Особенности профиля органических кислот амниотической и цервико-вагинальной жидкостей беременных высокого риска преждевременных родов


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель: Изучить особенности метаболомного профиля амниотической и цервиковагинальной жидкостей и идентифицировать потенциальные маркеры-предикторы преждевременных родов у пациенток высокого риска. Материалы и методы: В проспективное исследование после получения информированного согласия были рекрутированы 46 беременных высокого риска преждевременных родов. Пациентки были разделены на 2 группы: 12 беременных с преждевременными родами (I группа) и 34 беременные со своевременными родами (IIгруппа). Для метаболомного анализа проводился забор амниотической жидкости путем трансабдоминального амниоцентеза. Анализ образцов осуществляли с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии на хроматографе Agilent 1260II. Результаты: В амниотической жидкости пациенток со спонтанными преждевременными родами ассоциированы панели органических кислот: «N-ацетиласпарагиновая кислота, 2-гидрокси-3-метилпентановая кислота, 4-гидроксифенилпировиноградная кислота» с чувствительностью 92% и специфичностью 38%, в цервиковагинальной жидкости: «N-ацетил тирозин, 2-оксоадипиновая кислота, 3-метилглютаконовая кислота, 4-гидроксифенилпировиноградная кислота» с чувствительностью 92% и специфичностью 82%. Заключение: Определение панели органических кислот как инвазивным методом - в амниотической жидкости, так и неинвазивным - в цервиковагинальной жидкости с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии позволяет прогнозировать вероятность развития спонтанных преждевременных родов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Ксения Алексеевна Горина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: k_gorina@oparina4.ru
м.н.с. 1 отделения акушерского патологии беременности

Зульфия Сагдуллаевна Ходжаева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: zkhodjaeva@mam.ru
д.м.н., профессор, заместитель директора по научной работе Института акушерства

Виталий Викторович Чаговец

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: vvchagovets@gmail.com
к.ф-м.н., с.н.с. лаборатории протеомики и метаболомики репродукции человека

Наталия Леонидовна Стародубцева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: n_starodubtseva@oparina4.com
к.б.н., заведующая лабораторией протеомики и метаболомики репродукции человека

Владимир Евгеньевич Франкевич

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: v_frankevich@oparina4.ru
к.ф-м.н., руководитель отдела системной биологии в репродукции

Татьяна Валерьевна Припутневич

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: priputl@gmail.com
д.м.н., заведующая отделом микробиологии, клинической фармакологии и эпидемиологии

Список литературы

  1. Vittar J., Papageorghiou A.T., Knight H.E., Gravett M.G., Iams J., Waller S.A. et al. The preterm birth syndrome: a prototype phenotypic classification. Am. J. Obstet. Gynecol. 2012; 206(2): 119-23. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2011.10.866.
  2. Committee on Practice Bulletins-Obstetrics; The American College of Obstetricians and Gynecologists. Practice bulletin no. 130: prediction and prevention of preterm birth. Obstet. Gynecol. 2012; 120(4): 964-73. https://dx.doi.org/10.1097/AGG.0b013e3182723b1b.
  3. Romero R., Espinoza J., Kusanovic J.P., Gotsch F., Hassan S., Erez O. et al. The preterm parturition syndrome. BJOG. 2006; 113(Suppl.): 17-42. https://dx.doi.org/10.1111/j.1471-0528.2006.01120.x.
  4. Azad R.K., Shulaev V. Metabolomics technology and bioinformatics for precision medicine. Brief Bioinform. 2019; 20(6): 1957-71. https://dx.doi.org/10.1093/bib/bbx170.
  5. Clish C.B. Metabolomics: an emerging but powerful tool for precision medicine. Mol. Case Stud. 2015; 1(1): a000588. https://dx.doi.org/10.1101/mcs.a000588.
  6. Beger R.D., Dunn W., Schmidt M.A., Gross S.S., Kirwan J.A., Cascante M. et al. Metabolomics enables precision medicine: A white paper, community perspective. Metabolomics. 2016; 12(9): 149. https://dx.doi.org/10.1007/s11306-016-1094-6.
  7. Beger R.D., Schmidt M.A., Kaddurah-Daouk R. Current concepts in pharmacometabolomics, biomarker discovery, and precision medicine. Metabolites. 2020; 10(4): 129. https://dx.doi.org/10.3390/metabo10040129.
  8. Menon R., Jones J., Gunst P.R., Kacerovsky M., Fortunato S.J., Saade G.R., Basraon S. Amniotic fluid metabolomic analysis in spontaneous preterm birth. Reprod. Sci. 2014; 21(6): 791-803. https://dx.doi.org/10.1177/1933719113518987.
  9. Romero R., Espinoza J., Kusanovic J.P., Gotsch F., Hassan S., Erez O. et al. The preterm parturition syndrome. BJOG. 2006; 113(Suppl. 3): 17-42. https://dx.doi.org/10.1111/j.1471-0528.2006.01120.x.
  10. Горина К.А., Ходжаева З.С., Белоусов Д.М., Баранов И.И., Гохберг Я.А., Пащенко А.А. Преждевременные роды: прошлые ограничения и новые возможности. Акушерство и гинекология. 2020; 1: 12-9. [Gorina K.A., Khodzhaeva Z.S., Belousov D.M., Baranov 1.1., Gokhberg Y.A., Pashchenko A.A. Premature birth: past restrictions and new opportunities. Obstetrics and Gynecology. 2020; 1: 12-19. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.1.12-119.
  11. Elshenawy S., Pinney S.E., Stuart T., Doulias P.-T., Zura G., Parry S. et al. The metabolomic signature of the placenta in spontaneous preterm birth. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(3): 1043. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21031043.
  12. Ходжаева З.С., Горина К.А., Муминова К.Т., Иванец Т.Ю., Кесслер Ю.В., Припутневич Т.В., Белоусов Д.М. Особенности состава амниотической жидкости у беременных высокого риска преждевременных родов. Акушерство и гинекология. 2020; 8: 82-7. [Khodzhaeva Z.S., Gorina K.A., Muminova K.T., Ivanets T.Y., Kessler Y.V., Priputnevich T.V., Belousov D.M. Amniotic fluid composition in pregnant women at high risk of preterm birth. Obstetrics and Gynecology. 2020; 8: 82-7. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.8.82-87.
  13. Mozurkewich E.L., Klemens C. Omega-3 fatty acids and pregnancy: current implications for practice. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2012; 24(2): 72-7. https://dx.doi.org/10.1097/GCO.0b013e328350fd34.
  14. Baraldi E., Giordano G., Stocchero M., Moschino L., Zaramella P., Tran M.R. et al. Untargeted metabolomic analysis of amniotic fluid in the prediction of preterm delivery and bronchopulmonary dysplasia. PLoS One. 2016; 11(10): e0164211. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0164211.
  15. Zegels G., Van Raemdonck G.A., Tjalma W.A., Van Ostade X.W. Use of cervicovaginal fluid for the identification of biomarkers for pathologies of the female genital tract. Proteome Sci. 2010; 8: 63. https://dx.doi.org/10.1186/1477-5956-8-63.
  16. Ghartey J., Bastek J.A., Brown A.G., Anglim L., Elovitz M.A. Women with preterm birth have a distinct cervicovaginal metabolome. Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 212(6): 776. e1-776. e12. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2015.03.052.
  17. Starodubtseva N.L., Kononikhin A.S., Bugrova A.E., Chagovets V., Indeykina M., Krokhina K.N., Nikitina I.V., Kostyukevich Y.I., Popov I.A., Larina I.M., Timofeeva L.A., Frankevich V.E., Ionov O.V., Degtyarev D.N., Nikolaev E.N., Sukhikh G.T. Investigation of urine proteome of preterm newborns with respiratory pathologies. J. Proteomics. 2016; 149: 31-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.jprot.2016.06.012.
  18. Surendran S. Upregulation of N-acetylaspartic acid alters inflammation, transcription and contractile associated protein levels in the stomach and smooth muscle contractility. Mol. Biol. Rep. 2009; 36(1): 201-6. https://dx.doi.org/10.1007/s11033-007-9167-2.
  19. Lee J.H., Park E., Jin H.J., Lee Y., Choi S.J., Lee G.W. et al. Antiinflammatory and anti-genotoxic activity of branched chain amino acids (BCAA) in lipopolysaccharide (LPS) stimulated RAW 264.7 macrophages. Food Sci. Biotechnol. 2017; 26(5): 1371-7. https://dx.doi.org/10.1007/s10068-017-0165-4.
  20. Surendran S., Bhatnagar M. Upregulation of N-acetylaspartic acid induces oxidative stress to contribute in disease pathophysiology. Int. J. Neurosci. 2011; 121(6): 305-9. https://dx.doi.org/10.3109/00207454.2011.558225.
  21. Grimolizzi F., Arranz L. Multiple faces of succinate beyond metabolism in blood. Haematologica. 2018; 103(10): 1586-92. https://dx.doi.org/10.3324/haematol.2018.196097.
  22. Keiran N., Ceperuelo-Mallajre V., Calvo E., Hernandez-Alvarez M.I., Ejarque M., Nunez-Roa C. et al. SUCNR1 controls an anti-inflammatory program in macrophages to regulate the metabolic response to obesity. Nat. Immunol. 2019; 20(5): 581-92. https://dx.doi.org/10.1038/s41590-019-0372-7.
  23. Guo A.C., Jewison T., Wilson M., Liu Y., Knox C., Djoumbou Y. et al. ECMDB: the E. coli metabolome database. Nucleic Acids Res. 2013; 41(Database issue): D625-30. https://dx.doi.org/10.1093/nar/gks992.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО «Бионика Медиа», 2022

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах