Исследование адгезивных характеристик уропатогенных штаммов Escherichia coli у пациентов с позвоночно-спинномозговой травмой


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Изучены адгезивные характеристики 9 клинических штаммов E. coli, выделенных из мочи 9 пациентов с позвоночно-спинномозговой травмой, поздний период. Возраст пациентов составил от 21 года до 54 лет. Нейрогенные нарушения мочеиспускания, наблюдаемые у пациентов, были результатом травмы позвоночника в шейном (5 пациентов), грудном (2 пациента) и грудопоясничном (2 пациента) отделах. Срок давности заболевания составил от 2 до 12 лет. Несмотря на преимущественно низкую адгезивную активность исследованных штаммов, образование биопленок происходило на поверхностях, обладающих как гидрофобными (полистирол), так и гидрофильными (покровное стекло) свойствами. При этом по данным фотометрического исследования через 24 ч 7 штаммов из 9 обладали слабой, 1 - средней и 1 - высокой способностью к образованию биопленки. Через 48 ч только у 4 штаммов сохранялась низкая способность к образованию биопленки, из них у 2 заметили увеличение показателя по сравнению с предыдущим сроком наблюдения. Остальные штаммы обладали средней способностью к образованию биопленки. При количественной оценке способности бактерий формировать биопленки на поверхности покровного стекла установлено, что большая часть площади поля зрения через 24 ч приходилась на микроколонии размером до 10 мкм 2, через 48 ч - на микроколонии размером от 100 до 1000 мкм 2. Между изучаемыми показателями обнаружен ряд достоверных корреляционных связей. Через 24 ч коэффициент корреляции между оптической плотностью (OD630) и количеством, OD630 и долей микроколоний размером от 10 до 10000 мкм 2 изменялся от 0,79 до 0,9. Через 48 ч установлена прямая корреляционная связь между OD630 и количеством (r = 0,73, p = 0,025), OD630 и долей (r = 0,81, p = 0,009) микроколоний размером от 1000 до 10000 мкм 2.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Е. В Осипова

ФГБУ «Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" им. акад. Г. А. Илизарова» Минздрава России

Email: E-V-OsipovA@mail.ru
канд. биол. наук, ст. науч. сотр

И. В Шипицына

ФГБУ «Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" им. акад. Г. А. Илизарова» Минздрава России

Научно-клиническая лаборатория микробиологии и иммунологии

Список литературы

  1. Roop Singh, Rajesh Kumar Rohilla, Kapil Sangwan, et al. Bladder management methods and urological complications in spinal cord injury patients. Indian J Orthop. 2011; 45(2): 141-147.
  2. Dedeic-Ljubovic A., Hukic M. Catheter-related urinary tract infection in patients suffering from spinal cord injuries. Bosn J Basic Med Sci. 2009; 9(1): 2-9.
  3. Jacobsen S.M., Stickler D.J., Mobley H.L.T. et al. Complicated Catheter-Associated Urinary Tract Infections Due to Escherichia coli and Proteus mirabilis. Clin Microbiol Rev. 2008; 21(1): 26-59.
  4. Маянский А.Н. Цитокины и медиаторные функции уроэпителия в воспалительных реакциях мочевыводящей системы. Цитокины и воспаление. 2003;2(4):3-9.
  5. Clinical Management of Complicated Urinary Tract Infection Edited by Ahmad Nikibakhsh, Publisher: InTech. 2011.
  6. Тец В.В. Микроорганизмы и антибиотики. Заболевания мочевыводящих путей. СПб.: КЛЕ_Т. 2005.
  7. Скрябин Г.Н., Александров В.П., Кореньков Д.Г., Назаров Т.Н. Циститы (учебное пособие). СПб., 2006.
  8. Романова Ю.М., Диденко Л.В., Толордава Э.Р. и др. Биопленки патогенных бактерий и их роль в хронизации инфекционного процесса. Поиск средств борьбы с биопленками. Вестник РАМН. 2011; 10: 31-39.
  9. Лагун Л.В., Тапальский Д.В., Жаворонок С.В. Интенсивность образования микробных биопленок микроорганизмами, выделенными при пиелонефритах и мочекаменной болезни. Медицинский журнал. 2012;4:64-67.
  10. Cramton S.E., Ulrich M., Gotz F. et al. Anaerobic Conditions Induce Expression of Polysaccharide Intercellular Adhesin in Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis. Infection and Immunity. 2001 ;69: 4079-4085.
  11. Бриллис В.И., Брилене Т.А., Ленцнер Х.П. и др. Методика изучения адгезивного процесса микроорганизмов. Лабораторное дело. 1986;4:210-212.
  12. OToole G.F., Kolter R. Flagellar and twitching motility are necessary for Pseudomonas aeruginosa biofilm development. Mol. Microbiol. 1998;30:295-304.
  13. Stepanovic S., Vukovi D., Hola V. et al. Quantification of biofilm in microtiter plates: overview of testing conditions and practical recommendations for assessment of biofilm production by Staphylococci. APMIS. 2007; 115: 891-99.
  14. Гайдышев И.П. Решение научных и инженерных задач средствами Excel, VBA и C/C++. СПб.: ВХВ Петербург. 2004.
  15. Сидоренко С.В. Инфекционный процесс как «диалог» между хозяином и паразитом. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001 ;3(4):301-315.
  16. Лопаткин Н.А., Аполихин О.И., Козлов Р.С., Перепанова Т.С. Рекомендации по ведению больных с инфекциями почек, мочевых путей и мужских половых органов. Изд. Европейская урологическая ассоциация Eau. 2007 ; 125-148.
  17. Tenke P., Koves B., Nagy K. et al. Update on biofilm infections in the urinary tract. World J Urol. 2012;30(1):51-57.
  18. Marchese A., Bozzolasco M., Gualco L. et al. Effect of fosfomycin alone and in combination with N-acetylcysteine on E. coli biofilms. Int. J Antimicrob. Agents. 2003;22:95-100.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах