Использование ассоциативных ризобактерий для оптимизации фитосанитарного состояния посевов зерновых культур

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Исследования проводили с целью определения влияния ассоциативных ризобактерий на развитие возбудителей болезней мягкой пшеницы и тритикале. Изучали варианты замачивания семян и двукратного опрыскивания растений жидкостью со штаммами Bacillus subtilis 124-11, Sphingomonas sp. K1B и Pseudomonas fluorescens SPB2137 (титр 108...109 кл/мл) и органоминеральной композицией Batr Gum. В контрольном варианте растения обрабатывали водой и Batr Gum. Наибольшей в опыте эффективностью в отношении желтой и бурой ржавчины пшеницы обладал штамм Bacillus subtilis 124-11, тритикале - Sphingomonas sp. K1B. Применение Bacillus subtilis 124-11 на сорте Ленинградская 6 снижало интенсивность развития желтой ржавчины на 12 %, числа пустул - на 47 %, длины полосы с пустулами - на 41 %, площади пустулы - на 39 %; развития бурой ржавчины - на 9 %, числа пустул - на 50 %, площади пустулы - на 40 %. Обработка сорта Dua штаммом Sphingomonas sp. K1B уменьшала пораженность растений бурой ржавчиной на 13 %, числа пустул - на 59 %, площади пустулы - на 52 %. Снижение интенсивности развития мучнистой росы на пшенице и числа пятен с налетом зарегистрировано при использовании штамма Sphingomonas sp. K1B на сорте Ленинградская 6 - на 12 %, Ajeeba - 19 %, Trizo - 13 %, Сударыня - 3 %. При использовании ассоциативных ризобактерий на сорте пшеницы Сударыня, а также тритикале Аист Харьковский и Dua выявлено уменьшение гельминтоспориозной корневой гнили, которое было наибольшим (на 32 %) от штамма Sphingomonas sp. K1B. Совместное применение бактериальных штаммов с органоминеральным удобрением Batr Gum снижало развитие мучнистой росы и желтой ржавчины эффективнее, чем их раздельное использование.

Об авторах

Л. Е Колесников

Санкт-Петербургский государственный аграрный университет

Email: kleon9@yandex.ru
196601, Санкт-Петербург - Пушкин, Петербургское ш., 2

А. А Белимов

Всероссийский НИИ сельскохозяйственной микробиологии

Email: belimov@rambler.ru
196608, Санкт-Петербург, ш. Подбельского, 3

Б. А Хасан

Ministry of Agriculture, Agricultural Research Office

Email: bashar_alamiry@yahoo.com
Abo-Ghraib, St. Al-Zaytun, H. 10081, Baghdad

Ю. Р Колесникова

Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений имени Н.И. Вавилова (ВИР)

Email: jusab@yandex.ru
190000, Санкт-Петербург, ул. Большая Морская, 42-44

М. В Киселев

Санкт-Петербургский государственный аграрный университет

196601, Санкт-Петербург - Пушкин, Петербургское ш., 2

Д. С Минаков

Санкт-Петербургский государственный аграрный университет

196601, Санкт-Петербург - Пушкин, Петербургское ш., 2

Список литературы

  1. Лысов А.К., Павлюшин В.А. Фитосанитарное проектирование агроэкосистем и дистанционное зондирование // Современные проблемы дистанционного зондирования Земли из космоса. 2022. Т. 19. № 5. С. 101-112.
  2. Формирование агроэкосистеми становление сообществ вредных видов биотрофов / В.А. Павлюшин, Н.А. Вилкова, Г.И. Сухорученко и др. // Вестник защиты растений. 2016. № 2 (88). С. 5-15.
  3. Тихонович И.А., Проворов Н.А. Сельскохозяйственная микробиология как основа экологически устойчивого агропроизводства: фундаментальные и прикладные аспекты // Сельскохозяйственная биология. 2011. Т.46. № 3. С.3-9.
  4. Павлюшин В.А., Новикова И.И., Бойкова И.В. Микробиологическая защита растений в технологиях фитосанитарной оптимизации агроэкосистем: теория и практика (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2020. Т.55. № 3. С. 421-438.
  5. Ароматические карбоновые кислоты корневых экссудатов ячменя и их влияние на рост Fusarium culmorum и Pseudomonas fluorescens / А.И. Шапошников, В.Ю. Шахназарова, Н.А. Вишневская и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2020. Т. 56. № 3. С. 292-300.
  6. Ризосферные бактерии / Н.В. Феоктистова, А.М. Марданова, Г.Ф. Хадиева и др. // Ученые записки казанского университета. Серия естественные науки. 2016. 158 (2). С. 207-224.
  7. Гвоздева М.М., Волкова Г.В. Защита озимой пшеницы от комплекса заболеваний в условиях центральной зоны Краснодарского края с преимущественным использованием биологических фунгицидов // Достижения науки и техники АПК. 2022. Т. 36. № 3. С. 18-25.
  8. Plant growth-promoting rhizobacteria and root system functioning /j. Vacheron, G. Desbrosses, M.L. Bouffaud, et al. // Front Plant Sci. 2013. № 4. URL: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fpls.2013.00356/full (дата обращения: 22.12.2022).
  9. Potential role of phytohormones and plant growth-promoting rhizobacteria in abiotic stresses: consequences for changing environment / S. Fahad, S. Hussain, A. Bano et al. // Environmental Science and Pollution Research. 2015. Vol. 22. P. 4907-4921.
  10. Tak H. I., Ahmad F., Babalola O. O. Advances in the application of plant growth-promoting rhizobacteria in phytoremediation of heavy metals // Reviews of Environmental Contamination and Toxicology. 2013. Vol. 223. P. 33-52.
  11. Characterization of the microbial communities in wheat tissues and rhizosphere soil caused by dwarf bunt of wheat / T.Xu, W.Jiang, D. Qin, et al. // Scientific Reports. 2021. № 11. URL: https://www.nature.com/articles/s41598-021-85281-8#citeas (дата обращения: 23.12.2022).
  12. Studies on the control effect of Bacillus subtilis on wheat powdery mildew / D. Xie, X. Cai, C. Yang, et al. // Pest Management Science. 2021. URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/ps.6471 (дата обращения: 23.12.2022).
  13. Garcia-Fraile P., Menendez E., Rivas R. Role of bacterial biofertilizers in agriculture and forestry // AIMS Journal. 2015. Vol. 2. P. 183-205.
  14. Identification of the effectiveness of associative rhizobacteria in spring wheat cultivation / L.E. Kolesnikov, A.A. Belimov, E.Y. Kudryavtseva, et al. // Agronomy Research. 2021. Vol. 19. No. 3. P. 1530-1544.
  15. Ермаков А.И., Арасимович В.В., Ярош Н.П. Методы биохимического исследования растений. Л.: Агропромиздат, 1987. 429 с.
  16. Исследование эффективности штаммов ассоциативных ризобактерий в посевах различных видов растений / Г.А. Воробейков, Т.К. Павлова, С.В. Кондрат и др. // Известия Российского государственного педагогического университета им. А. И. Герцена. 2011. № 141. С. 114-123.
  17. Молекулярный анализ микробных сообществ ризосфер злаков, выращенных на контрастных почвах / А.О. Зверев, Е.В. Першина, В.М. Шапкин и др. // Микробиология. 2020. Т. 89. №2. С. 235-246. doi: 10.31857/s0026365620010188.
  18. Роль корневых экссудатов ячменя как источника питания во взаимоотношениях между Fusarium culmorum и Pseudomonas fluorescens / А.И. Шапошников, Н.А. Вишневская, В.Ю. Шахназарова и др. // Микология и фитопатология. 2019. Т. 53. № 5. С. 311-318.
  19. Взаимодействие ризосферных бактерий с растениями: механизмы образования и факторы эффективности ассоциативных симбиозов (обзор) / А.И. Шапошников, А.А. Белимов, Л.В. Кравченко и др. // Сельскохозяйственная биология. 2011. № 3. C. 16-22.
  20. Furbank R.T., Quick W.P., Sirault X.R.R. Improving photosynthesis and yield potential in cereal crops by targeted genetic manipulation: prospects, progress and challenges // Field crops research. 2015. Vol. 182. P.19-29.
  21. Масс-спектральный анализ содержания некоторых химических элементов во флаговых листьях у изогенных линий пшеницы (Triticum aestivum L.) с различной устойчивостью к бурой ржавчине / Л.Е. Колесников, О.И. Бурова, Ю.Р. Колесникова и др. // Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53. № 1. С. 72-84.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2023