Разработка оптимального состава защитных сред для лиофилизации референтного штамма Yersinia pestis EV и его генетически измененных вариантов, несущих в геноме детерминанты устойчивости к антибактериальным средствам
- Авторы: Лопатина Н.В.1
-
Учреждения:
- Ростовский-на-Дону государственный медицинский университет Минздрава России
- Выпуск: Том 11, № 2 (2021)
- Страницы: 89-93
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/2226-6976/article/view/287749
- DOI: https://doi.org/10.18565/epidem.2021.11.2.89-93
- ID: 287749
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Цели исследования. Разработка оптимального состава защитных сред для лиофилизации референтного штамма Yersinia pestis EV линии НИИЭГ и его генетически сконструированных вариантов Y. pestis EVA и Y. pestis EV76R16 соответственно с хромосомной и плазмидной устойчивостью к антибиотикам. Материалы и методы. Оптимизацию количественных соотношений компонентов защитных сред на основе стандартной сахарозо-желатиновой среды с тиомочевинной (СЖТ) проводили с использованием методов математического планирования эксперимента (ПФЭ 23) и (ПФЭ 2*). Расчет осуществляли по лицензированной программе случайных чисел - методом Монте-Карло. Результаты экспериментальных исследований, проведенных по предложенной матрице, были использованы для построения математических моделей процессов оптимизации защитных сред. На основе полученных моделей, построенных для каждого из взятых в опыт штаммов Yersinia pestis EV НИИЭГ, Y. pestis EVA и Y. pestis EV76R16 без проведения натурных экспериментов, виртуально рассчитаны оптимальные количественные соотношения компонентов защитных сред. Проверку эффективности разработанных сред проводили опытным путем. Результаты. Протективные свойства полученных защитных сред в результате сбалансированного количественного подхода были повышены для референтного штамма в 2раза, для штамма EV76R16 - в 1,5раза, для Y. pestis EVA - в 3 раза в сравнении с контрольной средой СЖТ. Заключение. Применение методов математического планирования эксперимента позволило скорректировать количественный состав защитных сред для каждого из 3 взятых в опыт штаммов, сократив время проведения опыта и снизив материальные затраты по амортизации применяемого оборудования.
Полный текст

Об авторах
Наталья Викторовна Лопатина
Ростовский-на-Дону государственный медицинский университет Минздрава России
Email: natalija.kozhanova2016@yandex.ru
к.м.н., ассистент кафедры гигиены
Список литературы
- Будыка Д.А., Абзаева Н.В., Гостищева С.Е., Ракитина Е.Л., Иванова Г.Ф., Фисун А.А. Биотехнология стабилизации живых микроорганизмов в биомассе и в препарате чумной вакцины. Инфекция и иммунитет 2016; 1(6): 87-92
- Будыка Д.А., Фисун А.А., Ракитина Е.Л., Абзаева Н.В. Изучение в эксперименте иммунологической активности вакцины чумной живой, подвергнутой воздействию экстремальной температуры. Эпидемиология и вакцинопрофилактика 2015; 4(14): 74-9
- Лисенков А.Н., Чумаков M.R Mиронова А.Л. Системный подход к статистическому анализу и оптимизации процессов биотехнологического производства вакцин. Биотехнология 1990; (6): 77-81
- Лисенков А.Н. Планирование эксперимента. Mатериалы семинара MДНТП им. Дзержинского. M., 1990: 34-43
- Лопатина Н.В., Янгулов Ш.Х., Mихайлова Н.Н., Наталич Л.А. Оптимизация защитной среды для лиофилизации вакцинного штамма чумного микроба. Проблемы особо опасных инфекций 1995: 4(47): 122-8.
- Лопатина Н.В., Наталич Л.А. Использование метода математического планирования эксперимента при лиофилизации вакцинного штамма чумного микроба, несущего в геноме детерминанты устойчивости к антибактериальным средствам. Биотехнология 1994; (3): 34-6
- Швецов С.А., Черкасов Н.А., Ежов А.В., Багин С.В., Тетерин В.В., Мохов Д.А. Математическое моделирование процесса приготовления таблетированной формы живой сухой чумной вакцины. Биомедицина 2010; (1): 64-71
- Лещенко А.А., Швецов С.А., Кругин В.В., Багин С.В., Ежов А.В., ЛазукинА.Г., Логвинов С.В., Мохов Д.А., Бирюков В.В., Зиганшин А.Р. Математическая модель процесса лиофилизации в технологии вакцины чумной живой. Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова 2017; 3(13): 21-5
- Котлов С.А. Оптимизация криопротекторов для лиофилизации вакцинных штаммов Salmonella. Биологический журнал: Эл. научный журнал. 2019; 5(15). https//био-j.ru/5/124. doi: 10.32743/2658-6460.2019.5/5/124
- Комиссаров А.В., Бибиков Д.Н., Волох О.А.,Базарин С.А., Синицина Н.В., Костылева Н.И., Германчук В.Г., Никифоров А.К. Лиофилизация живых вакцин. Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Овчинникова 2018; 3(14): 56-73
- Голякевич З.С., Калдыркаев А.И., Феоктистова Н.А. Влияние защитных сред на выживаемость штаммов бактерий при лиофилизации. https://Scienceforum/ru.2017/article/ 2017036595
- Рыжко И.В., Цураева Р.И., Молдаван И.Ф. Щербанюк А.И., Шутько А.Г. Оценка перспектив сочетанной специфической профилактики антибиотикорезистентным иммуногенным штаммом чумного микроба и экстренной профи лактики аминогликозидами на модели экспериментальной чумы белых мышей. Антибиотики и химиотерапия 2003; 48(5): 15-20
- Шеремет О.В., Корганов Я.Н., Терентьев А.Н., Шатова И.Н. Среда культивирования возбудителя чумы при 28 и 37 оС. Актуальные вопросы разработки препаратов медицинской биотехнологии. М.,1988: 108-9
- Максимов В.Н., Федоров В.Д. Применение методов математического планирования эксперимента. М.: МГУ, 1969. 146 с
- Tymczyszyn E.E., Sosa N., Gerbino E, Hugo A., Gomez-Zavaglia A., Schebor C. Effect of physical properties on the stability of Lactobacillus bulgaricus in a freeze-dried galacto-oligosaccharides matrix. Int. J. Food Microbiol. 2012; 155(3): 217-21. DOI: 10.1016/j. ijfoodmicro.2012.02.008
- Leslie S.B., Israeli E., Lighthart B., Crowe J.H., Crowe L.M. Trehalose and sucrose protect both membranes and proteins in intact bacteria During drying. Ahll. Environ. Microbiol. 1995; (10): 3592-7.
- Ohtake S., Martin R.F. ,Saxena A., Lechuga-Ballesteros D., Santiago A.E., Barry E.V., Truong-Le V. Formulation and stabilization Francisella tularensis Live vaccine strain. J. Phrm. Sci. 2011; 100(8): 3076-87. doi: 10.1002/jps.16
- Грачева И.В., Осин А.В. Механизмы повреждений бактерий при лиофилизации и протективное действие защитных сред. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; (3): 5-12.
- Kouda K., Iki M. Beneficial effects of mild stress (hormetic effects): dietary restriction and health. J. Physiol. Anthropol. 2010; 29: 127-32
- Calabrese EJ, Mattson MP, Calabrese V. Resveratrol commonly displays hormesis: occurrence fnd biomedical signifcance. Hum. Exp. Toxicol. 2010; 29: 980-1015
Дополнительные файлы
