МИКРОБИОМ ВЛАГАЛИЩА У БЕРЕМЕННЫХ С ПРЕЖДЕВРЕМЕННЫМ РАЗРЫВОМ ПЛОДНЫХ ОБОЛОЧЕК В СРОКЕ ОТ 22 ДО 28 НЕДЕЛЬ БЕРЕМЕННОСТИ


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель. Изучение микробиома влагалища у беременных с преждевременным разрывом плодных оболочек (ПРПО) при недоношенной беременности в сроки до 28 недель беременности с помощью методики метагеномного секвенирования. Материалы и методы. Проведено исследование двух групп, которое включало оценку микробиома влагалища у 55 беременных женщин. В I группу вошли женщины с ПРПО в сроке до 28 недель беременности, во II группу включены женщины с физиологическим течением беременности в аналогичные сроки. Результаты. Сравнение относительной представленности микроорганизмов в микробиоме влагалища в группах позволило выявить статистически значимые различия по 13 родам микроорганизмов: Lactobacillus, Pediococcus, Prevotella, Prevotella 6, Peptostreptococcus, Peptoniphilus, Anaerococcus, Fusobacterium, Parvimonas, Lawsonella, Sutterella, Mobiluncus, Thermus. При анализе частот встречаемости были найдены статистически значимые различия по родам микроорганизмов Pediococcus, Prevotella, Prevotella 6, Anaerococcus, Peptoniphilus, Parvimonas, Lawsonella, Sutterella, Mobiluncus, Thermus. Заключение. Наличие в микробиоме влагалища беременных с ПРПО бактерий рода Prevotella (в особенности Prevotella 6), Anaerococcus, Peptoniphilus, Parvimonas, Lawsonella, Sutterella, Mobiluncus, Thermus, а также низкая относительная представленность бактерий рода Lactobacillus и Pediococcus, вероятно, имеют значение при беременности, связанной с разрывом плодных оболочек в сроке до 28 недель беременности, что требует дальнейших исследований в данной области.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Наталья Борисовна КУЗНЕЦОВА

ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России; ООО «Клиника профессора Буштыревой»

Email: lauranb@inbox.ru
д.м.н., профессор Центра симуляционного обучения, ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России; главный врач, ООО «Клиника профессора Буштыревой» Ростов-на-Дону, Россия

Ирина Олеговна БУШТЫРЕВА

ООО «Клиника профессора Буштыревой»

Email: kio4@mail.ru
д.м.н., профессор, директор Ростов-на-Дону, Россия

Виолетта Сергеевна ДЫБОВА

ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России; ГБУ РО «Перинатальный центр»

Email: viola-kovaleva@mail.ru
аспирант, ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России; врач акушер-гинеколог, ГБУ РО «Перинатальный центр» Ростов-на-Дону, Россия

Виктория Владиславовна БАРИНОВА

ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России; ООО «Клиника профессора Буштыревой»

Email: victoria-barinova@yandex.ru
к.м.н., ассистент кафедры акушерства и гинекологии №1, ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России; заведующая акушерским отделением ООО «Клиника профессора Буштыревой» Ростов-на-Дону, Россия

Дмитрий Евгеньевич ПОЛЕВ

Медико-генетический центр «Сербалаб»

Email: vdudurich@cerbalab.ru
к.б.н. по специальности «Генетика», главный биолог Санкт-Петербург, Россия

Михаил Владимирович АСЕЕВ

Медико-генетический центр «Сербалаб»

Email: vdudurich@cerbalab.ru
генеральный директор, старший научный сотрудник, специалист по лабораторной генетике Санкт-Петербург, Россия

Василиса Валерьевна ДУДУРИЧ

Медико-генетический центр «Сербалаб»

Email: vdudurich@cerbalab.ru
биолог-генетик, директор по развитию Санкт-Петербург, Россия

Список литературы

  1. Proctor L., Lo Tempio J., Marquitz A., Daschner P., Xi D., Flores R. et al. NIH Human Microbiome Portfolio Analysis Team. A review of 10 years of human microbiome research activities at the US National Institutes of Health, Fiscal Years 2007-2016. Microbiome. 2019; 7(1): 31. https://dx.doi.org/10.1186/ s40168-019-0620-y.
  2. Paramel Jayaprakash T., Wagner E.C., van Schalkwyk J., Albert A.Y., Hill J.E., Money D.M. ; PPROM Study Group. High diversity and variability in the vaginal microbiome in women following preterm premature rupture of membranes (PPROM): a prospective cohort study. PLoS One. 2016; 11(11): e0166794. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0166794.
  3. Petricevic L., Domig K.J., Nierscher F.J., Sandhofer M.J., Fidesser M., Krondorfer I. et al. Characterisation of the vaginal Lactobacillus microbiota associated with preterm delivery. Sci. Rep. 2014; 4: 5136. https://dx.doi.org/10.1038/ srep05136.
  4. Romero R., Hassan S.S., Gajer P., Tarca A.L., Fadrosh D.W., Bieda J. et al. The vaginal microbiota of pregnant women who subsequently have spontaneous preterm labor and delivery and those with a normal delivery at term. Microbiome. 2014; 2: 18. https://dx.doi.org/10.1186/2049-2618-2-18.
  5. DiGiulio D.B., Callahan B.J., McMurdie P.J., Costello E.K., Lyell D.J., Robaczewska A. et al. Temporal and spatial variation of the human microbiota during pregnancy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015; 112(35): 11060-5. https:// dx.doi.org/10.1073/pnas.1502875112.
  6. R Core Team. R: a language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing. Vienna, Austria; 2018. Available at: https://www.gbif.org/ru/tool/81287/r-a-language-and-environment-for-statistical-computing
  7. Callahan B.J., McMurdie P.J., Rosen M.J., Han A.W., Johnson A.J., Holmes S.P. DADA2: High-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat. Methods. 2016; 13(7): 581-3. https://dx.doi.org/10.1038/nmeth.3869.
  8. Quast C., Pruesse E., Yilmaz P., Gerken J., Schweer T., Yarza P. et al. The SILVA ribosomal RNA gene database project: improved data processing and web-based tools. Nucleic Acids Res. 2013; 41(Database issue): D590-6. https://dx.doi. org/10.1093/nar/gks1219.
  9. Ходжаева З.С., Припутневич Т.В., Муравьева В.В., Гусейнова Г.Э., Горина К.А., Мишина Н.Д. Оценка состава и стабильности микробиоты влагалища у беременных в процессе динамического наблюдения. Акушерство и гинекология. 2019; 7: 30-8.
  10. Ragaliauskas T., Pleckaityté M., Jankunec M., Labanauskas L., Baranauskiene L., Valincius G. Inerolysin and vaginolysin, the cytolysins implicated in vaginal dysbiosis, differently impair molecular integrity of phospholipid membranes. Sci. Rep. 2019; 9(1): 10606. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-019-47043-5.
  11. Mehta R., Arya R., Goyal K., Singh M., Sharma A.K. Bio-preservative and therapeutic potential of pediocin: recent trends and future perspectives. Recent Pat. Biotechnol. 2013; 7(3): 172-8. https://dx.doi.org/10.2174/187220831130 76660008.
  12. Kaur B., Garg N., Sachdev A., Kumar B. Effect of the oral intake of probiotic Pediococcus acidilactici BA28 on Helicobacter pylori causing peptic ulcer in C57BL/6 mice models. Appl. Bochem. Biotechnol. 2014; 172(2): 973-83. https://dx.doi.org/10.1007/s12010-013-0585-4.
  13. Ходжаева З.С., Гусейнова Г.Э., Муравьева В.В., Донников А.Е., Мишина Н.Д., Припутневич Т.В. Характеристика микробиоты влагалища у беременных с досрочным преждевременным разрывом плодных оболочек. Акушерство и гинекология. 2019; 12: 66-74.
  14. Henderson G., Yilmaz P., Kumar S., Forster R.J., Kelly W.J., Leahy S.C. et al. Improved taxonomic assignment of rumen bacterial 16S rRNA sequences using a revised SILVA taxonomic framework. PeerJ. 2019; 7: e6496. https://dx.doi. org/ 10.7717/peerj.6496.
  15. Doyle R.M., Harris K., Kamiza S., Harjunmaa U., Ashorn U., Nkhoma M. et al. Bacterial communities found in placental tissues are associated with severe chorioamnionitis and adverse birth outcomes. PLoS One. 2017; 12(7): e0180167. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0180167.
  16. Doyle R.M., Alber D.G., Jones H.E., Harris K., Fitzgerald F., Peebles D. et al. Term and preterm labour are associated with distinct microbial community structures in placental membranes which are independent of mode of delivery. Placenta. 2014; 35(12): 1099-101. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2014.10.007.
  17. Wang X., Buhimschi C.S., Temoin S., Bhandari V., Han Y.W., Buhimschi I.A. Comparative microbial analysis of paired amniotic fluid and cord blood from pregnancies complicated by preterm birth and early-onset neonatal sep-sis. PLoS One. 2013; 8(2): e56131. https://dx.doi.org/10.1371/journal. pone.0056131.
  18. Gonzales-Marin C., Spratt D.A., Allaker R.P. Maternal oral origin of Fusobacterium nucleatum in adverse pregnancy outcomes as determined using the 16S-23S rRNA gene intergenic transcribed spacer region. J. Med. Microbiol. 2013; 62(Pt. 1): 133-44. https://dx.doi.o^/10.1099/jmm.0.049452-0.
  19. Vander Haar E.L., So J., Gyamfi-Bannerman C., Han Y.W. Fusobacterium nucleatum and adverse pregnancy outcomes: epidemiological and mechanistic evidence. Anaerobe. 2018; 50: 55-9. https://dx.doi.org/10.1016/j. anaerobe.2018.01.008.
  20. Romero R., Hassan S.S., Gajer P., Tarca A.L, Fadrosh D.W., Nikita L. et al. The composition and stability of the vaginal microbiota of normal pregnant women is different from that of non-pregnant women. Microbiome. 2014; 2(1): 4. https:// dx.doi.org/10.1186/2049-2618-2-4.
  21. Carlstein C., Soes L.M., Christensen J.J. Aerococcus christensenii as part of severe polymicrobial chorioamnionitis in a pregnant woman. Open Microbiol. J. 2016; 10: 27-31. https://dx.doi.org/10.2174/1874285801610010027.
  22. Nicholson A.C., Bell M., Humrighouse B.W., McQuiston J.R. Complete genome sequences for two strains of a novel fastidious, partially acid-fast, grampositive Corynebacterineae bacterium, derived from human clinical samples. Genome Announc. 2015; 3(6): e01462-15. https://dx.doi.org/10.1128/ genomeA.01462-15.
  23. Bell M.E., Bernard K.A., Harrington S.M., Patel N.B., Tucker T.A., Metcalfe M.G. et al. Lawsonella clevelandensis gen. nov., sp. nov., a new member of the suborder Corynebacterineae isolated from human abscesses. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016; 66(8): 2929-35. https://dx.doi.org/10.1099 / ijsem.0.001122.
  24. Hiippala K., Kainulainen V., Kalliomäki M., Arkkila P., Satokari R. Mucosal prevalence and interactions with the epithelium indicate commensalism of Sutterella spp. Front. Microbiol. 2016; 7: 1706. https://dx.doi.org/10.3389/ fmicb.2016.01706.
  25. Balle C., Lennard K., Dabee S., Barnabas S.L., Jaumdally S.Z., Gasper M.A. et al. Endocervical and vaginal microbiota in South African adolescents with asymptomatic Chlamydia trachomatis infection. Sci. Rep. 2018; 8(1): 11109. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-018-29320-x.
  26. Подгорная А.В., Maхмуmходжаев А.Ш., Михеенко Г.А. Микрофлора влагалища при бактериальном вагинозе у беременных женщин. Современные проблемы науки и образования. 2015; 6; 212.
  27. Amabebe E., Chapman D.R., Stern V.L., Stafford G., Anumba D.O.C. Midgestational changes in cervicovaginal fluid cytokine levels in asymptomatic pregnant women are predictive markers of inflammation-associated spontaneous preterm birth. J. Reprod. Immunol. 2018; 126: 1-10. https://dx.doi. org/10.1016/j.jri.2018.01.001.
  28. Zhu L., Luo F., Hu W., Han Y., Wang Y., Zheng H. et al. Bacterial communities in the womb during healthy pregnancy. Front. Microbiol. 2018; 9: 2163. https:// dx.doi.org/10.3389/fmicb.2018.02163.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2021

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах