Cent. Eur. J. Immunol. 2015; 40(1): 96-102.
  30. Barcz E., Milewski L., Dziunycz P., Kaminski P., Ploski R., Malejczyk J. Peritoneal cytokines and adhesion formation in endometriosis: an inverse association with vascular endothelial growth factor concentration. Fertil. Steril. 2012; 97(6): 1380-6.
  31. Bersinger N.A., Dechaud H., McKinnon B., Mueller M.D. Analysis of cytokines in the peritoneal fluid of endometriosis patients as a function of the menstrual cycle stage using the Bio-Plex® platform. Arch. Physiol. Biochem. 2012; 118(4): 210-8.
  32. Hirata T., Osuga Y., Takamura M., Saito A., Hasegawa A., Koga K. et al. Interleukin-17A increases the secretion of interleukin-8 and the expression of cyclooxygenase 2 in endometriosis. Fertil. Steril. 2011; 96(1): 113-7.
  33. Urata Y., Koga K., Hirota Y., Akiyama I., Izumi G., Takamura M. et alIL-1p increases expression of tryptophan 2,3-dioxygenase and stimulates tryptophan catabolism in endometrioma stromal cells. Am. J. Reprod. Immunol. 2014; 72(5): 496-503.
  34. Ahn S.H., Edwards A.K., Singh S.S., Young S.L., Lessey B.A., Tayade C. IL-17A Contributes to the pathogenesis of endometriosis by triggering proinflammatory cytokines and angiogenic growth factors. J. Immunol. 2015; 195(6): 2591-600.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2019

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах