Экспериментальная методика переноса генетического материала на стадии пронуклеусов


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность: Увеличение доли женщин позднего репродуктивного возраста, имеющих анеуплоидные ооциты, заставляет разрабатывать новые направления, способные улучшить их качество. Одни из них основаны на переносе генетического материала из клетки реципиента в клетку донора. В статье представлены предварительные результаты экспериментального исследования, направленного на отработку методики переноса ядра из клетки реципиента в клетку донора. Цель: Определение технической возможности переноса ядер на стадии поздних пронуклеусов. Материалы и методы: Методику переноса ядер отрабатывали на аномально оплодотворившихся ооцитах (3PN), не пригодных для дальнейшего использования в программе ВРТ и подлежащих утилизации. Было использовано 28 триплоидных зигот. Проведено 14 процедур переноса пронуклеусов. Результаты: В результате проведения процедуры переноса успешное слияние перенесенных ядер с энуклеированным цитопластом имело место в 57%, дегенерация наступила в 43% случаев. У всех 8 успешно реконструированных зигот наблюдалось дробление с различной степенью фрагментации (10-70%), однако процент компактизации и бластуляции был снижен, в результате нами были получены один эмбрион на стадии морулы и один эмбрион на стадии бластоцисты. Критическим моментом в осуществлении процесса извлечения ядра является качество цитоплазмы. Определены необходимое материальное обеспечение, растворы и их концентрации, эффективность вируса HVJ-E в обеспечении слияния мембран клеток оценена как вполне приемлемая. Заключение: Представленный эксперимент показал возможность проведения процедуры переноса пронуклесов из одной клетки в другую. Необходима дополнительная отработка методики переноса генетического материала с возможной модификацией; представляется целесообразной отработка методики на других стадиях развития (например, в виде веретена деления на стадии метафазы II).

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Геннадий Тихонович Сухих

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: g_sukhikh@oparina4.ru
академик РАН, д.м.н., профессор, директор

Наиль Садекович Камалетдинов

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: sunsh86@mail.ru
эмбриолог 1-го гинекологического отделения

Татьяна Алексеевна Назаренко

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: t_nazarenko@oparina4.ru
д.м.н., профессор, директор института репродуктивной медицины

Яна Ованнесовна Мартиросян

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: marti-yana@yandex.ru
н.с. НОЦ ВРТ с клиническим отделением им. Ф. Паулсена

Список литературы

  1. Sunderam S., Kissin D.M., Zhang Y., Folger S.G., Boulet S.L., Warner L. et al. Assisted reproductive technology surveillance - United States, 2016. MMWR Surveill. Summ. 2019; 68(4): 1-23. https://dx.doi.org/10.15585/mmwr.ss6804a1.
  2. Hassold T., Hall H., Hunt P. The origin of human aneuploidy: where we have been, where we are going. Hum. Mol. Genet. 2007; 16(R2): R203-8. https://dx.doi.org/10.1093/hmg/ddm243.
  3. Kurahashi H., Tsutsumi M., Nishiyama S., Kogo H., Inagaki H., Ohye T. Molecular basis of maternal age-related increase in oocyte aneuploidy. Congenit. Anom. (Kyoto). 2012; 52(1): 8-15. https://dx.doi.org/10.1111/j.1741-4520.2011.00350.x.
  4. Schatten H., Sun Q., Prather R. The impact of mitochondrial function/dysfunction on IVF and new treatment possibilities for infertility. Reprod. Biol. Endocrinol. 2014; 12(1): 111. https://dx.doi.org/10.1186/1477-7827-12-111.
  5. de Bruin J.P., Dorland M., Spek E.R., Posthuma G., van Haaften M., Looman C.W., te Velde E.R. Ultrastructure of the resting ovarian follicle pool in healthy young women. Biol. Reprod. 2002; 66(4): 1151-60. https://dx.doi.org/10.1095/biolreprod66.4.1151.
  6. de Bruin J.P., Dorland M., Spek E.R., Posthuma G., van Haaften M., Looman C. W., te Velde E.R. Age-related changes in the ultrastructure of the resting follicle pool in human ovaries. Biol. Reprod. 2004; 70(2): 419-24. https://dx.doi.org/10.1095/biolreprod.103.015784.
  7. Janny Y., Menezo J.L. Maternal age effect on early human embryonic development and blastocyst formation. Mol. Reprod. Dev. 1996; 45(1): 31-7. https://dx.doi.org/10.1002/(SICI)1098-2795(199609)45:1<31::AID-MRD4>3.0.CO;2-T.
  8. Cohen J., Scott R., Alikani M., Schimmel T., Munne S., Levron J. et al. Ooplasmic transfer in mature human oocytes. Mol. Hum. Reprod. 1998; 4(3): 269-80. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/4.3.269.
  9. La Marca A., Capuzzo M., Imbrogno M.G., Donno V., Spedicato G.A., Sacchi S. et al. The complex relationship between female age and embryo euploidy. Minerva Obstet. Gynecol. 2021; 73(1): 103-10. https://dx.doi.org/10.23736/S2724-606X.20.04740-1.
  10. Stensen M.H., Tanbo T.G., Storeng R., Abyholm T., Fedorcsak P. Fragmentation of human cleavage-stage embryos is related to the progression through meiotic and mitotic cell cycles. Fertil. Steril. 2015; 103(2): 374-81.e4. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2014.10.031.
  11. Alikani M., Schimmel T., Willadsen S.M. Cytoplasmic fragmentation in activated eggs occurs in the cytokinetic phase of the cell cycle, in lieu of normal cytokinesis, and in response to cytoskeletal disorder. Mol. Hum. Reprod. 2005; 11(5): 335-44. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gah171.
  12. Bencomo E., Perez R., Arteaga M.F., Acosta E., Pena O., Lopez L. et al. Apoptosis of cultured granulosa-lutein cells is reduced by insulin-like growth factor I. and may correlate with embryo fragmentation and pregnancy rate. Fertil. Steril. 2006; 85(2): 474-80. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2005.08.014.
  13. Hardy K., Spanos S., Becker D., Iannelli P., Winston R.M., Stark J. From cell death to embryo arrest: mathematical models of human preimplantation embryo development. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001; 98(4): 1655-60. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.98.4.1655.
  14. Zhang J., Zhuang G., Zeng Y., Grifo J., Acosta C., Shu Y., Liu H. Pregnancy derived from human zygote pronuclear transfer in a patient who had arrested embryos after IVF. Reprod. Biomed. Online. 2016; 33(4): 529-33. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2016.07.008.
  15. Hyslop L.A., Blakeley P., Craven L., Richardson J., Fogarty N.M.E. et al. Towards clinical application of pronuclear transfer to prevent mitochondrial DNA disease. Nature. 2016; 534(7607):383-6. https://dx.doi.org/10.1038/nature18303.
  16. Costa-Borges N., Gonzales S., Santalo J., Ibanez E. Effect of the enucleation procedure on the reprogramming potential and developmental capacity of mouse cloned embryous treated with valproic acid. Reproduction. 2011; 141(6): 789-800. https://dx.doi.org/10.1530/REP-10-0455.
  17. Fulka J. Jr, First N.L., Loi P., Moor R.M. Cloning by somatic cell nuclear transfer. Bioessays. 1998; 20(10): 847-51. https://dx.doi.org/10.1002/(SICI)1521-1878(199810)20:10<847::AID-BIES10>3.0.m;2-F.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО «Бионика Медиа», 2022

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах