Реабилитация пациентов с фиброзным анкилозом проксимального межфалангового сустава


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В лечении пациентов с фиброзными анкилозами проксимального межфалангового сустава широко используется метод дистракции, когда на первом этапе осуществляется наложение чрескостного аппарата, а затем после его снятия выполняется артропластика. Применение дистракционного метода с последующей артропластикой «в чистом виде» не решает в полной мере проблему восстановления функции в проксимальном межфаланговом суставе. Предложена новая технология лечения фиброзных анкилозов проксимальных межфаланговых суставов, сочетающая методы дистракции, артропластики, клеточной терапии и «агрессивной» реабилитации. Цель нашей работы - обоснование применения реабилитационных технологий у пациентов с фиброзными анкилозами проксимальных межфаланговых суставов кисти, в лечении которых применялись стандартные хирургические методы в сочетании с применением культуры мультипотентных мезенхимальных стволовых клеток (ММСК) жировой ткани. Предложена технология лечения больных с фиброзными анкилозами проксимального межфалангового сустава, включающая несколько этапов. На первом этапе осуществляется забор жировой ткани у пациента. На втором - наложение дистракционного аппарата «Ellis Mini-Fixateur». Темп дистракции в аппарате составлял 0,5 мм в сутки. На третьем этапе выполняли снятие аппарата с одновременной артропластикой и введением в полость сустава культуры ММСК. Четвертый этап - послеоперационная реабилитация с проведением курса магнитотерапии, ультразвука и индивидуальной лечебной гимнастики. Воздействие этих факторов не оказывает цитотоксического эффекта на ММСК жировой ткани, не влияет на иммунофенотип, жизнеспособность, пролиферативную и секреторную активность клеток. Применение предлагаемой технологии у трех пациентов с фиброзными анкилозами проксимальных межфаланговых суставов пальцев кисти показало отсутствие потери активных движений в суставе спустя два месяца после вмешательства.

Полный текст

Успех реабилитации пациентов с посттравматиче-скими деформациями кисти, фиброзными анкилозами проксимального межфалангового сустава зависит не только от применяемой (пусть самой инновационной!) технологии оперативного вмешательства, но и от проводимого в послеоперационном периоде восстановительного лечения. В настоящее время широко используется метод дистракции, когда на первом этапе осуществляется наложение чрескостного аппарата, а затем после его снятия выполняется артропластика. Применение дистракционного метода с последующей артропластикой «в чистом виде» не решает в полной мере проблему восстановления функции в проксимальном межфаланговом суставе, что в первую очередь связано с состоянием суставного хряща, а также сухожильно-капсульного аппарата. По нашему мнению, огромную роль в статистике неудовлетворительных исходов играет отсутствие в послеоперационном периоде полноценных реабилитационных мероприятий. Все это определило необходимость разработки новой технологии лечения фиброзных анкилозов проксимальных меж-фаланговых суставов, сочетающей в себе методы дистракции, артропластики, клеточной терапии и «агрессивной» реабилитации. Цель нашей работы - обоснование применения реабилитационных технологий у пациентов с фиброзными анкилозами проксимальных межфаланговых суставов кисти, в лечении которых применялись стандартные хирургические методы в сочетании с применением культуры мультипотентных мезенхимальных стволовых клеток (ММСК) жировой ткани. Материал и методы. Нами проанализированы результаты лечения 46 пациентов (16 женщин и 30 мужчин), оперированных по поводу фиброзного анкилоза проксимального межфалангового сустава (средний возраст - 37,4±0,1 лет). Все пациенты были прооперированы, оперативное лечение проводилось в два этапа. На первом этапе накладывали чрескостный аппарат и в течение 6-8 недель осуществляли плавную дистракцию. При этом суставная щель расширялась до 10-12 мм, и палец выводился в функци онально выгодное положение. На втором этапе производили снятие чрескостного аппарата и мобилизацию сустава. На операционном столе у всех больных восстановлен полный объем пассивных движений в суставе. Каждый пациент дал добровольное информированное согласие на участие в исследовании, протокол которого был утвержден локальным этическим комитетом (протокол № 6 от 14.04.2015 года) и Ученым советом ФГБУ «ПФМИЦ» Минздрава России. Для обоснования возможности применения клеточных культур проведены микроморфологические и им-муногистохимические исследования капсул фиброзно-анкилозированных суставов. Морфометрический анализ микропрепаратов проводился в 10 полях зрения, х400. Состояние клеточной культуры в динамике оценивали с помощью инвертированного микроскопа «Leica DMI 3000B», оснащенного программой визуализации изображений. Концентрацию клеток, жизнеспособность и их фенотип определяли на цитофлюориметре Navios «Becman Coulter, USA», используя панель моноклональныех антител «Becman Coulter»: CD45 PC5, CD14 PC5, CD HLA-DR PC7, CD 34 PC7, CD 90 Fitc, CD 105 PE, CD 44 Fitc, CD 73 PE, CD 10 PC7, CD 13 PC5 с соответствующими изотипическими контролями. Состояние функции кисти оценивали, используя DASH-опросник и авторский опросник [1]. Для проверки выдвигаемых гипотез использовали методы непараметрической статистики. Уровень статистической значимости принят равным 0,05. Описание данных приведено средним и ошибкой среднего. Полученные результаты. До операции клиническое обследование показало практически полное отсутствие активных движений в пораженном суставе у всех больных, палец находился в порочном положении сгибания. На рентгенограммах фиброзноанкилозированных проксимальных межфа-ланговых суставов пальцев кисти (ФАПМС кисти) наблюдалось неравномерное сужение суставных щелей с узурацией суставных поверхностей. При исследовании гистотопографических срезов ФАПМС кисти выявлено почти полное заполнение суставной полости плотной Технологии восстановительной медицины и медицинской реабилитации 17 Вестник восстановительной медицины №4 ^2017 соединительной тканью с неупорядоченным расположением коллапеновых волокон и клеток, мозаичное отсутствие пиалиновопо хряща на эпифизах костей и дистрофические изменения оставшихся островков пиалиновопо хряща (рис.1). Рис. 1. Микропрепарат капсулы фиброзноанкилози-рованного сустава до дистракции (ув.х400): неравномерно клеточные участки плотной волокнистой соединительной ткани с разнонаправленным расположением коллагеновыхволокон, очагами гиалиноза, немногочисленными фиброцитами, фибробластами, тучными клетками и редко расположенными мелкими сосудами. Постепенно дистрапируемые патолопически измененные ткани суставной капсулы приобретают новые биолопические свойства, повышающие их жизнеспособность и устойчивость к действию внешних повреждающих факторов [2]. Фактически происходит адаптация тканей к воздействию вектора поля механическопо напряжения: повышается васкуляризация, увеличивается количество клеток фибробластическопо ряда, стимулируется мипрация из своих тканевых ниш в дис-трапированную капсулу клеток, маркируемых анитела-ми CD 117 (тучные клетки и стволовые мезенхимальные клетки) - рис.2. Рис. 1. Микропрепарат капсулы фиброзноанкилозиро-ванного сустава после дистракции (ув.х400): упорядоченное расположение коллагеновых волокон с заметным возрастанием клеток фибробластического ряда и новообразованных сосудов капиллярного типа, значительный рост числа тучных клеток. Выявленный структурный феномен увеличения популяции тучных и стволовых мезенхимальных клеток в ткани дистрапированной капсулы дал нам основание предположить, что экзопенное увеличение количества ММСК в мяпком остове патолопически измененнопо сустава блапоприятно скажется на адаптационной перестройке аутолопичных ММСК в пораженном суставе. ММСК жировой ткани, введенные в полость сустава после окончания дистракции на этапе артропластики, по нашему мнению, мопут служить не только механическим лубрикантом, облепчающим движения, но и мощным катализатором репаративных процессов. Предложенная нами технолопия лечения больных с фиброзными анкилозами проксимальнопо межфаланповопо сустава включает несколько этапов. Первый этап - подпото-вительный или предоперационной подпотовки. Епо важным элементом является достижение комплаентности между врачом и пациентом. Врач должен учитывать планы и желания пациента, донести до непо всю важность реализации разработанной пропраммы лечения, информировать о сроках лечения, возможных осложнениях, о необходимости выполнения активных реабилитационных мероприятий в послеоперационном периоде. «Это моя кисть, и только я смопу заставить её работать» - должно стать девизом. В этом периоде при наличии отека сустава, ран на пальце назначается соответствующая физиотерапия (фототерапия лампой «Биоптрон», лазеротерапия, токи высокой частоты и т.д.). На данном этапе производился забор жировой ткани у пациента в объеме 1-2,0 см3 подкожно-жировой клетчатки, взятой с предплечья. Жировая ткань в условиях куль-туральнопо бокса в ламинаре мнопократно промывалась в растворе Хенкса с антибиотиками (пенициллин/стрептомицин). С помощью механической дезапрепации и тепловой ферментативной обработки выделяли клетки стро-мально-васкулярной фракции. Далее клетки культивировали на пластике Costar в СО2 инкубаторе при температуре 37°С в ростковой среде а-МЕМ. После формирования субконфлюэнтнопо монослоя 50-60% выполняли первое пассирование культуры и выращивали до 3-4 пассажа, на котором определяли фенотип клеток. Фенотип клеток соответствовал типичному фенотипу ММСК: CD 90+, CD 105+, CD 73+, CD 44+, CD 10+, CD 13+, CD 45-, CD 34-, CD 14-, CD HLA-DR-, что подтверждало возможность их использования для клинических целей. Жизнеспособность клеток составила 98%. На основании полученных данных составляли паспорт культуры, которая проверялась на стерильность и контаминацию микоплазмами и вирусами. Клетки трижды отмывали от среды и в стерильном физио-лопическом растворе с добавлением 10 % аутолопичной сыворотки передавали в операционную в день операции. На втором этапе осуществлялось наложение дис-тракционнопо аппарата «Ellis Mini-Fixateur». Темп дистракции в аппарате составлял 0,5 мм в сутки. Общая продолжительность дистракции - 49,6±0,1 дней. Третьим этапом выполняли снятие аппарата с одновременной артропластикой суставных поверхностей. После демонтажа конструкции по нейтральной линии в проекции дистрапированной щели проксимальнопо межфаланповопо сустава производили V-образный разрез с длиной плеча 5 мм. С помощью радиоскальпеля производили коррипирующую остеотомию внутрису-ставнопо костнопо дистракционнопо репенерата. Инсулиновым шприцом в полость сустава вводили 2,34*106/ мл аутолопичных мезенхимальных стволовых клеток в среде (pH-7,2) объемом 1,0 мл. После введения клеток в полость сустава рана наплухо зашивалась. На опера 18 Технологии восстановительной медицины и медицинской реабилитации Вестник восстановительной медицины № 4^2017 ционном столе у всех больных восстановлен полный объем пассивных движений в суставе. Четвертый, заключительный этап - послеоперационная реабилитация. Выявленная нами ранее во время предварительного анализа результатов лечения по традиционной технологии потеря активных движений после снятия дистракционного аппарата доказывает необходимость проведения в послеоперационном периоде интенсивного курса реабилитационных мероприятий. При контрольном осмотре 35 пациентов, лечившихся с использованием только традиционных технологий, установлено, что через три месяца после снятия аппарата ни у одного из них не было полного восстановления амплитуды активных движений в проксимальном межфа-ланговом суставе. Дефицит активного разгибания составлял в среднем 40,0±12,5°. Данные DASH-опросника (26,4±3,5 баллов) и нашего опросника (82,0±3,5 балла) свидетельствовали о положительной динамике, но не о полном восстановлении функции кисти. Технология артропластики с введением в полость сустава культуры живых клеток подразумевает определенные требования к выбору потенциальных физических факторов. Они должны воздействовать на уменьшение рубцово-спаечного процесса, уменьшение болевого синдрома, отека пальца, увеличение амплитуды движений. Влияние этих факторов не должно быть губительным для введенных в полость сустава клеток. В комплекс реабилитационных мероприятий мы включили магнитотерапию (бегущее импульсное магнитное поле от аппарата «Алмаг-01», ежедневно по 10 минут), ультразвук низкой интенсивности (портативный аппарат для комбинированной физиотерапии «Sonopuls-492 new» фирмы «Enraf Nonius», излучатель диаметром 0,8 см2, время воздействия - 5-8 минут). Выбор предложенных методов был основан на полученных нами результатах экспериментов in vitro по воздействию этих факторов на культуру ММСК жировой ткани. Было доказано, что воздействие магнитным полем в терапевтических дозировках не оказывает цитотокси-ческого эффекта на морфологию ММСК жировой ткани; не влияет на иммунофенотип, жизнеспособность, про-лиферативную и секреторную активность клеток культуры. Воздействие ультразвуком низкой интенсивности в терапевтических дозировках на культуру ММСК жировой ткани in vitro также не оказывало влияния на жизнеспособность, фенотип и морфологию ММСК в культуре. Под воздействием ультразвука, независимо от особенностей культуры ММСК и её генеза (пол, возраст донора, характера повреждающего фактора), отмечалась отчетливая тенденция к увеличению пролиферативной активности клеток и активации синтеза фибронектина [3, 4]. Полученные экспериментальные данные подтверждали безопасность воздействия этих факторов в физиотерапевтических дозах на сустав, в полость которого могут быть имплантированы ММСК. Аппаратура для проведения подобных процедур имеется в физиотерапевтических отделениях учреждений практического здравоохранения, а стоимость их невысока. Решающая роль в комплексе послеоперационной реабилитации принадлежит лечебной физкультуре в виде активных и пассивных упражнений для оперированного пальца. Лечебную физкультуру, равно, как и ультразвук, мы рассматривали как одни из действующих факторов поля механического напряжения, которые могут влиять на пролиферацию, миграцию и адгезию клеток [5]. Сгибание-разгибание (активное или пассивное) в проксимальном межфаланговом суставе можно условно рассматривать как действие помпы с меняющимся давлением в суставе (циклическая нагрузка). В эксперименте доказано, что циклические нагрузки могут стимулировать хондрогенную дифференцировку ММСК [6, 7, 8, 9, 10, 11]. Физиологические механизмы воздействия поля механического напряжения на клетки сложны и до конца не изучены. Установлено, что механическая нагрузка индуцирует синтез трансформирующего фактора роста (TGFß1, TGFß3), который может стимулировать ММСК к дифференцировке в хондроциты [12, 13, 14]. Под влиянием фактора роста активируются экспрессии индуцибельной простагландин-синтазы (Cox-2) и продукции простогландина Е2, что необходимо для перехода клеток из G1-фазы в S-фазу репликации ДНК и последующей активной пролиферации [15, 16]. Изменение под действием ультразвука и механической нагрузки уровня экспрессии матричной РНК (mRNA) маркеров генов специфических белков хондроцитов подтверждает переход клеток из одной фазы в другую [6, 17, 18]. Кроме того, увеличение продукции простогландина Е2 (PGE2) ведет к усилению микроциркуляции, за счет его сосудорасширяющего действия на большинство сосудов [19, 20]. Механическая нагрузка стойко модулирует экспрессию генов специфических белков хондроцитов [21, 22, 23]. Экспрессия под влиянием нагрузки генов протео-гликана 4 (PRG4) и гиалуронсинтаз (HAS1, HAS2) стимулирует синтез гиалуроновой кислоты, нормализует синовиальный гомеостаз [17]. Все эти процессы приводят к усиленной пролиферации клеток и, как следствие, стимуляции хондрогенеза. Таким образом, поле механического напряжения играет важную роль в репарации хрящевой ткани, и применение ультразвука и кинезотерапии после введения в сустав ММСК вполне оправдано. Применение предлагаемой нами технологии у трех пациентов с фиброзными анкилозами проксимальных межфаланговых суставов пальцев кисти показало обнадеживающие результаты. Ни у одного из оперированных больных спустя два месяца после вмешательства не было отмечено потери активных движений в суставе. Заключение. Применение дистракционного метода с последующей артропластикой «в чистом виде» не решает в полной мере проблему восстановления функции в проксимальном межфаланговом суставе. В этих целях весьма перспективным представляется введение в полость сустава на заключительном этапе артропластики мульти-потентных мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани, которые служат не только механическим лубри-кантом, облегчающим движения, но и мощным катализатором репаративных процессов. Для достижения хороших результатов лечения необходимо проведение в послеоперационном периоде реабилитационных мероприятий, включающих магнитотерапию, ультразвук, активные и пассивные упражнения для суставов пальцев, которые не оказывают отрицательного воздействия на культуру введенных клеток и стимулируют регенераторные процессы. Мы отдаем себе отчет в том, что наши результаты являются предварительными, сроки наблюдения за пациентами малы, но, тем не менее, даже они свидетельствуют о перспективности использования данной технологии и необходимости дальнейшего изучения проблемы применения клеточных культур в хирургии кисти. Технологии восстановительной медицины и медицинской реабилитации 19 Вестник восстановительной медицины №4 ^2017 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
×

Об авторах

А. В Новиков

ФГБУ «ПФМИЦ» Минздрава России

Email: novik2.55@inbox.ru
г.Нижний Новгород

М. А Щедрина

ФГБУ «ПФМИЦ» Минздрава России

г.Нижний Новгород

С. В Петров

ФГБУ «ПФМИЦ» Минздрава России

г.Нижний Новгород

Д. Я Алейник

ФГБУ «ПФМИЦ» Минздрава России

г.Нижний Новгород

Список литературы

  1. Новиков А.В., Белова А.Н., Щедрина М.А., Донченко Е.В. Опросник для оценки повседневной жизненной активности больных с патологией кисти // Вестник травматологии и ортопедии им.Н.Н. Приорова; 2004; №2:58-62.
  2. Бугров С.Н., Давыденко Д.В., Широкова Н.Ю., Новиков А.В., Петров С.В. Морфологическое обоснование дистракции как подготовительного этапа биоактивной артропластики межфалангового сустава кисти при фиброзном анкилозе //Вестник травматологии и ортопедии им.Приорова; 2016; №4: 34-39.
  3. Алейник Д.Я., Щедрина М.А., Новиков А.В., Петров С.В., Сидорова Т.И., Чарыкова И.Н., Рубцова Ю.П. Влияние бегущего импульсного магнитного поля и полихроматического некогерентного поляризованного света в физиотерапевтических дозировках на мультипотентные мезенхимальные стволовые клетки жировой ткани на модели in vitro //Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований; 2015; №12: 625-628.
  4. Алейник Д.Я., Щедрина М.А., Новиков А.В., Чарыкова И.Н., Рубцова Ю.П. Исследование воздействия ультразвука низкой интенсивности на ММСК человека в системе in vitro //Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований; 2016; № 11-5: 886-890.
  5. Hafsa M. The biophysical effects of low intensity ultrasound on the morphology, growth and differentiation potential of bone marrow-derived Mesenchymal stem cells //M.Res. thesis. - University of Birmingham, 2012. http://etheses.bham.ac.uk/information.html.
  6. Campbell J.J., Lee D.A., Bader D.L. Dynamic compressive strain influences chondrogenic gene expression in human mesenchymal stem cells // Biorheology; 2006; V.43 (3-4): 455-470.
  7. Miyanishi K., Trindade M.C., Lindsey D.P., Beaupre G.S., Carter D.R., Goodman S.B., Schurman D.J., Smith R.L. Dose- and time-dependent effects of cyclic hydrostatic pressure on transforming growth factor-beta3-induced chondrogenesis by adult human mesenchymal stem cells in vitro // Tissue Eng.; 2006; V.12(8): 2253-2262.
  8. Miyanishi K. Effects of hydrostatic pressure and transforming growth factor-beta 3 on adult human mesenchymal stem cell chondrogenesis in vitro// Tissue Eng.; 2006; V.12 (6): 1419-1428.
  9. Mouw J.K., Connelly J.T, Wilson C.G., Michael K.E., Levenston M.E. Dynamic compression regulates the expression and synthesis of chondrocytespecific matrix molecules in bone marrow stromal cells //Stem Cells; 2007; V.25 (3): 655-663.
  10. Terraciano V., Hwang N., Moroni L., Park H.B., Zhang Z., Mizrahi J., Seliktar D., Elisseeff J. Differential response of adult and embryonic mesenchymal progenitor cells to mechanical compression in hydrogels // Stem Cells; 2007; V.25 (11): 2730-2738.
  11. Bonzani I.C., Campbell J.J., Knight M.M., Williams A., Lee D.A., Bader D.L., Stevens M.M. Dynamic compressive strain influences chondrogenic gene expression in human periosteal cells: a case study // J. Mech. Behav. Biomed. Mater; 2012; N11: 72-81.
  12. Klein-Nulend J., Roelofsen J., Sterck J.G., Semens C.M., Burger E.H. Mechanical loading stimulates the release of transforming growth factor-beta activity by cultured mouse calvariae and periosteal cells // J. Cell Physiol.;1995; V.163 (1):115-119.
  13. Huang C.Y, Hagar K.L., Frost L.E., Sun Y, Cheung H.S. Effects of cyclic compressive loading on chondrogenesis of rabbit bone-marrow derived mesenchymal stem cells // Stem Cells.; 2004; V.22 (3): 313-323.
  14. LiZ.,KupcsikL.,YaoS.J.,AliniM.,StoddartM.J.MechanicalloadmodulateschondrogenesisofhumanmesenchymalstemcellsthroughtheTGF-betapathway// J. Cell Mol Med.; 2010; V.14 (6А):1338-1346.
  15. Hughes-Fulford M. Physiological effects of microgravity on osteoblast morphology and cell biology // Adv. Space Biol. Med.; 2002; N8:129-157.
  16. Dai Z.Q., Wang R., Ling S.K., Wan YM., Li YH. Simulated microgravity inhibits the proliferation and osteogenesis of rat bone marrow mesenchymal stem cells // Cell Prolif.; 2007; V.40 (5): 671-684.
  17. Li Z., Yao S., Alini M., Grad S. Different response of articular chondrocyte subpopulations to surface motion / //Osteoarthritis Cartilage; 2007; V.15 (9):1034-1041.
  18. Lim K., Kim J., Seonwoo H., Park S.H., Choung PH., Chung J.H. In vitro effects of low-intensity pulsed ultrasound stimulation on the osteogenic differentiation of human alveolar bone-derived mesenchymal stem cells for tooth tissue engineering // Biomed. Res. Int. - 2013. http://www.hindawi. com/journals/bmri/2013/269724.
  19. Буравкова Л.Б., Гершович П.М., Гершович Ю.Г, Григорьев А.И. Механизмы гравитационной чувствительности остеогенных клеток-предшественников //Acta naturae; 2010; Т.2 (1,4): 30-39.
  20. Searby N.D., Steele C.R., Globus R.K. Influence of increased mechanical loading by hypergravity on the microtubule cytoskeleton and prostaglandin E2 release in primary osteoblasts //Am. J. Physiol. Cell Physiol.; 2005; V.289 (1):148-158.
  21. Aigner T, Dudhia J. Phenotypic modulation of chondrocytes as a potential therapeutic target in osteoarthritis: a hypothesis //Ann. Rheum. Dis.; 1997; V.56 (5):287-291.
  22. Aigner T, Söder S., Gebhard P.M., McAlinden A., Haag J. Mechanisms of disease: role of chondrocytes in the pathogenesis of osteoarthritis - structure, chaos and senescence // Nat. Clin. Pract. Rheumatol.; 2007; V.3(N7): 287-291.
  23. Bobacz K., Erlacher L., Smolen J., Soleiman A., Graninger W.B. Chondrocyte number and proteoglycan synthesis in the aging and osteoarthritic human articular cartilage // Ann. Rheum. Dis.; 2004; V.63(12):1618-1622

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Новиков А.В., Щедрина М.А., Петров С.В., Алейник Д.Я., 2017

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах