Характеристика m. Psoas minor и m. Sacrocaudalis (coccygeus) dorsalis lateralis при симультанном моделировании бокового межтелового спондилодеза и заднего артродеза крестцово-подвздошного сустава

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ

Симультанные (сочетанные) операции — хирургические воздействия, при которых во время одного оперативного вмешательства осуществляют до пяти различных манипуляций, например, при политравме, при этом уменьшается количество наркозов, сокращается продолжительность лечения и восстановления, снижается общий уровень стресса у пациента [1–3]. Сочетанные хирургические вмешательства на позвоночнике с применением высокотехнологичного инструментария и малоинвазивных методик доступа позволяют одномоментно устранить несколько проблем, активизировать пациентов в ранние сроки и уменьшить количество осложнений [4]. При высокоэнергетических тяжёлых повреждениях грудопоясничного отдела позвоночника комбинированное хирургическое вмешательство — надёжный метод, позволяющий достичь достаточной декомпрессии, репозиции и реконструкции [5]. Также многоуровневая вертебропластика при множественных компрессионных переломах безопасна и даёт значимые преимущества при одновременном выполнении [6].

При дегенеративном сколиозе поясничного отдела позвоночника используют технологию LLIF [7]. Установлена безопасность и эффективность техники артродеза крестцово-подвздошного сустава (КПС) с титановыми имплантатами для лечения дегенеративного сакроилеита, разрыва сустава [8]. Всё чаще для артродеза КПС применяют треугольные титановые имплантаты, что приводит к быстрому снижению боли и улучшению качества жизни [9–11], хорошие результаты получены при минимально инвазивном артродезе с применением 3D-кейджей (iFuse Implant System) [12, 13].

Многочисленны исследования паравертебральных мышц при патологиях позвоночника и после оперативных вмешательств [14–16]. Изучают микроскопические особенности мышечной ткани, такие как диаметры миосимпластов, их распределение, особенности профилей, а также инфильтрацию мышечного жира и степень фиброза, атрофию мышц [17, 18]. Работы, посвящённые гистологическим особенностям паравертебральных мышц при сочетанных операциях на позвоночнике с применением техник бокового межтелового спондилодеза поясничного отдела и заднего артродеза КПС, в релевантной литературе выявить не удалось, что определило целесообразность проведения данной работы.

Цель исследования — оценка морфологических изменений малой поясничной и крестцово-каудальной (копчиковой) дорсальной латеральной мышц при симультанном моделировании бокового межтелового спондилодеза и заднего артродеза КПС.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Дизайн исследования

Работа выполнена на базе Национального медицинского исследовательского центра травматологии и ортопедии им. акад. Г.А. Илизарова в рамках проспективного экспериментального исследования на беспородных собаках обоего пола в возрасте скелетной зрелости, массой тела 13,0 ± 4,0 кг и длиной голени 12–14 см. Уровень доказательности – IIb.

Период выполнения эксперимента 2019–2021 гг. в рамках государственного задания «Разработка и оценка эффективности применения пациент-ориентированных имплантатов в хирургии осевого скелета», направление № 8. Регистрационный № темы НИР: АААА-А18-118011190118-8, период обработки информации 2022 г.

Этическая экспертиза

Проведение данного исследования было одобрено локальным комитетом по этике ФГБУ «НМИЦ ТО им. акад. Г.А. Илизарова» (протокол от 17.05.2018 г. № 2/57). Животных содержали в вольерах в стандартных условиях вивария в соответствии с ГОСТом 33215–2014 от 22.12.2014 № 73-П «Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила оборудования помещений и организации процедур»; ГОСТом 33217–2014 «Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила содержания и ухода за лабораторными хищными млекопитающими».

Описание экспериментального вмешательства

Главной целью эксперимента было изучение безопасности и первичной эффективности применения 3D-титановых кейджей для межтелового спондилодеза и илеосакрального блокирования. Основную опытную группу составили 14 животных, контрольную группу — 3 особи. Премедикацию осуществляли растворами димедрола 1% (0,02 мг/кг), атропина сульфата 0,1% (0,02 мг/кг), дроперидола 1% (0,5 мг/кг) и рометара 2% (1 мг/кг). Для внутривенного наркоза использовали раствор тиопентала натрия 5% в дозе 10 мг/кг веса. Животных выводили из эксперимента через 6 (n=5), 12 (n=6) и 18 (n=3) мес, эвтаназию выполняли после премедикации с последующим введением летальной дозы барбитуратов.

Модель эксперимента

Оперативный доступ к поясничному отделу позвоночника осуществляли справа на уровне вершин поперечных отростков поясничных позвонков L_IV–VI, кейдж устанавливали методом вколачивания до полного заглубления в межтеловое пространство (рис. 1, а), рану послойно ушивали [19]. 2-й этап операции: для доступа к КПС на уровне L_VII и S_I–II крестцово-каудальную дорсальную латеральную мышцу смещали медиально, формировали ложе для кейджа в суставных поверхностях КПС с захватом прилегающей костной ткани крыла подвздошной кости и крестца, вколачивали имплантат (рис. 1, b), рану послойно ушивали. КПС и поясничный отдел позвоночника стабилизировали аппаратом внешней фиксации Г.А. Илизарова в течение 30 сут.

 

Рис. 1. Операционное поле: а — титановый кейдж между крестцом и крыльями подвздошных костей поясничных позвонков; b — положение кейджей в крестцово-подвздошных суставах (крестец).

Fig 1. Surgical field: а — titanium cage between the sacrum and the wings of the ilium of the lumbar vertebrae; b — the position of the cages in the sacroiliac joints (sacrum).

 

Гистологические исследования параспинальных мышц

Малую поясничную (m. psoas minor) и крестцово-каудальную (копчиковую) дорсальную латеральную мышцы (m. sacrocaudalis dorsalis lateralis) исследовали через 6, 12, 18 мес эксперимента. Фрагменты мышц иссекали с правой стороны от позвоночника в проекции внедрения имплантатов в межтеловое пространство и фиксировали в смеси равных объёмов 2% глутарового и 2% параформальдегида. После гистологической проводки материал заливали в парафин, срезы окрашивали гематоксилином-эозином, по Ван-Гизону, трихромным методом по Массону. Изучали посредством стереомикроскопа AxioScope.A1 и встроенной цифровой фотокамеры AxioCam (Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Германия). Изображения использовали для стереометрии. Рассчитывали: объёмную плотность (мм³/мм³) мышечных волокон (V_Vmf), микрососудов (V_Vmv), эндомизия (V_Vend), ядерного компонента мышечной ткани (V_Vn); численную плотность (мм^–2) миосимпластов и микрососудов (N_Amf; N_Amv). Рассчитывали индекс васкуляризации мышцы (I_vasc), оценивающий косвенно её оксигенацию; N_Amv/N_Amf — видовая константа.

Биохимические исследования сыворотки крови

В сыворотке крови на различных сроках эксперимента определяли концентрацию общего белка, С-реактивного белка и маркеры повреждения скелетных мышц: креатинфосфокиназу (КФК), аминотрансферазы (АЛТ и АСТ). Определение общего белка, С-реактивного белка и активность ферментов проводили на биохимическом автоматическом анализаторе Hitachi 902 (США), используя наборы реагентов фирм BioSystem (Испания) и Вектор Бест (РФ, Новосибирск).

Статистический анализ

Принципы расчёта размера выборки: размер выборки предварительно не рассчитывали.

Методы статистического анализа данных:

1. Статистический анализ стереометрических данных: а) обработку цифрового материала осуществляли в программе AtteStat версия 13.1 (Россия) [20]; б) определяли среднее арифметическое значение показателей (M) и стандартную ошибку средней (m); в) достоверность различий оценивали на основании непараметрического W-критерия Вилкоксона для независимых выборок, уровень статистической значимости различий р <0,05.
2. Статистический анализ биохимических данных: а) обработку цифрового материала осуществляли в программе AtteStat версия 13.1 (Россия) [20]; б) достоверность различий между значениями, полученными на сроках эксперимента, сравнивали со значениями, полученными перед операцией (0-е сутки); в) различия оценивали с помощью W-критерия Вилкоксона для зависимых выборок, результаты представлены в виде медианы, 1-го и 3-го квартилей.

РЕЗУЛЬТАТЫ

В контрольной группе для гистоструктуры m. psoas minor и m. sacrocaudalis dorsalis lateralis были характерны полигональные единообразные профили мышечных волокон, минимальные соединительнотканные прослойки (рис. 2, а), перимизиальные сосуды артериального звена с открытыми просветами и циркулярной ориентацией гладкомышечных клеток (ГМК), без фиброза оболочек (рис. 2, b). Наблюдались немногочисленные миосимпласты с признаками обратимых контрактур, внутримышечные нервные стволики и нервно-мышечные веретёна обычного строения.

 

Рис. 2. Гистоструктура m. psoas minor (а) и m. sacrocaudalis (coccygeus) dorsalis lateralis (b) в контроле: полигональные профили волокон, минимум эндомизия; а — нервно-мышечное веретено; b — сосуд в перимизии без признаков патологии. Фрагменты парафиновых срезов, окраска гематоксилином-эозином; увеличение ×400.

Fig. 2. Histostructure of m. psoas minor (а) and m. sacrocaudalis (coccygeus) dorsalis lateralis (b) in control: polygonal fiber profiles, minimum endomysium; а — neuromuscular spindle; (b) vessel in perimysium without signs of pathology. Fragments of paraffin sections, stained with hematoxylin-eosin; magnification ×400.

 

На 6-й месяц эксперимента для обеих мышц были характерны признаки структурной адаптации к условиям экспериментального воздействия, такие как утрата полигональности профилей миоцитами и повышенная вариативность их диаметров, единичные адипоциты и небольшие группы в интерстициальном пространстве, в пучках мышечных волокон, фиброз эндо- и перимизия (рис. 3, а, c). В артериальных сосудах с существенно утолщённой средней оболочкой, в которой хаотично ориентировались ГМК, адвентициальная оболочка была сильно фиброзирована, просвет зачастую облитерирован (рис. 3, b).

 

Рис. 3. Гистоструктура малой поясничной мышцы (а, b) и крестцово-каудальной (копчиковой) дорсальной латеральной мышцы (c) через 6 мес эксперимента: а, c — вариабельность размеров миосимпластов, фиброз эндомизия, адипоциты в пучках мышечных волокон; b — артериальный сосуд с сильным фиброзом адвентициальной и средней оболочек, нарушена циркулярная ориентация гладкомышечных клеток, облитерация просвета. Фрагменты парафиновых срезов; окраска гематоксилином-эозином; увеличение ×400.

Fig. 3. Histostructure of the psoas minor (a, b) and the sacro-caudal (coccygeal) dorsal lateral muscle (c) after 6 months of the experiment: a, c — variability in the size of myosymplasts, endomysial fibrosis, adipocytes in bundles of muscle fibers; b — arterial vessel with severe fibrosis of the adventitial and middle membranes, impaired circular orientation of the smooth muscle cells, obliteration of the lumen. Fragments of paraffin sections; hematoxylin-eosin stain; magnification ×400.

 

Через 12 мес в гистоструктуре малой поясничной мышцы преобладали полигональные профили миосимпластов, было характерно нормостроение внутримышечных нервных проводников и нервно-мышечных веретён (рис. 4, а). В крестцово-каудальной дорсальной латеральной мышце сохранялись вышеперечисленные признаки структурной адаптации: диаметры симпластов варьировали, наблюдались внутренние ядра, в участках существенного фиброза интерстиция можно было наблюдать клетки воспалительного ряда (рис. 4, b). Отмечались пучки мышечных волокон, замещённых адипоцитами, перимизиальные сосуды с признаками адвентициального фиброза (рис. 4, c).

 

Рис. 4. Гистоструктура m. psoas minor (а) и m. sacrocaudalis (coccygeus) dorsalis lateralis (b, c) через 12 мес опыта: а — полигональные профили миосимпластов, минимум эндомизия; b — разнокалиберность диаметров мышечных волокон, внутренние ядра, участок существенного фиброза интерстициальной ткани (справа); c — пучок мышечных волокон, замещённых адипоцитами, правее — участок фиброза. Фрагменты парафиновых срезов, окраска гематоксилином-эозином, увеличение ×400.

Fig. 4. Histostructure of m. psoas minor (а) and m. sacrocaudalis (coccygeus) dorsalis lateralis (b, c) after 12 months of the experiment: а — polygonal profiles of myosymplasts, minimum endomysium; b — variability in muscle fiber diameters, internal nuclei, an area of significant fibrosis of the interstitial tissue (on the right); c — a bundle of muscle fibers replaced by adipocytes; to the right, an area of fibrosis. Fragments of paraffin sections, stained with hematoxylin-eosin, magnification ×400.

 

Через 18 мес гистоструктура исследуемых мышц отличалась существенным разнообразием полей зрения. Для m. psoas minor были характерны миосимпласты различных диаметров и профилей, наблюдались небольшие группы адипоцитов, заместивших волокна в мышечных пучках, фиброзированные пучки мышечных волокон с ангулярными мелкими миоцитами (рис. 5, а, внизу), нервно-мышечные веретёна как обычного строения, так и с увеличенными соединительнотканными капсулами (рис. 5, b). В m. sacrocaudalis dorsalis lateralis фрагменты с полигональными профилями волокон и заметным фиброзом эндомизия (рис. 5, c) перемежались с полями адипоцитов и с пучками волокон, где визуализировались миосимпласты в состоянии ишемии, которые при окраске по Массону приобретали синий цвет (рис. 5, d).

 

Рис. 5. Гистоструктура малой поясничной мышцы (а, b) и m. sacrocaudalis dorsalis lateralis (c, d) через 18 мес опыта: а — миоциты различных профилей и диаметров, в мышечном пучке группа адипоцитов (вверху), фрагмент фиброза с остаточными ангулярными мышечными волокнами (внизу); b — нервно-мышечные веретёна нормального строения и с увеличенной соединительнотканной капсулой; c — полигональные профили волокон, фиброз эндомизия; d — адипоциты, заместившие часть мышечных волокон в пучке, ишемизированные волокна окрашены в синий цвет, поля адипоцитов. Фрагменты парафиновых срезов, окраска гематоксилином-эозином по Массону (d); увеличение ×400.

Fig. 5. Histostructure of the psoas minor (a, b) and m. sacrocaudalis dorsalis lateralis (c, d) after 18 months of the experiment: a — myocytes of various profiles and diameters, a group of adipocytes in the muscle bundle (top), a fragment of fibrosis with residual angular muscle fibers (bottom); b — neuromuscular spindles of normal structure and with an enlarged connective tissue capsular; c — polygonal fiber profiles, endomysial fibrosis; d — adipocytes that replaced part of the muscle fibers in the bundle, ischemic fibers are colored blue, fields of adipocytes. Fragments of paraffin sections, stained with hematoxylin-eosin, according to Masson (d); magnification ×400.

 

По данным стереометрии через 6 мес опыта в m. psoas minor и в m. sacrocaudalis dorsalis lateralis наблюдалось увеличение объёмной плотности эндомизия, что составило 150 и 240% (р <0,05) от контрольных значений соответственно (табл. 1). При этом уменьшалась доля объёма миосимпластов до 95% нормы в малой поясничной мышце и до 83% — в крестцово-каудальной, ядерный компонент составил 70% нормы в первой мышце и 76% — во второй (р <0,05). Объёмная плотность микрососудов в исследуемых мышцах составила соответственно 83 и 121% (р <0,05) нормы, индекс васкуляризации в поясничной мышце не изменялся, во второй составил 78% нормы. Жировая инфильтрация малой поясничной мышцы была 394%, крестцово-каудальной — 629% соответствующего параметра в контроле (табл. 2).

 

Таблица 1. Данные стереологического анализа малой поясничной и крестцово-каудальной (копчиковой) дорсальной латеральной мышц собак

Table 1. Data of stereological analysis of the М. psoas minor and M. sacrocaudalis (coccugeal) dorsalis lateralis muscles of dogs

Параметры, мм3/мм3	M. psoas minor				М. sacrocaudalis (coccygeus) dorsalis lateralis
	6 мес	12 мес	18 мес	контроль	6 мес	12 мес	18 мес	контроль
Vvmf	0,7971* ±0,0108	0,7315* ±0,0091	0,7901* ±0,009	0,8299 ±0,0042	0,6975* ±0,0166	0,7001* ±0,0107	0,7181* ±0,0118	0,8439 ±0,007
Vvmv	0,0232* ±0,003	0,0283 ±0,0034	0,0175* ±0,0043	0,0281 ±0,0025	0,0272* ±0,0038	0,0251 ±0,0027	0,0216 ±0,0034	0,0225 ±0,0028
Vvend	0,1539* ±0,0096	0,2181* ±0,0077	0,1697* ±0,0076	0,1057 ±0,0038	0,2428* ±0,0122	0,2480* ±0,0096	0,2397* ±0,0115	0,1023 ±0,0055
Vvn	0,0238* ±0,0029	0,0216* ±0,0027	0,0195* ±0,0046	0,0347 ±0,0026	0,0238* ±0,0029	0,0216* ±0,0027	0,0195* ±0,0046	0,0312 ±0,0032
Ivasc	0,7872	0,9408	0,9043	0,7877	0,7431	0,9714	1,0925	0,9575

Примечание. *Различия достоверны для опытных групп и контроля, р <0,05.

Note. *Differences are significant for the experimental groups and control, p <0.05.

 

Через 12 мес объём эндомизия в малой поясничной мышце составил 206%, в крестцово-каудальной дорсальной латеральной — 243% значений этих параметров в контроле (р <0,05). Объёмная плотность мышечных волокон составила в малой поясничной и крестцово-каудальной мышцах соответственно 98 и 83%, микрососудов — 101 и 112%, ядерного компонента — 62 и 69%, индекса васкуляризации — 119 и 101% от нормы. Степень жировой инфильтрации уменьшалась относительно предыдущего периода, составив 227% в m. psoas minor и 327% в m. sacrocaudalis dorsalis lateralis значения этого параметра в контроле.

На 18-й мес эксперимента объёмная плотность миосимпластов в малой поясничной и крестцово-каудальной дорсальной латеральной мышцах составила соответственно 95 и 85% нормы (р <0,05); доля ядерного компонента — 56 и 62% (р <0,05); относительный объем микрососудов — 62 и 96% (р <0,05); индекс васкуляризации — 115 и 114% значений параметров в контроле. Степень склеротизации m. psoas minor уменьшалась относительно предыдущего периода, составив 161% контроля, и не изменялась в m. sacrocaudalis dorsalis lateralis, составив по-прежнему 240% контрольного значения (р <0,05). Показатель жировой инфильтрации в малой поясничной мышце возрастал относительно предыдущего периода до 339%, в крестцово-каудальной дорсальной латеральной — несущественно уменьшался, составив 310% от контроля (табл. 2).

 

Таблица 2. Жировая инфильтрация малой поясничной и крестцово-каудальной (копчиковой) дорсальной латеральной мышц собак

Table 2. Fat infiltration of the М. psoas minor and M. sacrocaudalis (coccugeal) dorsalis lateralis muscles of dogs

Срок эксперимента	6 мес	12 мес	18 мес	Контроль
	M. psoas minor
Доля адипоцитов, %	28,0	16,1	24,1	7,1
	М. sacrocaudalis (coccygeus) dorsalis lateralis
Доля адипоцитов, %	32,7	17,0	16,1	5,2

 

По результатам биохимического исследования у животных основной группы обнаружен достоверно значимый рост концентрации С-реактивного белка в сыворотке крови с 14-х до 30-х суток после операции (табл. 3). На 14-е сутки было отмечено статистически значимое снижение уровня общего белка сыворотки на фоне повышения активности всех ферментов (для КФК рост составил более чем в 2 раза относительно исходных значений).

 

Таблица 3. Динамика изменений биохимических показателей сыворотки крови на сроках эксперимента, медиана (1-й; 3-й квартиль)

Table 3. Dynamics of changes in the biochemical parameters of blood serum during the experiment, median (1st; 3rd quartile)

Сутки после операции	Общий белок, г/л	С-реактивный белок, мг/л	Креатинфосфокиназа, Е/л	АЛТ, Е/л	АСТ, Е/л
0	68 (66; 71)	0	100 (78; 114)	32 (31; 40)	26 (21; 26)
14	64 (62; 66)*	2,3 (0,6; 4,0)*	215 (201; 234)*	47 (43; 56)*	34 (31; 39)*
30	69 (66; 71)	1,9 (0,2; 5,3)*	88 (86; 125)	29 (28; 35)	27 (24; 32)
60	65 (64; 67)	0	92 (81; 142)	27 (25; 33)	30 (23; 37)
90	66 (64; 68)	0	94 (87; 107)	29 (25; 33)	23 (19; 27)
180	67 (65; 68)	0	97 (93; 105)	33 (27; 36)	26 (20; 38)
360	65 (64; 68)	0	99 (89; 104)	33 (32; 43)	30 (25; 37)
540	70 (69; 70)	0	94 (84; 97)	33 (28; 43)	31 (23; 38)

Примечание. * Достоверные отличия с дооперационными значениями при р <0,05.

Note. * Significant differences with preoperative values at p <0.05.

 

ОБСУЖДЕНИЕ

Оперативные вмешательства с выполнением бокового межтелового спондилодеза и заднего артродеза КПС оказывают негативное воздействие как на малую поясничную, так и на крестцово-каудальную (копчиковую) дорсальную латеральную мышцу, что проявляется как в ранний послеоперационный период (о чём свидетельствует существенный рост активности маркера повреждений скелетных мышц — КФК), так и на протяжении всего эксперимента. Об этом свидетельствует увеличение разнообразия диаметров миосимпластов, сглаживание полигональности их профилей, фиброзирование эндо- и перимизиальной соединительной ткани, склеротизация оболочек сосудов артериального звена, облитерация их просветов, массовая жировая дегенерация мышечных волокон в пучках. Активированные ядра наряду с повышенным разнообразием диаметров мышечных волокон свидетельствуют о структурной адаптации мышечной ткани к оперативному воздействию. Через 12 мес объёмная плотность ядер уменьшалась одновременно со снижением объёмной доли миосимпластов. Снижение доли объёма ядерного компонента в отдалённый период эксперимента может быть обусловлено увеличением возраста подопытных животных, а также ограничением их подвижности ввиду содержания в ограниченном пространстве [21, 22]. Фиброз малой поясничной мышцы через 6, 12 и 18 мес опыта был выше в 1,5, в 2 и в 1,6 раза соответственно, чем в контроле, в крестцово-каудальной (копчиковой) дорсальной латеральной мышце данный параметр не изменялся во все исследованные периоды и был выше в 2,4 раза, чем в контроле. Степень жировой инволюции малой поясничной и крестцово-каудальной дорсальной латеральной мышц через 6, 12 и 18 мес опыта превышала параметры в норме соответственно в 3,9 и 6,3 раза, в 2,3 и 3,3 раза, в 3,4 и 3,1 раза. Очевидно, более выраженные изменения в ходе эксперимента претерпевает крестцово-каудальная дорсальная латеральная мышца как по степени фиброзирования, так и по уровню жировой инволюции, особенно на ранних этапах опыта.

Полученные данные по уменьшению объёмной плотности миосимпластов, склеротизации и жировой инфильтрации исследованных мышц при сочетанном оперативном воздействии находят своё отражение в клинических исследованиях. Так, установлено, что параспинальные мышцы демонстрируют различные паттерны дегенерации при заболеваниях поясничного отдела позвоночника, имеет место прямая взаимосвязь между тяжестью дегенеративных процессов в позвоночном столбе и морфологией мышц спины [23]. Уменьшение объёма паравертебральных мышц коррелирует с кифотической деформацией при анкилозирующем спондилите [24], объём данных мышц влияет на скорость консолидации, функциональную активность и частоту осложнений после операций [16]. Жировая инволюция обоснована в качестве одного из ведущих прогностических факторов для исходов оперативных вмешательств: чем ниже степень жировой инфильтрации, тем меньше болевой синдром и процент снижения уровня функциональной активности в послеоперационном периоде [17]. Кроме того, жировая дистрофия мышц спины тесно связана с минеральной плотностью костной ткани позвоночника [25–27]. Остеопороз и дегенерация параспинальных мышц зачастую сосуществуют, что необходимо учитывать у пациентов с низкой костной массой перед оперативным воздействием [14].

В клинической практике для снижения частоты осложнений со стороны паравертебральных мышц в послеоперационном периоде применяют комплекс физиотерапевтических методов, включающих электростимуляцию мышц спины, кальций-электрофорез, массаж, парафинолечение, лечебную физкультуру [28]. Это позволяет улучшить двигательную функцию мышц и как результат повысить качество жизни пациентов.

В представленном нами исследовании немаловажен тот факт, что животные весь период опыта содержались в ограниченном пространстве, активные двигательные нагрузки для них были недоступны, что, безусловно, оказывало отрицательное воздействие на восстановительные процессы в мышечной ткани и повлияло в той или иной степени на полученные результаты.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В ходе проведённого морфологического анализа паравертебральных мышц при симультанном моделировании бокового межтелового спондилодеза и заднего артродеза КПС в эксперименте выявлены патогистологические изменения обеих мышц, такие как увеличение разнообразия диаметров миосимпластов, утрата полигональности их профилей, массовая жировая дегенерация волокон, фиброзирование эндо- и перимизия, склеротизация оболочек сосудов, облитерация их просветов. По окончании эксперимента степень склеротизации малой поясничной мышцы составила 161%, крестцово-каудальной дорсальной латеральной мышцы — 240% контрольных значений параметров; показатель жировой инфильтрации мышц составил соответственно 339 и 310% нормы. Очевидно, более выраженные изменения претерпевала крестцово-каудальная (копчиковая) дорсальная латеральная мышца, как по степени фиброзирования, так и по уровню жировой инволюции, особенно на ранних сроках эксперимента.

Учитывая, что пациенты при обращении к нейрохирургу уже имеют дистрофические процессы в паравертебральных мышцах при дегенеративных заболеваниях позвоночника [17], необходимо при хирургических вмешательствах стремиться к минимизации механического воздействия на мышцы спины, а также использовать приёмы стимуляции функции мышц в послеоперационном периоде [28]. Это, по нашему мнению, позволит снизить процессы фиброгенеза и жировой инволюции в мышцах, улучшить их функциональную активность и обеспечить в целом сокращение реабилитационного периода целевых пациентов.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ / ADDITIONAL INFO

Вклад авторов: Все авторы подтверждают соответствие своего авторства международным критериям ICMJE (все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией).

Аuthor соntribution. Thereby, all authors made a substantial contribution to the conception of the work, drafting and revising the work, final approval of the version to be published and agree to be accountable for all aspects of the work.

Источник финансирования. Работа осуществлена в рамках государственного задания 2019–2022 гг. Регистрационный № темы НИР: АААА-А18-118011190118-8.

Funding source. Work was carried out within the framework of state assignment for 2019-2022. Registration number of the research topic: АААА-А18-118011190118-8.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Competing interests. The authors declare that they have no competing interests.

Об авторах

Галина Николаевна Филимонова

НМИЦ травматологии и ортопедии им. акад. Г.А. Илизарова

Автор, ответственный за переписку.
Email: galnik.kurgan@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0683-9758

к.б.н., старший научный сотрудник

Россия, Курган

Ольга Владимировна Дюрягина

НМИЦ травматологии и ортопедии им. акад. Г.А. Илизарова

Email: diuriagina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9974-2204
SPIN-код: 8301-1475

к.в.н., заведующая экспериментальной лабораторией

Россия, Курган

Николай Иванович Антонов

НМИЦ травматологии и ортопедии им. акад. Г.А. Илизарова

Email: aniv-niko@mail.ru
SPIN-код: 3754-7508
Scopus Author ID: 55207639900

к.б.н., научный сотрудник

Россия, Курган

Максим Валерьевич Стогов

НМИЦ травматологии и ортопедии им. акад. Г.А. Илизарова

Email: Stogo_off@list.ru
ORCID iD: 0000-0001-8516-8571
SPIN-код: 9345-8300

д.б.н., доцент, руководитель отдела доклинических и лабораторных исследований

Россия, Курган

Сергей Олегович Рябых

НМИЦ травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова

Email: RyabykhSO@cito-priorov.ru
ORCID iD: 0000-0002-8293-0521
SPIN-код: 6382-1107

д.м.н., заместитель директора по проектам, образованию и коммуникации

Россия, Москва

Наталья Владимировна Тушина

НМИЦ травматологии и ортопедии им. акад. Г.А. Илизарова

Email: ntushina76@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1322-608X
SPIN-код: 7554-9130

к.б.н., научный сотрудник

Россия, Курган

Список литературы

Дополнительные файлы