Что скрывается под маской бактериального вагиноза?
- Авторы: Афанасьева И.Г1, Малова И.О1
-
Учреждения:
- Иркутский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 28, № 8 (2021)
- Страницы: 104-111
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/2073-4034/article/view/313213
- DOI: https://doi.org/10.18565/pharmateca.2021.8.104-111
- ID: 313213
Цитировать
Полный текст
![Открытый доступ](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_open.png)
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_unlock.png)
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Аннотация
Обоснование. Еще совсем недавно бактериальный вагиноз (БВ) считали «легким» заболеванием, протекающим как изолированный процесс в организме женщины. Однако в последние годы доказано развитие многочисленных и серьезных осложнений, в т.ч. увеличение риска заражения инфекциями, передаваемыми половым путем (ИППП). Цель исследования: оценка встречаемости ИППП у женщин репродуктивного возраста с бессимптомно протекающим БВ, проходящих медицинский профилактический осмотр (группа низкого риска по ИППП). Методы. В ретроспективном поперечном исследовании оценивалась взаимосвязь бессимптомного БВ и безусловных патогенов урогенитального тракта. В исследование включены 115 пациенток репродуктивного возраста с клинически и лабораторно подтвержденным бессимптомным БВ, обратившихся на медицинский осмотр и не имевших жалоб; средний возраст - 28,7±6,1 года. Перед включением в исследование всем пациенткам выполнены микроскопическое исследование отделяемого из влагалища, цервикального канала, уретры; пробы из цервикального канала на репродуктивно значимые инфекции методом амплификации нуклеиновых кислот; количественная оценка условно-патогенной микробиоты методом ПЦР в режиме реального времени с диагностической системой «Фемофлор-16». Результаты. Облигатные патогены у женщин с бессимптомным БВ были обнаружены в 53 (46,1%) случаях, в т.ч. Human раріllота virus - у 25, Chlamydia trachomatis - у 20, Mycoplasma genitalium - у 18, Trichomonas vaginalis - у 5, Neisseria gonorrhoeae -у 2. Проведено сравнение микробиоценоза влагалища в зависимости от выявленных ИППП. Установлено значимое снижение количества лактобацилл на фоне избыточного роста анаэробной микробиоты во всех группах. Выявлены совпадения биотопов в группах по одному микроорганизму и более. Заключение. Результаты настоящего исследования подтверждают, что женщины репродуктивного возраста с бессимптомным БВ, проходящие медицинский осмотр, нуждаются в дополнительном обследовании на наличие облигатных патогенов. Это будет важной стратегией для улучшения контроля над ИППП.
Ключевые слова
Полный текст
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Об авторах
И. Г Афанасьева
Иркутский государственный медицинский университет
Email: irishaaf@yandex.ru
к.м.н., доцент кафедры дерматовенерологии и косметологии Иркутск, Россия
И. О Малова
Иркутский государственный медицинский университетКафедра дерматовенерологии и косметологии Иркутск, Россия
Список литературы
- Кира Е.Ф. Бактериальный вагиноз. М.: 2012
- Kenyon C., Colebunders R., Crucitti T The global epidemiology of bacterial vaginosis: a systematic review. Am J Obstet & Gynecol. 2013;209(6):50523. doi: 10.1016/j.ajog.2013.05.006
- Donders G.G., Zodzika J, Rezeberga D. Treatment of bacterial vaginosis: what we have and what we miss. Expert Opin Pharmacother. 2014;15(5):645-57. doi: 10.1517/14656566.2014.881800
- Srinivasan S., Morgan M.T., Fiedler T.L, et al. Metabolic signatures of bacterial vaginosis mBio. 2015;6(2):e00204-15. Doi: 10.1128/ mBio.00204-15.
- Schwebke J.R., Muzny C.A., Josey W.E. Role of Gardnerella vaginalis in the pathogenesis of bacterial vaginosis: a conceptual model. J Infect Dis. 2014;210(3):338-43. doi: 10.1093/infdis/ jiu089.
- Shipitsyna E., Krysanova A, Khayrullina G., et al. Quantitation of all Four Gardnerella vaginalis Clades Detects Abnormal Vaginal Microbiota Characteristic of Bacterial Vaginosis More Accurately than Putative G. vaginalis Sialidase A Gene Count. Mol Diagn Ther. 2019;23(1):139-47. doi: 10.1007/s40291-019-00382-5.
- Hickey R.J., Forney L.J. Gardnerella vaginalis does not always cause bacterial vaginosis. J Infect Dis. 2014;210(10):1682-83. doi: 10.1093/infdis/ jiu303.
- Jespers V., van de Wijgert J., Cools P., et al. The significance of Lactobacillus crispatus and L. vaginalis for vaginal health and the negative effect of recent sex: a cross-sectional descriptive study across groups of African women. BMC Infect Dis. 2015;15:115. doi: 10.1186/s12879-015- 0825-z.
- Santiago G.L., Tency I., Verstraeien H., et al. Longitudinal qPCR study of the dynamics of L. crispatus, L. iners, A. vaginae, (sialidase positive) G. vaginalis, and P bivia in the vagina. PLoS One. 2012;7(9):e45281. doi: 10.1371/journal. pone.0045281.
- Vaneechoutte M. Lactobacillus iners, the unusual suspect. Res Microbiol. 2017;168(9-10):826-836. doi: 10.1016/j.resmic.2017.09.003.
- Rampersaud R., Planet P.J., Randis T.M., et al. Inerolysin, a cholesterol-dependent cytolysin produced by Lactobacillus iners. J Bacteriol. 2011;193(5):1034-41. Doi: 10.1128/ JB.00694-10.
- Tachedjian G., Aldunate M., Bradshaw C.S., et al. The role of lactic acid production by probiotic Lactobacillus species in vaginal health. Res Microbiol. 2017;168(9-10):782-92. doi: 10.1016/j.resmic.2017.04.001.
- Kashet E.R. Bioenergetics of lactic acid bacteria: cytoplasmic pH and osmotolerance. FEMS Microbiol Lett. 1987;46:233-44.
- Alakomi H.L., Skyttä E., Saarela M., et al. Lactic acid permeabilizes gram-negative bacteria by disrupting the outer membrane. Appl Environ Microbiol. 2000;66(5):2001-5. Doi: 10.1128/ aem.66.5.2001-2005.2000.
- van de Wijgert J.H., Borgdorff H., Verhelst R., et al. The vaginal microbiota: what have we learned after a decade of molecular characterization? PLoS One. 2014;9(8):e105998. doi: 10.1371/journal. pone.0105998.
- Nardini P., Nahui Palomino R.A., Parolin C., et al. Lactobacillus crispatus inhibits the infectivity of Chlamydia trachomatis elementary bodies, in vitro study. Sci Rep. 2016;6:29024. Doi: 10.1038/ srep29024.
- Breshears L.M., Edwards V.L., Ravel J., et al. Lactobacillus crispatus inhibits growth of Gardnerella vaginalis and Neisseria gonorrhoeae on a porcine vaginal mucosa model. BMC Microbiol. 2015;15:276. doi: 10.1186/s12866- 015-0608-0.
- Sobel J.D. Bacterial vaginosis. Annu Rev Med. 2000;51:349-56. doi: 10.1146/annurev. med.51.1.349.
- Shipitsyna E., Khusnutdinova T., Budilovskaya O., et al. Bacterial vaginosis-associated vaginal microbiota is an age-independent risk factor for Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium and Trichomonas vaginalis infections in low-risk women, St. Petersburg, Russia. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2020;39(7):1221-30. Doi: 10.1007/ s10096-020-03831-w.
- Brotman R.M., Klebanoff M.A., Nansel T.R., et al. Bacterial vaginosis assessed by gram stain and diminished colonization resistance to incident gonococcal, chlamydial, and trichomonal genital infection. J Infect Dis. 2010;202(12):1907-15. Doi: 10. 1086/657320.
- Wurapa E., Sateren W.B., Morris S., et al. Bacterial vaginosis: a synthesis of the literature on etiology, prevalence, risk factors, and relationship with chlamydia and gonorrhea infections. Mil Med Res. 2016;3:4. doi: 10.1186/s40779-016-0074-5.
- Cerca N., Vaneechoutte M., Guschin A., et al. Polymicrobial infections and biofilms in women's health: Gahro Expert Group Meeting Report. Res Microbiol. 2017;168(9-10):902-4. doi: 10.1016/j.resmic.2017.07.002.
- Swidsinski A., Loening-Baucke V., Mendling W., et al. Infection through structured polymicrobial Gardnerella biofilms (StPM-GB). Histol Histopathol 2014;29:567-87. Doi: 10.14670/ HH-29.10.567.
- Kenyon C.R, Delva W., Brotman R.M. Differential sexual network connectivity offers a parsimonious explanation for population-level variations in the prevalence of bacterial vaginosis: a data-driven, model-supported hypothesis. BMC Womens Health. 2019;19(1):8. doi: 10.1186/s12905- 018-0703-0.
- Bautista C.T., Wurapa E., Sateren W.B., et al. Bacterial vaginosis: a synthesis of the literature on etiology, prevalence, risk factors, and relationship with chlamydia and gonorrhea infections. Mil Med Res. 2016;3:4. doi: 10.1186/s40779-016-0074-5.
- Swidsinski A., Mendling W., Loening-Baucke V., et al. Adherent biofilms in bacterial vaginosis. Obstet Gynecol. 2005;106(5 Pt 1):1013-23. doi: 10.1097/01.A0G.0000183594.45524.d2.
- Masson L., Barnabas S., Deese J., et al. Inflammatory cytokine biomarkers of asymptomatic sexually transmitted infections and vaginal dysbiosis: a multicentre validation study. Sex Transm Infect. 2019;95(1):5-12. doi: 10.1136/sextrans-2017-053506.
- Fichorova R., Fraga J., Rappelli P., Fiori PL. Trichomonas vaginalis infection in symbiosis with Trichomonasvirus and Mycoplasma. Res Microbiol. 2017;168(9-10):882-91. Doi: 10.1016/j. resmic.2017.03.005.
- Fettweis J.M., Serrano M.G., Huang B., et al. An emerging mycoplasma associated with trichomoniasis, vaginal infection and disease. PLoS One. 2014;9(10):e110943. Doi: 10.1371/ journal.pone.0110943.
- Martin D.H., Zozaya M., Lillis R.A., et al. Unique vaginal microbiota that includes an unknown Mycoplasma-like organism is associated with Trichomonas vaginalis infection. J Infect Dis. 2013;207(12):1922-31. doi: 10.1093/infdis/ jit100.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)