Молекулярно-генетические исследования в профилактике, диагностике и лечении инфекционных болезней

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

В решении проблем инфекционной патологии человека молекулярно-генетические технологии играют все более существенную и результативную роль. Генная инженерия используется для создания вакцин. Рекомбинантные интерфероны применяются для лечения хронических вирусных гепатитов. Генодиагностика обеспечивает возможность оперативной и высокочувствительной индикации любого инфекционного агента в биопробах и внешней среде и мониторинг терапии. Целесообразно интенсифицировать внедрение молекулярно-генетических исследований в практику здравоохранения РФ.

Об авторах

Ю. В. Лобзин

Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова

Автор, ответственный за переписку.
Email: shabanov@mail.rcom.ru

Член-корреспондент РАМН

Россия, Санкт-Петербург

Е. Д. Соколова

Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова

Email: shabanov@mail.rcom.ru
Россия, Санкт-Петербург

Т. А. Камилова

Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова

Email: shabanov@mail.rcom.ru
Россия, Санкт-Петербург

С. М. Захаренко

Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова

Email: shabanov@mail.rcom.ru
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Антонов В. А., Зинченко О. В., Лобанов А. Н. и др. Детекция возбудителей особо опасных инфекций в условиях автономной мобильной ПЦР-лаборатории // Генодиагностика инфекционных болезней / Материалы Российской научно-практической конференции. Новосибирск, 2005. С. 88-89.
  2. Башкирова Л. Ю., Круглова А. И., Богословская Е. В. и др. Определение мутаций устойчивости при применении комбинированной терапии ВИЧ-инфекции // Генодиагностика инфекционных болезней / Материалы Российской научно-практической конференции. Новосибирск, 2005. С. 31-33.
  3. Бравве Ю. И., Масленников А. Б., Песков С. А., Пескова И. В. Инфекционные болезни и предиктивная геномная медицина // Генодиагностика инфекционных болезней / Материалы Российской научно-практической конференции. Новосибирск, 2005. С. 18-20.
  4. Вознесенский Д. Л., Сехин С. В., Страчунский Л. С. и др. Сравнение бактериоскопии, культурального метода и полимеразной цепной реакции для диагностики гонореи // Генодиагностика инфекционных болезней / Материалы 5-й Всерос. конф. М., 2004. Т. 1. С. 15-19.
  5. Воронова Н. Ю., Петрова Г. А., Шливко И. Л. и др. Возможности ПЦР в диагностике различных форм сифилиса // Материалы 5-й Всерос. конф. М., 2004. Т. 1. С. 21.
  6. Гущин А. Е., Родионова Е. Н., Шипулин Г. А. и др. Сифилис: проблемы диагностики и возможности молекулярно-биологических технологий // Материалы 5-й Всерос. конф. М., 2004. T. 1. С. 24-27.
  7. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии / Под ред. Л. С. Страчунского, Ю. Б. Белоусова, С. Н. Козлова. М.: Боргес, 2002. 384 с.
  8. Пузырев В. П. Кластеризация генома человека по генам подверженности инфекционным заболеваниям // Генодиагностика инфекционных болезней / Материалы Российской научно-практической конференции. Новосибирск, 2005. C. 26-28.
  9. Рациональная антимикробная фармакотерапия: Рук-во для практикующих врачей / В. П. Яковлев, С. В. Яковлев и др.; Под общ. ред. В. П. Яковлева, С. В. Яковлева. М.: Литтерра, 2003. 1008 с. (Рациональная фармакотерапия: Сер. рук. для практикующих врачей; Т. 2).
  10. Сысолетина И. П., Байбакова Е. В., Савельева Т. В., Красняк И. А. Диагностическая значимость различных методов выявления урогенитального хламидиоза // Генодиагностика инфекционных болезней / Материалы Российской научно-практической конференции. Новосибирск, 2005. С. 283-284.
  11. Aleshin S. E., Timofeev A. V., Khoretonenko M. V. et al. Combined prime-boost vaccination against tick-borne encephalitis (TBE) using a recombinant vaccinia virus and a bacterial plasmid both expressing TBE virus non-structural NS1 protein // BMC Microbiol. 2005. Vol. 5. P. 45.
  12. Bai X., Hosler G., Rogers B. B. et al. Quantitative polymerase chain reaction for human herpesvirus diagnosis and measurement of Epstein-Barr virus burden in posttransplant lymphoproliferative disorder // Clin. Chem. 1997. Vol. 43. P. 1843-1849.
  13. Berzofsky J. A., Ahlers J. D., Janik J. et al. Progress on new vaccine strategies against chronic viral infections // J. Clin. Invest. 2004. Vol. 114. P. 450-462.
  14. Bilciuniene L., Carlson T., Ambrozaitis A. et al. Hepatitis C virus RNA levels during initial of standart interferon therapy: influence of continued treatment on sustained response // Scand. J. Infect. Dis. 2003. Vol. 35. P. 180-185.
  15. Brechot C., Thiers V., Nalpas B. et al. Persistent hepatitis B virus infection in Subjects without hepatitis B surface antigen: clinically significant or purely "occult"? // Hepatology. 2001. Vol. 34. P. 194-203.
  16. Cinque P., Vago L., Britting M. et. al. Cytomegalovirus infection of central nervous system in patients with AIDS: diagnosis by DNA amplification from cerebrospinal fluid // J. Infect. Dis. 1992. Vol. 166. P. 1408-1411.
  17. El-Zayadi A., Simmonds P., Dabbous H. et al. Response to interferon-alpha of Egyptian patients infected with hepatitis C virus genotype 4 // J. Viral. Hepat. 1996. Vol. 3. Р. 261–264.
  18. Gao W., Tamin A., Soloff A. et al. Effects of a SARS-associated coronavirus vaccine in monkeys // Lancet. 2003. Vol. 362. P. 1895–1896.
  19. Hadziyannis S. J., Vassilopoulos D. Hepatitis B e antigen-negative chronic hepatitis B // Hepаtology. 2001. Vol. 34. Р. 617-624.
  20. Hoofnagle J. H. Course and outcome of hepatitis C// Hepatology. 2002. Vol. 36. Suppl. 5. P. 21–29.
  21. Koff R. S. Hepatitis vaccines: recent advances // Int. J. Parasitol. 2003. Vol. 33. P. 517-523.
  22. Lewinsohn D. M., Lewinsohn D. A., Grotzke J. E. TB vaccines at the turn of the century: insights into immunity to M. tuberculosis and modern approaches for prevention of an ancient disease // Semin. Respir. Infect. 2003. Vol. 18. P. 320–338.
  23. McMichael A., Hanke T. The quest for an AIDS vaccine: is the CD8+ T-cell approach feasible? [review] // Nat. Rev. Immunol. 2002. Vol. 2. P. 283-291.
  24. Morera-Lopez Y., Torres-Rodriguez J. M., Jimenez-Cabello T., Baro-Tomas T. Cryptococcus gattii: in vitro susceptibility to the new antifungal albaconazole versus fluconazole and voriconazole // Med. Mycol. 2005. Vol. 43(6). P. 505-510.
  25. Pawlotsky J.-M. Use and interpretation of virological tests for hepatitis C // Hepatology. 2002. Vol. 36. Suppl. 5. P. 65–73.
  26. Roberts T. C., Brennan D. C., Buller R. S. et al. Quantitative polymerase chain reaction to predict occurance of symptomatic cytomegalovirus infection and assess response to ganciclovir therapy in renal transplant recipients // J. Infect. Dis. 1998. Vol. 178. P. 626-635.
  27. Rodriguez-Carreno M. P., Nelson M. S., Botten J. et al. Evaluating the immunogenicity and protective efficacy of a DNA vaccine encoding Lassa virus nucleoprotein // Virology. 2005. Vol. 335. P. 87-98.
  28. Sheets E. E. Immunotherapy of human cervical high-grade intraepithelial neoplasia with microparticle-delivered human papillomavirus 16 E7 plasmid DNA // Am. J. Obstet. Gynecol. 2003. Vol. 188. P. 916-926.
  29. Smith I. L., Macdonald J. C., Freemen W. R. et al. Cytomegalovirus (CMV) retinitis activity is accurately reflected by the presence and level of CMV DNA in aqueous humor and vitreous // J. Infect. Dis. 1999. Vol. 179. Р. 1249-1253.
  30. Smythies L. E., Novak M. J., Waites K. B. et al. Poliovirus replicons encoding the B subunit of Helicobacter pylori urease protect mice against H. pylori infection // Vaccine. 2005. Vol. 23. Р. 901–909.
  31. Stanojevic M., Zerjav S., Jevtovic D., Jovanovic T. Herpes simplex virus resistance to acyclovir in routine virological laboratory practice // Biomed. Pharmacother. 2005. Vol. 59(3). P. 135-136.
  32. Studahl M., Bergstrom T. et al. Detection of cytomegalovirus DNA in cerebrospinal fluid in immunocompetent patients as a sign of active infection // J. Med. Virol. 1995. Vol. 46. P. 274-280.
  33. Tan S. L., Pause A., Shi Y., Sonenberg N. Hepatitis C therapeutics: current status and emerging strategies // Nat. Rev. Drug Discov. 2002. Vol. 1. P. 867-881.
  34. Vandeputte P., Larcher G., Berges T. et al. Mechanisms of azole resistance in a clinical isolate of Candida tropicalis // Antimicrob. Agents. Chemother. 2005. Vol. 49(11). P. 4608–4615.
  35. Wallich R., Jahraus O., Stehle T. et al. Artificialinfection protocols allow immunodetection of novel Borrelia burgdorferi antigens suitable as vaccine candidates against Lyme disease // Eur.
  36. J. Immunol. 2003. Vol. 33. P. 708-719. Zimmerman S. E., Wang J., Cornetta K. G. et al. Semiquantative Epstain-Barr virus (EBV) polymerase chain reaction for the determination of patients at risk for EBV - induced lymphoproliferative disease after stem cell transplantation // Blood. 1998. Vol. 91. P. 3654.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2025


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 74760 от 29.12.2018 г.