Опыт применения конфокальной лазерной эндомикроскопии в диагностике папиллярных опухолей мочевого пузыря
- Авторы: Шоайдаров М.А.1, Мартов А.Г.2,1,3, Андронов А.С.2,1, Дутов С.В.2,1, Поминальная В.М.4
-
Учреждения:
- МБУ ИНО ГНЦ ФМБЦ им. А. И. Бурназяна ФМБА РФ
- ГБУЗ ГКБ им. Д. Д. Плетнёва
- МГУ им. М. В. Ломоносова
- ГБУЗ МКНЦ им. А.С. Логинова
- Выпуск: № 2 (2023)
- Страницы: 99-106
- Раздел: Эндоурология
- URL: https://journals.eco-vector.com/1728-2985/article/view/528470
- DOI: https://doi.org/10.18565/urology.2023.2.99-106
- ID: 528470
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Введение. Визуальное подтверждение подозрительных изменений слизистой мочевыводящих путей является краеугольным камнем в диагностике уротелиального рака. Однако при опухолях мочевого пузыря во время цистоскопии как в белом свете, так и при фотодинамической и узкоспектровой диагностике, а также при компъютерной хромоэндоскопии невозможно получить гистопатологическую информацию. Конфокальная лазерная эндомикроскопия (Probe-based confocal laser endomicroscopy – рCLE) представляет собой метод оптической визуализации, который позволяет получать морфологическое изображение с высоким разрешением in vivo и оценивать поражения уротелия в режиме реального времени.
Цель исследования: оценить диагностические возможности конфокальной лазерной эндомикроскопии (рCLE) при папиллярных опухолях мочевого пузыря и сопоставить результаты эндомикроскопии со стандартной гистопатологией.
Материалы и методы. В исследование были включены 38 пациентов (27 мужчин, 11 женщин, возраст – 41–82 года) с первично диагностированными опухолями мочевого пузыря по результатам инструментальных методов диагностики. С целью верификации диагноза и лечения всем было показано выполнение трансуретральной резекции (ТУР) мочевого пузыря. После проведения стандартной цистоскопии в белом свете с оценкой всего уротелия выполнялось внутривенное введение раствора флуоресцеина натрия 10% в качестве контрастного красителя. Конфокальный лазерный эндомикроскоп в виде зонда CystoFlexTMUHD 2,6 мм (7,8 Fr) пропускали через тубус резектоскопа 26 Fr с помощью телескопического мостика для визуализации нормальных и патологических образований уротелия. Лазер с длиной волны 488 нм и со скоростью от 8 до 12 кадров в секунду позволял получать эндомикроскопическое изображение. Данные изображения сравнивали со стандартным гистопатологическом анализом в гематоксилин-эозине (H&E) фрагментов опухоли, удаленных при трансуретральной резекции мочевого пузыря.
Результаты. Из 38 пациентов 23 при конфокальной лазерной эндомикроскопии в режиме реального времени уставлен диагноз «высокодифференцированная уротелиальная карцинома низкой степени злокачественности» (low grade), у 12 пациентов эндомикроскопическая картина соответствовала низкодифференцированной уротелиальной карциноме высокой степени злокачественности (high grade), у 2 пациентов изменения были характерными для воспалительного процесса и у 1 пациента диагностирована карцинома in situ (CIS), что было подтверждено стандартными гистопатологическими исследованиями. Эндомикроскопические изображения продемонстрировали четкие различия между нормальной слизистой оболочкой мочевого пузыря и опухолями высокой и низкой степеней злокачественности. В нормальном уротелии более крупные зонтичные клетки расположены наиболее поверхностно, за ними следуют более мелкие промежуточные клетки, а также собственная пластинка слизистой оболочки с сетью кровеносных сосудов. В отличие от этого уротелиальная карцинома низкой степени злокачественности (low grade) характеризуется более плотно расположенными нормальной формы мелкими клетками, расположенными кнаружи от центрального фиброваскулярного ядра. Уротелиальная карцинома высокой степени злокачественности (high grade) демонстрирует заметно нерегулярную архитектуру клеток и клеточный плеоморфизм.
Вывод. Конфокальная лазерная эндомикроскопия является многообещающим новым методом диагностики in vivo микроскопической визуализации рака мочевого пузыря. Результаты настоящего исследования показывают его потенциал для эндоскопического определения гистологических характеристик ткани рака мочевого пузыря – возможность дифференциации доброкачественного и злокачественного процесса, а также степени дифференциации опухолевых клеток.
Полный текст

Об авторах
М. А. Шоайдаров
МБУ ИНО ГНЦ ФМБЦ им. А. И. Бурназяна ФМБА РФ
Email: dr.shoaydarov@yahoo.com
ORCID iD: 0000-0002-3136-2114
врач-уролог, аспирант кафедры урологии и андрологии
Россия, МоскваА. Г. Мартов
ГБУЗ ГКБ им. Д. Д. Плетнёва; МБУ ИНО ГНЦ ФМБЦ им. А. И. Бурназяна ФМБА РФ; МГУ им. М. В. Ломоносова
Автор, ответственный за переписку.
Email: martovalex@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6324-6110
член-корр. РАН, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой урологии и андрологии; заведующий 2 урологическим отделением; в.н.с. МНОЦ
Россия, Москва; Москва; МоскваА. С. Андронов
ГБУЗ ГКБ им. Д. Д. Плетнёва; МБУ ИНО ГНЦ ФМБЦ им. А. И. Бурназяна ФМБА РФ
Email: dr.andronov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5492-6808
к.м.н., доцент кафедры урологии и андрологии; врач-уролог 2 урологического отделения
Россия, Москва; МоскваС. В. Дутов
ГБУЗ ГКБ им. Д. Д. Плетнёва; МБУ ИНО ГНЦ ФМБЦ им. А. И. Бурназяна ФМБА РФ
Email: hammerwise@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5384-355X
к.м.н., ассистент кафедры урологии и андрологии; врач-уролог 2 урологического отделения
Россия, Москва; МоскваВ. М. Поминальная
ГБУЗ МКНЦ им. А.С. Логинова
Email: vika.pominalnaya74@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4420-9052
к.м.н., врач-патологоанатом патологоанатомического отделения
Россия, МоскваСписок литературы
- Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2019. CA Cancer J Clin 2019;69(1):7–34.
- Rouprêt M., Babjuk M., Compérat E. et al. European Association of Urology Guidelines on upper urinary tract urothelial carcinoma: 2017 update. Eur Urol 2018;73(1):111–122.
- Abu-Ghanem Y., et al. The Impact of Histological Subtype on the Incidence, Timing, and Patterns of Recurrence in Patients with Renal Cell Carcinoma After Surgery-Results from RECUR Consortium. Eur Urol Oncol. 2021;4:473.
- Мартов А.Г., Ергаков Д.В., Андронов А.С. Рецидивирование мышечно-неинвазивного рака мочевого пузыря: возможные эндоскопические пути решения проблемы. Онкоурология. 2010;1:6–14.
- Солодкий В.А. Конфокальная лазерная эндомикроскопия в диагностике заболеваний желудочно-кишечного тракта. Вестник РГМУ. 2012;6:17–20.
- Becker V., Vercauteren T., von Weyhern C.H. et al. High-resolution miniprobe-based confocal microscopy in combination with video mosaicing (with video). Gastrointest. Endosc. 2007;66:1001– 1007.
- Banno K, Niwa Y, Miyahara R, et al. Confocal endomicroscopy for phenotypic diagnosis of gastric cancer. J Gastroenterol Hepatol. 2010;25:712–718.
- Dunbar K.B., Okolo P., 3rd, Montgomery E., Canto M.I. Confocal laser endomicroscopy in Barrett’s esophagus and endoscopically inapparent Barrett’s neoplasia: A prospective, randomized, double-blind, controlled, crossover trial. Gastrointest Endosc. 2009;70:645–654.
- Gomez V., Buchner A.M., Dekker E., et al. Interobserver agreement and accuracy among international experts with probe-based confocal laser endomicroscopy in predicting colorectal neoplasia. Endoscopy. 2010;42:286–291.
- Kiesslich R., Burg J., Vieth M., et al. Confocal laser endoscopy for diagnosing intraepithelial neoplasias and colorectal cancer in vivo. Gastroenterology. 2004;127:706–713.
- Kiesslich R., Gossner L., Goetz M., et al. In vivo histology of Barrett’s esophagus and associated neoplasia by confocal laser endomicroscopy. Clin Gastroenterol Hepatol. 2006;4:979–987.
- Thiberville L., Moreno-Swirc S., Vercauteren T., Peltier E., Cave C., Bourg Heckly G. In vivo imaging of the bronchial wall microstructure using fibered confocal fluorescence microscopy. Am. J Respir Crit Care Med. 2007;175:22–31.
- Thiberville L., Salaun M., Lachkar S., et al. Human in vivo fluorescence microimaging of the alveolar ducts and sacs during bronchoscopy. Eur Respir J. 2009; 33:974–985.
- Wang T.D., Friedland S., Sahbaie P., et al. Functional imaging of colonic mucosa with a fibered confocal microscope for real-time in vivo pathology. Clin Gastroenterol Hepatol. 2007;5:1300–1305.
- Sonn G.A. Mach K.E., Jensen K., et al. Fibered confocal microscopy of bladder tumors: An ex vivo study. J Endourol. 2009;23:197–201.
- Sonn G.A., Jones S.N., Tarin T.V., Du C.B., Mach K.E., Jensen K., Liao J.C. Optical biopsy of human bladder neoplasia with in vivo confocal laser endomicroscopy. J Urol. 2009;182:1299–1305.
- Yannuzi L.A., Rohrer K.T., Tindel L.J., Sobel R.S., Costanza M.A., Shields W., Zang E. Fluorescein angiography complication survey. Ophthalmology. 1986;93:611–617.
- Dong Y.Y., Li Y.Q., Yu Y.B., Liu J., Li M., Luan X.R. Meta-analysis of confocal laser endomicros - copy for the detection of colorectal neoplasia. Colorectal Dis. 2013;15(9):e488–495.
- Adams W., Wu K., Liu J.-J., Hsiao S.T., Jensen K.C., Liao J.C. Comparison of 2.6mm and 1.4mm imaging probes for confocal laser endomicroscopy of the urinary tract. J Endourol. 2011;25(6):917–921.
- Wu K., Liu J.J., Adams W. et al: Dynamic real-time microscopy of the urinary tract using confocal laser endomicroscopy. Urology. 2011;78:225.
- Chang T.C. et al. Interobserver agreement of confocal laserendomicroscopy for bladder cancer. J Endourol. 2013; 27:598–603.
- Marien A., Bonnal J.L. et al. Urothelial Tumors and Dual-Band Imaging: A New Concept in Confocal Laser Endomicroscopy. J Endourol. 2017;31(5):538–544.
Дополнительные файлы
