Лучевая стерилизация деминерализованных костных трансплантатов в свете профилактики инфицирования гепатитом B и C

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

С целью определения минимальной эффективной дозы лучевой стерилизации образцы из компактных костных тканей доноров, инфицированных гепатитами В и С, обработанные в соответствии с технологией ЦИТО по изготовлению костных деминерализованных трансплантатов, подвергали воздействию потоком быстрых электронов в возрастающих дозах (от 15 до 50 кГр). Исследования на наличие маркеров HBV и HCVпоказали , что поглощенные дозы излучения 50 и 36 кГр являются близкими к минимальным для инактивации антигенных структур гепатитов В и С соответственно. При общепринятых в мире нормативных дозах лучевой стерилизации до 35 кГр существует опасность переноса вирусных гепатитов через деминерализованные костные трансплантаты в случае ошибки при диагностике этих инфекций. Учитывая побочное действие лучевой стерилизации на микроструктуру костных имплантатов, необходимо продолжить поиск способов защиты их пластических (кондуктивных и индуктивных) свойств при стерилизации потоком быстрых электронов в дозе 50 кГр.

Полный текст

С открытием в последнее время ряда ранее не диагностируемых вирусных инфекций, способных передаваться через костные имплантаты, обеспечение безопасности использования данного материала в пластической хирургии стало одной из главных проблем биоимплантологии. Объем хирургических вмешательств с использованием биологических тканей возрастает с каждым годом. Есть определенные успехи в создании и клиническом применении синтетических материалов и биологических тканей, взятых от животных (ксенотрансплантаты). Безусловно, перспективными и многообещающими являются технологии с привлечением генной инженерии, методики клонирования органов и тканей. Каждое направление несет в себе ряд проблем — морально-этических, технологических, иммунологических и др. При создании искусственных материалов проблема исключения опасности инфицирования реципиента через имплантаты решается достаточно эффективно. Сложнее обстоит дело при использовании донорских тканей, в которых могут присутствовать возбудители бактериальной, грибковой и особенно вирусной инфекции [12, 15, 17, 18]. Вместе с тем на сегодняшний день наиболее подходящими имплантатами в травматологии и ортопедии являются именно биологические ткани человеческого происхождения (аллотрансплантаты). В частности, к ним относятся деминерализованные костные трансплантаты (ДКТ), обладающие остеоиндуктивными и остеокондуктивными свойствами.

Процесс стерилизации ДКТ — обязательный и чрезвычайно важный этап их изготовления. Лабораторные исследования плазмы крови доноров на наличие антител к вирусу гепатита С (HCV) и антигенов вируса гепатита В (HBV) полностью не гарантируют от ошибок в диагностике вирусных гепатитов. Реальностью остается тот факт, что в настоящее время ложноотрицательные результаты исследований на носительство вирусов гепатитов встречаются при использовании самых чувствительных диагностических методик. Вероятнее всего, это связано с множеством сопутствующих факторов — состоянием иммунитета донора, сроками от начала заболевания и т.д. Как бы то ни было, имеется ряд зафиксированных случаев инфицирования пациентов HIV (ВИЧ), гепатитами HCV и HBV после имплантации им костных и других биологических материалов [8].

Воздействие на донорский инфицированный материал охлаждением (до -80°С) или нагреванием (до +65°С) не устраняет опасности передачи вирусов реципиенту [7~13, 19, 20]. Стерилизация оксидом этилена также не гарантирует от возможности инфицирования больных [8]. К тому же остаются спорными вопросы о токсических свойствах оксида этилена и его влиянии на остеоиндуктивную способность ДКТ [9, 14].

Оптимальным методом стерилизации, на наш взгляд, является радиационный (сравнительные* характеристики двух видов лучевого воздействия — у-лучами и потоком быстрых электронов   в

настоящей статье не рассматриваются). Мы использовали облучение образцов потоком ускоренных электронов для определения минимальной дозы лучевой стерилизации, при которой происходит разрушение маркеров гепатита В (HBsAg) и гепатита С (РНК) в ДКТ.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Объектом изучения являлись образцы, изготовленные из большеберцовых костей человека, размером 2x2 см. Образцы были разделены на две серии (по 24 в каждой): первая — ткани от доноров, инфицированных HBV, вторая — HCV. Диагноз ставился после исследований плазмы крови в аппарате B4312L (Bio-Kinetics Reader) с использованием тест-систем (Rekombi-BEST anti-VGS-Strip и Vectogen B-HBs-antigen-Strip). Доноры выбирались произвольно, степень «загрязненности» материала не определялась.

Инфицированные фрагменты костной ткани проходили все этапы технологии изготовления ДКТ по методике ЦИТО [1]: механическую очистку кости от мягких тканей, обработку 3% раствором перекиси водорода и ультразвуком для удаления элементов крови и жирового компонента соответственно; деминерализацию в 0,6 н. HCI в течение 24 ч; удаление из образцов хлористоводородной кислоты с использованием раствора тиосульфата натрия; помещение деминерализованных образцов в холодильную установку при — 35°С (до 10 сут); лиофилизацию в течение 48 ч в установке LZ 9.2; упаковку в стандартные пластиковые пакеты медицинского назначения.

Каждая серия образцов была разделена на 6 групп в соответствии с используемой дозой облучения потоком быстрых электронов — 15, 22, 29, 36, 43 и 50 кГр. Стерилизация проводилась при помощи радиационно-технологических установок ЛУЭ-8-5М и УООЗ МВ с энергией излучения 8-9 Мэ-В, мощностью дозы 1,0 кГр/c. Погрешность измерения поглощенной дозы излучения составляла 10%.

Сохранение (отсутствие) HBsAg в образцах устанавливали при помощи иммуноферментного теста. Иммуноферментный тест по выявлению HBsAg проводили в соответствии с инструкцией по применению тест-системы Hepanostika HBsAg Uni-Form II фирмы «Organon». Полная инактивация HBsAg предполагалась тогда, когда отношение результатов замера в опытной лунке к результатам отрицательного контроля было равно или ниже 2,1.

Выделение РНК HCV из исследуемых образцов проводили стандартным методом с применением смеси гуанидин-тиоционат-фенол-хлороформ [3]. Детекцию РНК HCV выполняли по «пез1еб»-варианту RT-PCR с использованием праймеров на 5'-нетранслируемый регион [16]. Продукты амплификации анализировали путем электрофореза в 2% агарозном геле и окрашивали бромидом этидия. Результаты иммуноферментного анализа регистрировали спектрофотометрически.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Полученные результаты (см. таблицу) свидетельствуют о том, что для создания высокого уровня безопасности при использовании ДКТ необходима, невидимому, минимальная стерилизующая доза около 50 кГр. Достаточной для инактивации антигенов HCV в том же материале является доза 36 кГр. Современные нормативы лучевой стерилизации биологических тканей в странах, входящих в Европейскую ассоциацию тканевых банков, колеблются в диапазоне от 15 до 35 кГр [2, 5, 6]. При этом отмечаются существенные изменения в сторону уменьшения как прочностных характеристик пластического материала, так и его остеоиндуктивных свойств по мере увеличения поглощенной дозы ионизирующего излучения [6, 10].

 

Результаты определения маркеров гепатита В и С в образцах, облученных разными дозами потока быстрых электронов

Поглощенная доза, кГр

HBV (HBsAg)

 

HCV (РНК)

15+1,5

+ •

 

+

22±2,3

+

 

+

29±2,9

+

 

+

36±3,6

+

 

 

43±4,3

+

 

 

50±5,0        

 

 

 

Наши данные не согласуются с результатами исследований Currey и соавт. [4], согласно которым доза лучевой стерилизации, необходимая для вирусной инактивации, приближается к 96 кГр. По нашим данным, радиационная нагрузка на пластический материал в 50 кГр позволяет сочетать высокую степень безопасности имплантатов с относительной сохранностью их остеоиндуктивных свойств. Резкое снижение этих свойств происходит при воздействии на костную ткань ионизирующего излучения в дозе от 50 кГр и выше [6]. Это подтверждается результатами нашего предварительного гистологического исследования образцов, свидетельствующими о значительном повреждении коллагена в имплантатах (см. рисунок).

 

Состояние клеточных элементов кортикальной кости после стерилизации потоком быстрых электронов. Электронная микроскопия, ув. 62 000.А — поглощенная доза 25 кГр: ядро клетки плотное, структурированное (а). Межуточное вещество плотное, коллагеновые волокна сохранены (б). Мембрана остеоцита хорошо выражена, без разрывов (в). В цитоплазме видны единичные вакуоли (г);Б — поглощенная доза 50 кГр: остеоцит разрушен, с сохранной клеточной мембраной (а). Ядро пикнотичное (б), хроматин агрегирован (в). Эндоплазматическая сеть сильно разрушена, с многочисленными пустотами и вакуолями (г).

 

Необходимость проведения исследований по оптимизации условий лучевой стерилизации биологических тканей очевидна. Открытие возбудителей HCV и других вирусных инфекций, в частности вируса Якоба—Крейнцфельда, передающихся через биологические объекты, ставит под сомнение безопасность применения аллои ксенотрансплантатов без проведения дополнительных диагностических тестов. К сожалению, ошибки, связанные с имплантацией инфицированного материала, допущенные за десятилетия существования биоимплантологии исключительно из-за недостаточного уровня знаний, спекулятивно используются против развития этой важнейшей области медицины.

Заключение. Резкое снижение количества и качества донорского материала заставляет уточнять нормы лучевой стерилизации, ставя во главу угла безопасность использования биологического пластического материала и частично жертвуя его свойствами. Установление минимальных доз лучевой стерилизации для инактивации антигенных структур вирусов гепатитов В и С в костных имплантатах на сегодняшний день не является сигналом к использованию ДКТ из инфицированного донорского материала. Однако при определенных условиях в случае необходимости массового изготовления костных трансплантатов воздействие потоком быстрых электронов в дозах, полученных нами в эксперименте, может стать дополнительным фактором безопасности. При этом, вероятнее всего, пострадают пластические свойства ДКТ. Поэтому необходимо дальнейшее изучение условий защиты биомеханических и остеоиндуктивных свойств ДКТ, подвергающихся стерилизации потоком быстрых электронов с дозой поглощения в пределах 50 кГр.

×

Об авторах

М. В. Лекишвили

Центральный институт травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова

Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Россия, Москва

Е. И. Исаева

Институт вирусологии им. Д.И. Ивановского

Email: info@eco-vector.com
Россия, Москва

В. И. Пономарев

Институт биофизики

Email: info@eco-vector.com
Россия, Москва

М. Г. Васильев

Центральный институт травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова

Email: info@eco-vector.com
Россия, Москва

Список литературы

  1. Пат. 217800 РФ от 17.02.99. Способ изготовления костного аллотрансплантата /Лекишвили М.В., Касымов И.А.
  2. Пономарев В.Н., Носкова Т.И. //Вести. АДС «Радтех- Евразия». — 1993. — N 1. — С. 18-21.
  3. Chomezynski Р., Sacchi N. //Ann. Biochem. — 1987. — Vol. 182, N 3. — P. 156-159.
  4. Currey J.D., Foreman J., Laketic I. et al. // J. Orthop. Res. — 1997. — Vol. 15, N 1. — P. 111-117.
  5. Dziedzic-Goclawska A. //Allograft against disability: World Congress on tissue banking, 2nd . — Warsaw, 1999. — P. 15-16.
  6. Dziedzic-Goclawska A. // Radiation and tissue banking. — Singapore, 2000. — P. 57~99.
  7. Hamer A.J., Stockley I., Elson R.A. //J. Bone Jt Surg. — 1999. — Vol. 81B, N 2. — P. 342-344.
  8. Joyce M.J. //Allograft against disability: World Congress on tissue banking, 2nd. — Warsaw, 1999. — P. 7~8.
  9. Kakiuchi M., Ono K., Nishimura A. et al. //Int. Orthop. — 1996. — Vol. 20, N 3. — P. 142-146.
  10. Kaminski A., Dziedzic-Goclawska A. //Allograft against disability: World Congress on tissue banking, 2nd. — Warsaw, 1999. — P. 49.
  11. Kuhne J.H., Refior H.J., Jansson V. et al. //Z. Orthop. — 1994. — Bd 132, N 2. — S. 102-111.
  12. Le Huec J.C. //Chirurgie. — 1992. — Vol. 118, N 6~7. — P. 397-404.
  13. Marthy S., Richter M. 11 J. Oral. Maxillofac. Surg. — 1998. — Vol. 56. — P. 474-476.
  14. Munting E., Wilmart J.F., Wijne A. et al. //Acta Orthop. Scand. — 1988. — Vol. 59, N 1. — P. 34-38.
  15. Nemzek J.A., Amoczky S.P., Swenson C.L. //Clin. Orthop. — 1996. — N 324. — P. 275-282.
  16. Okamoto H., Okada S., Sugiyama Y. et al. //Jap. J. Exp. Med. — 1990. — Vol. 60, N 3. — P. 215-222.
  17. Palmer S.H., Gibbons C.L., Athanasou N.A. //J. Bone Jt Surg. — 1999. — Vol. 81B, N 2. — P. 333-335.
  18. Sutherland AG., Raafat A., Yates P. et al. //J. Hospital Infect. — 1997. — Vol. 35, N 3. — P. 215-222.
  19. Tomford W.W., Thongphasuk J., Mankin H.J. et al. //J. Bone Jt Surg. — 1990. — Vol. 72A, N 8. — P. 1137-1143.
  20. Tomford W.W. //Ibid. — 1995. — Vol. 77A, N 11. — P. 1742-1754

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Состояние клеточных элементов кортикальной кости после стерилизации потоком быстрых электронов. Электронная микроскопия, ув. 62 000.А — поглощенная доза 25 кГр: ядро клетки плотное, структурированное (а). Межуточное вещество плотное, коллагеновые волокна сохранены (б). Мембрана остеоцита хорошо выражена, без разрывов (в). В цитоплазме видны единичные вакуоли (г);Б — поглощенная доза 50 кГр: остеоцит разрушен, с сохранной клеточной мембраной (а). Ядро пикнотичное (б), хроматин агрегирован (в). Эндоплазматическая сеть сильно разрушена, с многочисленными пустотами и вакуолями (г).

Скачать (567KB)

© ООО "Эко-Вектор", 2022



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77-76249 от 19.07.2019.