Современные представления об аутофагии в концепции преждевременного старения


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Давно признано, что скорость старения кожи определяется внутренними и внешними факторами, но только недавние достижения в геронтологии кожи помогли проанализировать молекулярные и клеточные процессы, лежащие в основе ее старения. Некоторые из процессов старения запускаются или усиливаются присутствием поврежденных молекул и органелл внутри клеток, и их обмен частично контролируется аутофагией. В данной статье мы рассмотрим вклад аутофагии в контроль преждевременного старения кожи. Мы предлагаем концепцию, согласно которой старение обусловлено изменениями в трех категориях клеток с различной зависимостью от аутофагии. Современные протоколы терапии акне, розацеа и преждевременного старения должны быть основаны на последних научных патогенетических данных и включать инъекционные и аппаратные методы. Испытанный нами экспериментальный препарат определенно является процедурой выбора при подготовке к инвазивным методикам и в качестве инструмента активации аутофагии у пациентов косметологического профиля.

Ключевые слова

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Елена Владимировна Свечникова

Поликлиника № 1 УДП РФ; Новосибирский государственный медицинский университет

Email: elene-elene@bk.ru
д.м.н., зав. отделением дерматовенерологии и косметологии.; профессор кафедры дерматовенерологии и косметологии Москва, Россия; Новосибирск, Россия

В. В Ашапкин

Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова

НИИ физико-химической биологии им. А.Н. Белозерского Москва, Россия

М. А Моржанаева

Новосибирский государственный медицинский университет

Новосибирск, Россия

А. Г Дзукаев

Клиника Skin Expert

Москва, Россия

Список литературы

  1. Haruna K., Suga Y., Muramatsu S., et al. Differentiation-specific expression and localization of an autophagosomal marker protein (LC3) in human epidermal keratinocytes. J Dermatol Sci. 2008;52:213-15. doi: 10.1016/j.jdermsci.2008.07.005.
  2. Hohn A, Sittig A., Jung T., et al. Lipofuscin is formed independently of macroautophagy and lysosomal activity in stress-induced prematurely senescent human fibroblasts. Free Radic Biol Med. 2012;53:1760-69. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2012.08.591.
  3. Hansen M, Rubinsztein D.C., Walker D.W. Autophagy as a promoter of longevity: insights from model organisms. Nat Rev Mol Cell Biol. 2018;19:579-93. doi: 10.1038/s41580-018-0033-y.
  4. Teves J.M.Y., Bhargava V., Kirwan K.R., et al. Parkinson's disease skin fibroblasts display signature alterations in growth, redox homeostasis, mitochondrial function, and autophagy. Front Neurosci. 2018;11:737. doi: 10.3389/fnins.2017.00737.
  5. McGrath J.A. The structure and function of skin in Pathology of the Skin Eds. P.H. McKee, E. Calonje, S.R. Granter, T. Brann (St Louis, MO: Elsevier). 20051. 36p.
  6. Bruckner-Tuderman L. Biology of the extracellular matrix in Dermatology. Eds. J.L. Bolognia, J.L. Jorizzl, J.V. Schaffer (St. Louis, MO: Elsevier). 2012. Р 1585-98.
  7. McGlone F., Reilly D. The cutaneous sensory system. Neurosci Biobehav Rev. 2010;34:148-59. doi: 10.1016/j.neubiorev.2009.08.004.
  8. Hansen M., Rubinsztein D.C., Walker D.W. Autophagy as a promoter of longevity: insights from model organisms. Nat Rev Mol Cell Biol. 2018;27:805-6. doi: 10.1111/exd.13731.
  9. Guinot C., Malvy D.J., Ambroisine L., et al. Relative contribution of intrinsic vs extrinsic factors to skin aging as determined by a validated skin age score. Arch Dermatol. 2002;138:1454-60.
  10. Fernandez-Flores A., Saeb-Lima M., Cassarino D.S. Histopathology of aging of the hair follicle. J Cutan Pathol. 2019;46:508-19. doi: 10.1111/cup.13467.
  11. Dufour A, Candas V. Aging and thermal responses during passive heat exposure: sweating and sensory aspects. Eur J Appl Physiol. 2007;100:19-26. doi: 10.1007/s00421-007-0396-9.
  12. Kligman A.M., Balin A.K. Aging of human skin in Aging and the Skin. Eds. A.K. Balin, A.M. Kligman. New York, NY: Raven Press, 1989.
  13. Jonason A.S., Kunala S., Price G.J., et al. Frequent clones of p53-mutated keratinocytes in normal human skin. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 1996;93:14025-29. doi: 10.1073/pnas.93.24.14025.
  14. Eckhart L., Tschachler E., Gruber F. Autophagic control of skin aging. Front Cell Dev Biol. 2019;7:143. doi: 10.3389/fcell.2019.00143.
  15. Velarde M.C. Epidermal barrier protects against age-associated systemic inflammation. J Invest Dermatol. 2017;137:1206-208. doi: 10.1016/j.jid.2017.02.964.
  16. Sukseree S., Bergmann S., Pajdzik K., et al. Suppression of epithelial autophagy compromises the homeostasis of sweat glands during aging. J Invest Dermatol. 2018;138:2061-63. doi: 10.1016/j.jid.2018.03.1502.
  17. Garcia-Prat L., Martinez-Vicente M., Perdiguero E., et al. Autophagy maintains stemness by preventing senescence. Nature. 2016;529:37-42. doi: 10.1038/nature16187.
  18. Settembre C., Cinque L., Bartolomeo R., et al. Defective collagen proteostasis and matrix formation in the pathogenesis of lysosomal storage disorders. Matrix Biol. 2018;71-72:283-93. doi: 10.1016/j.matbio.2018.06.001.
  19. Velarde M.C. Epidermal barrier protects against age-associated systemic inflammation. J Invest Dermatol. 2017;137:1206-208. doi: 10.1016/j.jid.2017.02.964.
  20. Mahil S.K., Twelves S., Farkas K., et al. AP1S3 mutations cause skin autoinflammation by disrupting keratinocyte autophagy and up-regulating IL-36 production. J Invest Dermatol. 2016;136:2251-59. doi: 10.1016/j.jid.2016.06.618.
  21. Sukseree S., Mildner M., Rossiter H., et al. Autophagy in the thymic epithelium is dispensable for the development of self-tolerance in a novel mouse model. PLoS One. 2012;7:e38933. doi: 10.1371/journal.pone.0038933.
  22. Yaar M., Gilchrest B.A. Ageing and photoageing of keratinocytes and melanocytes. Clin Exp Dermatol. 2001;26:583-91. doi: 10.1046/j.1365-2230.2001.00895.x.
  23. Tobin D.J. Age-related hair pigment loss. Curr Probl Dermatol. 2015;47:128-38. doi: 10.1159/000369413.
  24. Damsky W.E., Bosenberg M. Melanocytic nevi and melanoma: unraveling a complex relationship. Oncogene. 2017;36:5771-92. doi: 10.1038/onc.2017.189.
  25. Mine S., Fortunel N.O., Pageon H., Asselineau D. Aging alters functionally human dermal papillary fibroblasts but not reticular fibroblasts: a new view of skin morphogenesis and aging. PLoS One. 2008;3:e4066. doi: 10.1371/journal.pone.0004066.
  26. Dumit V.I., Kuttner V., Kappler J., et al. Altered MCM protein levels and autophagic flux in aged and systemic sclerosis dermal fibroblasts. J Invest Dermatol. 2014;134:2321-30. doi: 10.1038/ jid.2014.69.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО «Бионика Медиа», 2022

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах