Белок, связывающий жирные кислоты, в сыворотке крови и сперме

  • Авторы: Соснин Д.Ю1, Галькович К.Р2, Зубарева Н.А1, Кривцов А.В3, Поздин Н.В4
  • Учреждения:
    1. ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера» Минздрава России
    2. ООО «МедГарант»
    3. ФБУН «Федеральный научный центр медико профилактических технологий управления рисками здоровью населения» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
    4. ФГБОУ ВО «Пермский национальный исследовательский политехнический университет» Российской Федерации
  • Выпуск: № 3 (2019)
  • Страницы: 95-100
  • Раздел: Статьи
  • URL: https://journals.eco-vector.com/1728-2985/article/view/303648
  • DOI: https://doi.org/10.18565/urology.2019.3.95-100
  • ID: 303648

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Состав семенной плазмы отражает процессы в органах репродуктивной системы, которые участвуют в продукции эякулята. Цель исследования: изучить концентрацию белка, связывающего жирные кислоты (БСЖК), в сыворотке крови и образцах эякулята с нормальными и измененными характеристиками. Материалы и методы: в исследование включены 82 мужчины, средний возраст которых составил 33,1±4,7года, проходивших обследование с целью уточнения причины бесплодного брака. Основную группу (n=21) составили мужчины с олигозооастеноспермией. Контрольная группа (n=33) была представлена обследованными с нормальными показателями эякулята. В группу сравнения (n=28) были включены мужчины с синдром вискозипатии эякулята. Ни у кого из обследованных не было выявлено изменений в общем и биохимическом анализах крови и анализе мочи. Содержание БСЖК определяли в сыворотке крови и семенной плазме. Результаты: среднее содержание БСЖК в семенной плазме составило 1,347±0,26 нг/мл и превышало концентрацию этого соединения в сыворотке крови (p<0,000001), которая составила 0,305±0,193 нг/мл. Концентрация БСЖК в семенной плазме не зависела от его сывороточной концентрации (R=0,068194), а также от объема и вязкости эякулята, но коррелировала с концентрацией сперматозоидов (R=0,66387). Семенная плазма мужчин контрольной группы характеризовалась наибольшей концентрацией БСЖК(1,47±0,33нг/мл), превышавшей аналогичный показатель основной группы (1,22±0,09 нг/мл; p=0,000057) и группы сравнения (1,29±0,19 нг/мл; p=0,010822). При сравнении результатов сывороточной концентрации БСЖКразличия между группами отсутствовали (p=0,9814). Выводы. Полученные данные позволяют предположить, что сниженный уровень БСЖК в семенной плазме можно рассматривать как неблагоприятный признак, свидетельствующий о пониженной фертильности эякулята.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Д. Ю Соснин

ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера» Минздрава России

Email: sosnin_dm@mail.ru
д.м.н., профессор кафедры клинической лабораторной диагностики факультета дополнительного профессионального образования

К. Р Галькович

ООО «МедГарант»

к.м.н., врач- уролог медицинского центра

Н. А Зубарева

ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера» Минздрава России

д.м.н., профессор кафедры общей хирургии № 1

А. В Кривцов

ФБУН «Федеральный научный центр медико профилактических технологий управления рисками здоровью населения» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека

к.м.н., заведующий лабораторией иммуногенетики

Н. В Поздин

ФГБОУ ВО «Пермский национальный исследовательский политехнический университет» Российской Федерации

студент факультета прикладной математики и механики

Список литературы

  1. Долгов В.В., Луговская С.А., Фанченко Н.Д., Миронова И.И., Назарова Е.К., Ракова Н.Г., Раков С.С., Селиванов Т.О., Щелочков А.М. Лабораторная диагностика мужского бесплодия. М.: Тверь: ООО «Издательство «Триада», 2006. 125 с.
  2. WHO laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction. 4th ed. 1999 2-я ссылка активна на 20.10.2017.
  3. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. - 5th ed. 2010 http://www.who.int/reproductivehealth/ publications/infertility/9789241547789/en/
  4. Галькович К.Р., Соснин Д.Ю. Иммунохимическое определение концентрации органоспецифических белков эякулята в дифференциальной диагностике хронических воспалительных заболеваний мужской репродуктивной системы. Урология. 1997; (5): 40-44
  5. Milardi D., Grande G., Vincenzoni F., Castagnola M., Marana R. Proteomics of human seminal plasma: identification of biomarker candidates for fertility and infertility and the evolution of technology. Molecular reproduction and development. 2013; 80(5): 350-357. doi: 10.1002/mrd.22178.
  6. Евдокимов В.В., Ерасова В.И., Орлова Е.В. Белковые маркеры фертильности. Андрология и генитальная хирургия. 2004;(4): 30-32
  7. Соснин Д.Ю., Зубарева Н. А., Ненашева О.Ю., Кривцов А.В., Каримова Н.В., Поздин Н.В. Кронцентрация прокальцитонина в эякуляте и сыворотке крови здоровых мужчин и мужчин с олигозооастеноспермией. Урология. 2017;(1):61-65. doi: 10.18565/urol.2017.1.61-65.
  8. Луцкий Д.Л., Махмудов Р.М. Луцкая А.М. Исследование эякулята и его компонентов в диагностике воспалительных заболеваний мужской репродуктивной системы: белки, антиспермальные антитела. Ч. 2. (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2011;(2): 84-88
  9. Andrei P.D., Keith J., Eleftherios P. D. Verification of male infertility biomarkers inseminal plasma by multiplex selected reaction monitoring assay. Molecular & Cellular Proteomics. 2011;(10):1-13. Doi:10.1074/ mcp.M110.004127-1.
  10. Davalieva K., Kiprijanovska S., Noveski P., Plaseski T., Kocevska B., Plaseska-Karanfilska D. Human seminal plasma proteome study: a search for male infertility biomarkers. BJMG, Suppl. 2012;(15):35-38. doi: 10.2478/v10034-012-0016-9
  11. Milardi D., Grande G., Vincenzoni F., Castagnola M., Marana R. Proteomics of human seminal plasma: identification of biomarker candidates for fertility and infertility and the evolution of technology. Molecular reproduction and development. 2013;80(5):350-357. doi: 10.1002/mrd.22178.
  12. Pelsers M.M., Glatz J.F. Detection of brain injury by fatty acid-binding proteins. Clin Chem Lab Med. 2005;43(8):802-809. Doi: 10.1515/ CCLM.2005.135.
  13. Liu R.Z., Li X., Godbout R. A novel fatty acid-binding protein (FABP) gene resulting from tandem gene duplication in mammals: transcription in rat retina and testis. Genomics. 2008;92(6):436-45. Doi: 10.1016/j. ygeno.2008.08.003.
  14. Мартынов А.И., Воевода М.И., Арутюнов Г.П., Кокорин В.А., Спасский А.А. Клиническая эффективность ранней диагностики острого инфаркта миокарда с помощью белка, связывающего жирные кислоты. Российский кардиологический журнал. 2012;17(3):7-11
  15. Chung-Yu Ku, Yu-Huei Liu, Hsuan-Yuan Lin, Shao-Chun Lu, Jung-Yaw Lin Liver fatty acid-binding protein (L-FABP) promotes cellular angiogenesis and migration in hepatocellular carcinoma Oncotarget. 2016;7(14):18229-18246. doi: 10.18632/oncotarget.7571.
  16. Khatir D.S., Bendtsen M.D., Birn H., N0rregaardR., Ivarsen P., Jespersen B., Buus N.H. Urine liver fatty acid binding protein and chronic kidney disease progression. Scand J. Clin Lab Invest. 2017;77(7):549-554. doi: 10.1080/00365513.2017.1355561.
  17. Диагностическое значение содержания в плазме крови тропонина и белка кардиомиоцитов, связывающего жирные кислоты, при остром коронарном синдроме. Клиническая медицина. 2017;95(3): 207-215
  18. Leaver K., Poston K.L. Do CSF Biomarkers Predict Progression to Cognitive Impairment in Parkinson’s disease patients? A Systematic Review. Neuropsychol Rev. 2015;25(4):411-23. doi: 10.1007/s11065-015-9307-8.
  19. Kamijo-Ikemori A., Sugaya T., Ichikawa D., Hoshino S., Matsui K., Yokoyama T., Yasuda T., Hirata K., Kimura K. Urinary liver type fatty acid binding protein in diabetic nephropathy. Clin Chim Acta. 2013;424:104- 108. doi: 10.1016/j.cca.2013.05.020.
  20. Tsuji S., Sugiura M., Tsutsumi S., Yamada H. Sex differences in the excretion levels of traditional and novel urinary biomarkers of nephrotoxicity in rats. J. Toxicol Sci. 2017;42(5):615-627. Doi: 10.2131/ jts.42.615.
  21. Jamshidi J., Pouresmaeili F., Darvish H., Omrani D., Azargashb E., Sadeghi M.R., Lakpour N. FABP9 Mutations Are Not Detected in Cases of Infertility due to Sperm Morphological Defects in Iranian Men. Int J. Fertil Steril. 2014;7(4):275-280.
  22. Glatz J.F. Lipids and lipid binding proteins: a perfect match. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2015;93:45-49. Doi: 10.1016/j. plefa.2014.07.011.
  23. Adeva-Andany M.M., Carneiro-Freire N., Seco-Filgueira M., Fernandez-Fernandez C., Mourino-Bayolo D. Mitochondrial p-oxidation of saturated fatty acids in humans. Mitochondrion. 2018 Mar 15. pii: S1567-7249(17)30289-1. doi: 10.1016/j.mito.2018.02.009.
  24. Плосконос М.В., Николаев А.А. «Абортивный» апоптоз сперматозоидов: какова его доля в эякуляте фертильного мужчины? Проблемы репродукции. 2014;(6): 70-75). Doi: 10.17116/ repro201420670-75.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2019