ОПТИМИЗАЦИЯ МЕРОПРИЯТИЙ ПО ПРОФИЛАКТИКЕ СЕПТИЧЕСКИХ ОСЛОЖНЕНИЙ ИНФЕКЦИЙ, СВЯЗАННЫХ С ОКАЗАНИЕМ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ, НА ОСНОВЕ ПОИСКА БИОМАРКЕРОВ КЛЕТОК ИММУННОЙ СИСТЕМЫ


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Представлены подходы к разработке информативных биомаркеров фенотипа клеточной поверхности клеток системы врожденного иммунитета и их секретируемых продуктов для выявления групп больных с высоким риском опасных для жизни осложнений бактериальных и вирусных инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи — ИСМП (сепсис, синдром системного воспалительного ответа). Группы потенциальных биомаркеров, отобранных для исследований, включают маркеры клеток иммунной системы (HLA-DR, CD88, СD14, СD33), не относящихся к лимфоидному ряду (моноцитарные и миелоидные клетки). Предполагается, что количественное определение профиля биомаркеров (так называемый иммунофеном) поможет выявить больных с наибольшим риском развития тяжелых, жизнеугрожающих осложнений ИСМП. Результаты исследования могут быть положены в основу обоснования персонифицированного подхода для проведения дорогостоящих профилактических или ранних терапевтических мероприятий, направленных на снижение смертности от осложнений ИСМП (ВБИ).

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Алексей Викторович ТУТЕЛЬЯН

ФБУН Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора

Email: bio-tav@yandex.ru
д-р мед. наук, зав. лаб. внутрибольничных инфекций и эпидемиологического надзора 111123, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а

Владимир Митрофанович ПИСАРЕВ

ФБУН Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора; Медицинский центр университета Небраски

д-р мед. наук, проф., вед. науч. сотр. лаб. внутрибольничных инфекций и эпидемиологического надзора; адъюнкт-проф. Омаха, США

Василий Геннадьевич АКИМКИН

ФБУН НИИ дезинфектологии Роспотребнадзора

член-корр. РАМН, д-р мед. наук, проф., зам. директора по научной работе

Николай Иванович БРИКО

ГОУ ВПО Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова

акад. РАМН, д-р мед. наук, проф., зав. каф. эпидемиологии и доказательной медицины

Елена Борисовна БРУСИНА

ГОУ ВПО Кемеровская государственная медицинская академия

д-р мед. наук, проф., зав. каф. эпидемиологии

Людмила Павловна ЗУЕВА

ГОУ ВПО Санкт-Петербургская государственная медицинская академия им. И.И. Мечникова

акад. РАЕН, д-р мед. наук, проф., зав. каф. эпидемиологии с курсами эпидемиологии, паразитологии и хирургических инфекций

Валентин Иванович ПОКРОВСКИЙ

ФБУН Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора

акад. РАМН, д-р мед. наук, проф., дир.

Список литературы

  1. Liappis A.P., Gibbs K.W., Nylen E.S. Exogenous procalcitonin evokes a pro-inflammatory cytokine response. Inflamm. Res. 2011; 60(2): 203-207.
  2. Claus R.A., Otto G.P., Deigner H.P., Bauer M. Approaching clinical reality: markers for monitoring systemic inflammation and sepsis. Curr. Mol. Med. 2010; 10 (2): 227-235.
  3. Nguyen H.B., Loomba M., Yang J.J. et al. Early lactate clearance is associated with biomarkers of inflammation, coagulation, apoptosis, organ dysfunction and mortality in severe sepsis and septic shock. J. Inflamm. 2010; 7: 6-16.
  4. Gibot S., Massin F., Cravoisy A. et al. Highmobility group box 1 protein plasma concentrations during septicshock. Intensive Care Med. 2007; 33: 1347-1353.
  5. Suda K., Takeuchi H., Ishizaka A., Kitagawa Y. High-mobility-group box chromosomal protein 1 as a new target for modulating stress response. Surg. Today. 2010; 40 (7): 592-601.
  6. Phua J., Koay E.S., Lee K.H. Lactate, procalcitonin, and amino-terminal pro-B-type natriuretic peptide versus cytokine measurements and clinical severity scores for prognostication in septic shock. Shock 2008; 29: 328-333.
  7. Gori C.S., Magrini L., Travaglino F., Di Somma S. Role of biomarkers in patients with dyspnea. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2011; 15 (2): 229-240.
  8. Standage S.W., Wong H.R. Biomarkers for pediatric sepsis and septic shock. Expert Rev. Anti Infect. Ther. 2011; 9 (1): 71-79.
  9. Reinhart K., Hartog C.S. Biomarkers as a guide for antimicrobial therapy. Int. J. Antimicrob. Agents 2010; 36 (Suppl 2): S17-S21.
  10. Pierrakos C., Vincent J.L. Sepsis biomarkers: a review. Crit Care 2010; 14 (1): R15.
  11. Mancini N., Carletti S., Ghidoli N. The era of molecular and other non-culture-based methods in diagnosis of sepsis. Clin. Microbiol. Rev. 2010 ; 23 (1): 235-251.
  12. Nupponen I., Andersson S., Jarvenpaa A.L. et al. Neutrophil CD11b expression and circulating interleukin-8 as diagnostic markers for early-onset neonatal sepsis. Pediatrics 2001; 108: E12.
  13. Nuutila J., Hohenthal U., Laitinen I. et al. Simultaneous quantitative analysis of FcgammaRI (CD64) expression on neutrophils and monocytes: a new, improved way to detect infections. J. Immunol. Methods 2007; 328: 189-200.
  14. Nuutila J. The novel applications of the quantitative analysis of neutrophil cell surface FcgammaRI (CD64) to the diagnosis of infectious and inflammatory diseases. Curr. Opin. Infect. Dis. 2010; 23( 3): 268-274.
  15. Cid J., Garcia-Pardo G., Aguinaco R et al. Neutrophil CD64: diagnostic accuracy and prognostic value in patients presenting to the emergency department. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2011; 20: 178-182.
  16. Chéron A., Monneret G., Landelle C. et al. Low monocytic HLA-DR expression and risk of secondary infection. Ann. Fr. Anesth. Reanim. 2010; 29 (5): 368-376.
  17. Cheron A., Floccard B., Allaouchiche B. et al. Lack of recovery in monocyte human leukocyte antigen-DR expression is independently associated with the development of sepsis after major trauma. Crit. Care 2010; 14 (6): R208.
  18. Strohmeyer J.C., Blume C., Meisel C. et al. Standardized immune monitoring for the prediction of infections after cardiopulmonary bypass surgery in risk patients. Cytometry B Clin. Cytom. 2003; 53 (1): 54-62.
  19. Huber-Lang M., Sarma J. V., Rittirsch D. et al. Changes in the novel orphan, C5a receptor (C5L2), during experimental sepsis and sepsis in humans. J. Immunol. 2005; 174: 1104-1110.
  20. Ward P.A. The harmful role of c5a on innate immunity in sepsis. J. Innate Immun. 2010; 2 (5): 439-445.
  21. Schaaf B., Luitjens K., Goldmann T. et al. Mortality in human sepsis is associated with downregulation of Toll-like receptor 2 and CD14 expression on blood monocytes. Diagn. Pathol. 2009; 16 (4): 12.
  22. Guignant C., Lepape A., Huang X. et al. Programmed death-1 levels correlate with increased mortality, nosocomial infection and immune dysfunctions in septic shock patients. Crit. Care. 2011; 15 (2): R99.
  23. Maghraby S.M., Moneer M.M., Ismail M.M. et al. The diagnostic value of C-reactive protein, interleukin-8, and monocyte chemo tactic protein in risk stratification of febrile neutropenic children with hematologic malignancies. J. Pediatr. Hematol. Oncol. 2007; 29: 131-136.
  24. Fujishima S., Sasaki J., Shinozawa Y. et al. Serum MIP-1 alpha and IL-8 in septic patients. Intensive Care Med. 1996; 22: 1169-1175.
  25. Heper Y., Akalin E.H., Mistik R. et al. Evaluation of serum C-reactive protein, procalcitonin, tumor necrosis factor alpha, and interleukin-10 levels as diagnostic and prognostic parameters in patients with community-acquired sepsis, severe sepsis, and septic shock. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2006; 25: 481-491.
  26. Wang C.H., Gee M.J., Yang C., Su Y.C. A new model for outcome prediction in intra-abdominal sepsis by the linear discriminant function analysis of IL-6 and IL-10 at different heart rates. J. Surg. Res. 2006; 132: 46-51.
  27. Marchant A., Alegre M.L., Hakim A. et al. Clinical and biological significance of interleukin-10 plasma levels in patients with septic shock. J. Clin. Immunol. 1995; 15: 266-273.
  28. Pinsky M.R., Vincent J.L., Deviere J. et al. Serum cytokine levels in human septic shock. Relation to multiple-system organ failure and mortality. Chest 1993; 103: 565-575.
  29. Sherwin C., Broadbent R., Young S. Utility of interleukin-12 and interleukin-10 in comparison with other cytokines and acute-phase reactants in the diagnosis of neonatal sepsis. Am. J. Perinatol. 2008; 25: 629-636.
  30. Ng P.C., Li K., Leung T.F. et al. Early prediction of sepsis-induced disseminated intravascular coagulation with interleukin-10, interleukin-6, and RANTES in preterm infants. Clin. Chem. 2006; 52 (6): 1181-1189.
  31. Ng P.C., Li K., Chui K.M. et al. IP-10 is an early diagnostic marker for identification of late-onset bacterial infection in preterm infants. Pediatr. Res. 2007; 61: 93-98.
  32. Fotopoulos S., Mouchtouri A., Xanthou G. et al. Inflammatory chemokine expression in the peripheral blood of neonates with perinatal asphyxia and perinatal or nosocomial infections. Acta Paediatr. 2005; 94 (6): 800-806.
  33. Gibot S., Cravoisy A., Dupays R. Combined measurement of procalcitonin and soluble TREM-1 in the diagnosis of nosocomial sepsis. Scand. J. Infect. Dis. 2007; 39 (6-7): 604-608.
  34. Rintala E.M., Aittoniemi J., Laine S. et al. Early identification of bacteremia by biochemical markers of systemic inflammation. Scand. J. Clin. Lab. Invest. 20014 61: 523-530.
  35. Saukkonen K., Lakkisto P., Pettilä V. et al. Cell-free plasma DNA as a predictor of outcome in severe sepsis and septic shock. Clin Chem. 2008; 54 (6): 1000-1007.
  36. Saukkonen K., Lakkisto P., Varpula M. et al. Association of cell-free plasma DNA with hospital mortality and organ dysfunction in intensive care unit patients. Intensive Care Med. 2007; 33 (9): 1624-1627.
  37. Rhodes A., Wort S.J., Thomas H. et al. Plasma DNA concentration as a predictor of mortality and sepsis in critically ill patients. Crit. Care. 2006; 10 (2): R60.
  38. Сепсис: классификация, клинико-диагностическая концепция и лечение: Практич. руководство / Под ред. В.С. Савельева, Б.Р. Гельфанда. М.: Медицинское информационное агентство, 2010.
  39. Аджамов Б.М. Роль прокальцитонина в определении вида возбудителя инфекционного процесса. Инфекции в хирургии 2010; 8 (3) 5-8.
  40. Тест на прокальцитонин: алгоритмы применения и новые возможности / Под ред. Н.В. Белобородова, Д.А. Попова. М., 2008.
  41. Rosenthal V.D., Maki D.G., Rodrigues C. et al. International nosocomial infection control consortium investigators. Impact of international nosocomial infection control consortium (INICC) strategy on central line-associated bloodstream infection rates in the intensive care units of 15 developing countries. Infect. Control Hosp. Epidemiol. 2010; 31 (12): 1264-1272.
  42. Nobre V., Harbarth S., Graf J.D. et al. Use of procalcitonin to shorten antibiotic treatment duration in septic patients: a randomized trial. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2008; 177: 498-505.
  43. Briel M., Schuetz P., Mueller B. et al. Procalcitonin-guided antibiotic use vs a standard approach for acute respiratory tract infections in primary care. Arch. Int. Med. 2008; 168: 2000-2007.
  44. Zakariah A.N., Cozzi S.M., Van Nuffelen M. Combination of biphasic transmittance waveform with blood procalcitonin levels for diagnosis of sepsis in acutely ill patients. Crit. Care Med. 2008; 36 (5): 1507-1512.
  45. Deitcher S.R., Eisenberg P.R. Elevated concentrations of crosslinked fibrin degradation products in plasma. An early marker of gram-negative bacteremia. Chest 1993; 103 (4): 1107-1112.
  46. Lehmann L.E., Book M., Hartmann W. et al. A MIF haplotype is associated with the outcome of patients with severe sepsis: a case control study. J. Trans. Med. 2009; 26 (7): 100.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2012

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах