Некоторые особенности реагирования иммунной системы при новой коронавирусной инфекции COVID-19
- Авторы: Протасов О.В.1, Болехан А.В.1, Аржавкина Л.Г.1,2, Богданова Е.Г.1, Чугунов А.А.1
-
Учреждения:
- Военно-медицинская академия
- Северо-Западный государственный медицинский университет имени И. И. Мечникова
- Выпуск: Том 42, № 1 (2023)
- Страницы: 29-36
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journals.eco-vector.com/RMMArep/article/view/108628
- DOI: https://doi.org/10.17816/rmmar108628
- ID: 108628
Цитировать
Аннотация
Цель: изучение цитокинового звена иммунитета у больных новой коронавирусной инфекцией COVID-19 и возможности использования этих данных для прогнозирования риска развития поражения легочной ткани.
Материалы и методы. Пациенты с диагностированной новой коронавирусной инфекцией COVID-19 были разделены на 4 группы в зависимости от степени тяжести заболевания: 1 — бессимптомные больные; 2 — больные с поражением легочной ткани в объеме 25 %; 3 — больные с поражением легочной ткани 50 %; 4 — больные с поражением легочной ткани 75 % (по результатам компьютерной томографии). Иммунологические исследования проводили при поступлении в клинику, затем через 7 дней и перед выпиской. Изучали концентрацию цитокинов в сыворотке крови методом твердофазного иммуноферментного анализа с применением наборов производства «Вектор Бест».
Результаты. Во всех группах установлено низкое содержание провоспалительных цитокинов: фактора некроза опухоли, интерферрона-γ, интерлейкинов 1 и 2. Медианный уровень интерлейкина-6 во всех группах в течение всего времени наблюдения находился в пределах нормы, однако у отдельных больных наблюдалось многократное превышение его концентрации. В группах с 50 и 75 % поражением легочной ткани показано увеличение концентрации интерлейкина-8. Статистически значимые различия отмечены только для уровня интерлейкина-8 между группой с бессимптомной формой инфекции и группами КТ-2 и КТ-3. Установлено, что концентрация интерлейкина-1 ниже 3,58 пг/мл является значимым фактором риска тяжелого течения заболевания. Во всех группах обследуемых отмечено низкое содержание интерлейкинов 4 и 10, при этом значимой разницы между группами не отмечено. Выявлены положительные корреляционные связи между степенью поражения легочной ткани и уровнем интерлейкинов 6, 2 и 8. Установлены отрицательные корреляционные связи между степенью поражения легочной ткани и содержанием интерлейкина-1.
Заключение. У обследованного контингента не выявлено достоверной активации цитокинового звена адаптивного противовирусного иммунитета. Уровни цитокинов в сыворотке крови находились в пределах нормальных значений и не имели значимых межгрупповых различий. Увеличение IL-8 в группах с клинически выраженными признаками инфекции свидетельствует об активации показателей, характеризующих врожденный иммунитет.
Полный текст
АКТУАЛЬНОСТЬ
Результаты научных исследований, касающиеся коронавирусной инфекциии COVID-19, вызванной вирусом SARS-CoV-2, по сей день остаются актуальными [1–3]. Исследования COVID-19, проведенные в разных странах мира, позволили установить наиболее уязвимые для этой инфекции группы населения, изучить течение инфекции и разработать методы профилактики и лечения [4–7].
Инфицирование новым коронавирусом SARS-CoV-2 приводит к развитию острого инфекционного заболевания респираторного тракта с типичными катаральными симптомами и клинически может протекать как сезонные острые респираторные вирусные инфекции. У большинства пациентов с COVID-19 имеются слабые клинические проявления или симптомы средней тяжести, но примерно у 15 % больных развивается тяжелая пневмония, а у 5 % — острый респираторный дистресс-синдром и полиорганная недостаточность [8–11].
В ответ на инфицирование SARS-CoV-2 развиваются защитные реакции, обусловленные активацией врожденного и приобретенного иммунитета и направленные против вируса, однако иммунопатогенез COVID-19 связан с формированием несбалансированного иммунного ответа, в особо тяжелых случаях приводящего к респираторному дистресс-синдрому и нарушению функции легких [11, 12]. Понятие защитных реакций не ограничивается только участием клеточного звена иммунного ответа. Организующей системой, которая формирует и регулирует весь комплекс защитных реакций организма при внедрении патогенов, служат цитокины, осуществляя в рамках иммунной системы взаимосвязь между неспецифическими защитными реакциями и специфическим иммунитетом, действуя в обоих направлениях. Некоторые цитокины в небольших количествах синтезируются постоянно, регулируя различные этапы нормального гемопоэза, однако большинство цитокинов не играют никакой роли в нормальной физиологии организма, они синтезируются лишь при развитии защитных реакций. Цитокины в низких концентрациях нужны для правильного формирования местного воспаления, более высокие дозы вызывают развитие системной воспалительной реакции, но патологически высокие концентрации приводят к развитию так называемого «цитокинового шторма» и гибели организма.
Доказано, что несбалансированный иммунный ответ на вирус, сопровождающийся недостаточным синтезом интерферона в начале заболевания, с последующей гиперпродукцией провоспалительных цитокинов, является причиной неадекватно сильного воспаления в легочной ткани с развитием острого поражения легких. В этой связи мы сочли интересным и важным исследование цитокинового профиля у больных COVID-19 с различными клиническими формами заболевания и у бессимптомных носителей SARS-CoV-2.
Цель исследования — изучение цитокинового звена иммунитета у больных новой коронавирусной инфекцией COVID-19 и возможности использования этих данных для прогнозирования риска развития поражения легочной ткани.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Были обследованы 74 мужчины в возрасте 22–45 лет с диагностированной новой коронавирусной инфекцией COVID-19. Пациенты были разделены на 4 группы в зависимости от степени поражения легочной ткани: группу с бессимптомным течением заболевания (Б/С) составили 19 человек с положительным тестом полимеразной цепной реакции (ПЦР-тестом) на рибонуклеиновую кислоту вируса без клинических признаков инфекции; группу КТ-1 — 19 человек с поражением легочной ткани по результатам компьютерной томографии в объеме 25 %; группу КТ-2 — 23 человека с поражением легочной ткани 50 % и группу КТ-3 — 13 человек с поражением легочной ткани 75 %. Отбор венозной крови для иммунологических исследований осуществлялся трижды — при поступлении в клинику («точка 1», в среднем через 1 нед после появления клинических симптомов заболевания), затем через 7 дней («точка 2») и перед выпиской («точка 3», в среднем через 3 нед после появления клинических симптомов заболевания). Обследованные из группы Б/С попадали в клинику после получения положительного ПЦР-теста и находились в ней в среднем 1,5–2 нед.
Методом твердофазного иммуноферментного анализа с использованием наборов реагентов фирмы «Вектор Бест» определяли концентрации фактора некроза опухоли (TNF), интерферона (IFN)-γ, интерлейкина (IL)-1, IL-2, IL-4, IL-6, IL-8, IL-10.
Математическую обработку результатов исследования проводили на персональном компьютере с использованием стандартного пакета программ STATISTICA for Windows, версия 10.0. Для описания полученных данных использовалось минимальное и максимальное значения показателя, вычислялись медиана (Ме) и квартильный размах. Поскольку распределение значений многих показателей отличалось от нормального, значимость различий оценивали с использованием непараметрического критерия Манна–Уитни и точного критерия Фишера.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Результаты анализа основных провоспалительных цитокинов в сыворотке крови больных COVID-19 с различными клиническими формами заболевания приведены в табл. 1.
Таблица 1. Концентрация основных провоспалительных цитокинов в сыворотке крови больных COVID-19 с различными клиническими формами заболевания
Показатель (референсные значения) | Группа | Точка 1 | Точка 2 | Точка 3 | |||
Mе | квартильный размах, min-max | Mе | квартильный размах, min-max | Mе | квартильный размах, min-max | ||
IFN-γ (0–15 пг/мл) | Б/С | 0,00 | 0,00–3,32 0,00–3,60 | 0,00 | 0,00–2,48 0,00–2,49 | 0,63 | 0,00–3,74 0,00–3,99 |
КТ-1 | 0,00 | 0,00–0,00 0,00–0,00 | 0,63 | 0,00–1,75 0,00–2,66 | 0,02 | 0,00–0,36 0,00–3,61 | |
КТ-2 | 0,62 | 0,00–2,14 0,00–6,76 | 0,00 | 0,00–1,55 0,00–3,28 | 0,00 | 0,00–0,32 0,00–2,72 | |
КТ-3 | 0,00 | 0,00–0,50 0,00–7,10 | 0,00 | 0,00–0,30 0,00–3,67 | 0,00 | 0,00–0,45 0,00–0,99 | |
TNF (0–6 пг/мл) | Б/С | 2,47 | 1,11–3,36 0,78–3,50 | 2,70 | 1,79–2,83 1,65–3,37 | 2,26 | 1,69–3,43 0,32–3,75 |
КТ-1 | 2,23 | 1,81–2,73 1,40–3,19 | 2,38 | 1,81–2,85 0,59–4,43 | 2,77 | 1,96–2,90 1,82–4,59 | |
КТ-2 | 2,73 | 1,81–3,72 0,65–5,23 | 2,50 | 1,64–3,16 0,93–7,29 | 3,13 | 2,41–4,56 1,85–6,59 | |
КТ-3 | 2,17 | 1,65–2,99 1,14–6,67 | 2,39 | 2,22–3,84 0,84–5,16 | 2,59 | 1,86–3,21 1,39–4,32 | |
IL-1 (0–11 пг/мл) | КТ-1 | 3,79 | 1,51–5,26 0,27–6,38 | 1,28 | 0,50–2,77 0,00–5,24 | 2,53 | 1,26–3,52 0,0–5,16 |
КТ-2 | 1,84 | 0,04–4,41 0,00–9,69 | 1,07 | 0,29–2,43 0,00–4,48 | 0,62 | 0,36–1,81 0,00–47,78 | |
КТ-3 | 0,76 | 0,00–2,25 0,00–3,40 | 1,09 | 0,63–2,27 0,10–3,70 | 1,50 | 0,22–3,44 0,00–8,57 | |
IL-2 (0–10 пг/мл) | Б/С | 1,36 | 0,00–1,65 0,00–1,78 | 0,18 | 0,15–0,78 0,14–0,83 | 1,00 | 0,58–1,33 0,37–1,78 |
КТ-1 | 1,23 | 0,00–1,65 0,00–1,76 | 0,87 | 0,51–1,18 0,34–1,51 | 0,69 | 0,33–0,90 0,00–1,54 | |
КТ-2 | 1,27 | 0,25–1,62 0,00–2,84 | 0,61 | 0,55–1,15 0,00–2,04 | 1,05 | 0,46–1,70 0,00–2,06 | |
КТ-3 | 0,91 | 0,68–1,80 0,20–2,11 | 0,26 | 0,00–0,46 0,00–0,80 | 0,25 | 0,00–1,02 0,00–1,54 | |
IL-6 (0–10 пг/мл) | Б/С | 1,68 | 1,07–3,44 0,00–6,08 | 1,39 | 0,00–2,29 0,00–3,51 | 2,06 | 1,68–2,66 1,33–4,89 |
КТ-1 | 2,59 | 0,68–6,27 0,00–353,00 | 2,36 | 0,77–4,47 0,24–5,51 | 1,21 | 0,78–1,29 0,00–3,97 | |
КТ-2 | 4,03 | 1,44–7,44 0,00–27,92 | 1,88 | 0,67–4,67 0,00–43,98 | 1,62 | 1,16–3,70 0,06–59,60 | |
КТ-3 | 5,63 | 1,09–7,78 0,50–482,00 | 2,39 | 1,36–19,8 0,64–458,26 | 1,68 | 1,45–1,98 0,85–408,50 | |
IL-8 (0–10 пг/мл) | Б/С | 4,89 | 3,45–8,83 1,84–65,89 | 4,00 | 3,38–5,72 2,49–269,00 | 4,66 ± 5,55 | 3,28–12,40 2,97–16,87 |
КТ-1 | 9,49 | 3,79–28,07 1,18–385,21 | 7,99 | 4,51–13,93 1,86–240,40 | 6,76 | 5,97–22,48 0,99–129,10 | |
КТ-2 | 16,51 | 9,89–85,82 0,51–466,39 | 12,47 | 8,05–34,33 2,15–89,27 | 13,91 | 7,53–31,71 3,57–493,90 | |
КТ-3 | 11,74 | 6,78–17,35 5,41–42,04 | 17,89 | 9,58–35,28 2,71–41,78 | 18,74 | 7,68–59,43 2,76–453,70 |
Как видно из представленных в ней данных, при поступлении в стационар не только медианные значения концентрации IFN-γ в различных группах не превышали должных значений, но и при персонификации у всех обследованных уровень показателя находился в рамках референсных величин.
Наибольшие индивидуальные значения при поступлении в стационар зарегистрированы в группе КТ-3 (7,10 пг/мл), что было в 2 раза ниже верхнего предела нормальных значений. Статистически значимых различий между группами не было, при дальнейшем наблюдении никаких серьезных изменений концентрации IFN-γ также не отмечено.
INF-γ секретируется клетками как врожденной (натуральные киллеры), так и адаптивной иммунной системы (Т-хелперные лимфоциты первого типа). Секретируемый киллерными клетками IFN-γ повышает экспрессию молекул II класса главного комплекса гистосовместимости на поверхности клеток, усиливает фагоцитоз и механизмы уничтожения.
При репликации вируса в клетке усиливается продукция интерферонов, оказывающих различные эффекты на синтез IFN-γ и вызывающих прекращение синтеза белка в инфицированной клетке, тем самым не допуская продукцию вирусных белков. Продуцируемый Т-хелперными лимфоцитами первого типа IFN-γ участвует в активации цитотоксических Т-клеток и макрофагов, играя важную роль в иммунном ответе на вирусную инфекцию.
Сходная картина наблюдалась при анализе концентрации TNF, одного из важных факторов противовирусной защиты. Медианные значения показателя при поступлении в стационар находились в пределах нормы. Индивидуальные значения показателя незначительно превышали референсные только у одного человека из группы КТ-3 (6,67 пг/мл). Статистически значимых различий между группами не было, при дальнейшем наблюдении никаких серьезных изменений концентрации TNF не отмечено.
Помимо IFN-γ и TNF в нашем исследовании изучалась концентрация следующих провоспалительных цитокинов: IL-1, IL-2, IL-6 и IL-8.
При анализе концентрации IL-1 в сыворотке обследованных при поступлении в стационар установлено, что как медианные, так и индивидуальные значения показателя находились в пределах референсных величин. В группе Б/С данный показатель не определялся. В группе КТ-3 концентрация IL-1 была самой низкой и значимо (р = 0,007) отличалась от уровня, отмеченного в группе КТ-1. При статистической обработке данных значимым фактором риска тяжелого течения заболевания оказалась величина IL-1 ниже 3,58 пг/мл (р = 0,004).
В динамике отмечены незначимые разнонаправленные колебания уровня IL-1, в результате которых при выписке из стационара различия перестали быть значимыми. Самые высокие значения показателя (существенно превышающие нормальный уровень) — 47,78 пг/мл зафиксированы в группе КТ-2 при выписке из стационара.
На следующей стадии развития иммунного ответа решающая роль принадлежит IL-2. Он вырабатывается активированными Т-лимфоцитами и стимулирует деление и рост Т- и В-лимфоцитов, а также стимулирует натуральные киллеры и моноциты. В нашем исследовании медианная концентрация IL-2 при поступлении в стационар во всех группах находилась около нижней границы референсных значений. В динамике значимых изменений не отмечено, и при выписке из стационара уровень IL-2 оставался достаточно низким во всех группах обследованных, индивидуальных значений, превышающих порог нормальных значений, не зафиксировано.
На изучении уровня IL-6 следует остановиться особо. Смертность при коронавирусной инфекции связывают в первую очередь с лавинообразным повышением именно этого провоспалительного цитокина, координирующего иммунный ответ. В нашем исследовании не было зафиксировано смертельных случаев, как и случаев так называемого «цитокинового шторма». Несмотря на достаточно высокий уровень IL-6 у отдельных обследованных, при поступлении в стационар (даже в группе КТ-3) медианные значения показателя находились в пределах нормальных значений, хотя и с широким разбросом показателей, составив 5,63 с квартильным размахом 1,09–7,78 пг/мл. Несмотря на нормальные медианные величины, концентрация IL-6 при поступлении в стационар соответствовала выраженности клинических признаков заболевания, однако статистически значимая разница отмечена только между уровнем показателя в группах Б/С и КТ-2 (р = 0,046). При этом в группе Б/С ни один человек не имел уровня IL-6 выше нормальных значений, в группах сравнения превышение нормального диапазона показателя отмечено у 15–17 % обследованных. Лишь у двоих обследованных концентрация IL-6 многократно превышала порог нормы: у одного из группы КТ-1 отмечен уровень 353,87 пг/мл и у одного из группы КТ-3 — 482,25 пг/мл. В процессе лечения уровень IL-6 несколько снижался, однако при выписке из стационара со значительным улучшением оставался крайне высоким (408,46 пг/мл).
При анализе концентрации IL-8, получены следующие данные. При поступлении в стационар в группе Б/С медианный уровень IL-8 был в пределах нормы (4,89 пг/мл, квартильный размах 3,45–8,83 пг/мл), однако 20 % обследованных этой группы имели повышенный уровень IL-8 (от 14,02 до 65,89 пг/мл). В группе КТ-1 повышенный уровень IL-8 (в том числе многократно, от 10,55 до 385,21 пг/мл) имела половина обследованных, а медианная концентрация находилась на верхней границе референсного интервала и составила 9,49 пг/мл (квартильный размах 3,79–28,07 пг/мл). В группах КТ-2 и КТ-3 зарегистрирован повышенный медианный уровень показателя, а повышенный индивидуальный уровень IL-8 отмечен у 74 % обследованных в группе КТ-2 (от 10,52 до 466,39 пг/мл) и 64 % — в группе КТ-3 (в этой группе превышение было наименьшим, от 10,62 до 42,04 пг/мл). Различия были значимыми между группой Б/С и группами КТ-2 (р = 0,004) и КТ-3 (р = 0,014). При наблюдении в динамике отмеченная ситуация существенно не менялась. Уровень IL-8 в группах КТ-2 и КТ-3 оставался высоким при выписке из стационара. Статистическая значимость различий сохранялась для группы Б/С с КТ-2 (р = 0,015) и КТ-3 (р = 0,029).
Нами также был проведен в динамике анализ противоспалительных цитокинов в сыворотке крови больных COVID-19 с различными клиническими формами заболевания — IL-4 и IL-10. IL-4 продуцируется Т-хелперными лимфоцитами второго типа, является фактором дифференцировки Т- и В-клеток и ограничивает синтез макрофагами провоспалительных IL-1, IL-6, IL-8 и TNF, образование высокоактивных метаболитов кислорода и азота. IL-10 продуцируется Т-хелперными лимфоцитами первого и второго типов, моноцитами, макрофагами и цитотоксическими клетками и имеет широкий спектр действия с выраженным иммуносупрессивным эффектом. В своем ингибирующем действии на клеточный иммунитет IL-10 синергичен с IL-4, обладает способностью подавлять иммунное воспаление и является важнейшим регулятором цитокинов, во многом определяющим направленность иммунных реакций. Результаты исследования приведены в табл. 2. Как следует из представленных в ней данных, медианный уровень противовоспалительных цитокинов находился в пределах нормальных значений.
Таблица 2. Концентрация основных противовоспалительных цитокинов в сыворотке крови больных COVID-19 с различными клиническими формами заболевания
Показатель (референсные значения) | Группа | Точка 1 | Точка 2 | Точка 3 | |||
Mе | квартильный размах, min-max | Mе | квартильный размах, min-max | Mе | квартильный размах, min-max | ||
IL-4 (0–4 пг/мл) | Б/С | 0,79 | 0,24–1,69 0,00–2,28 | 0,43 | 00,00–1,03 0,00–1,20 | 1,27 | 0,81–2,48 0,41–3,62 |
КТ-1 | 1,09 | 0,22–2,17 0,00–2,59 | 1,16 | 0,89–5,40 0,66–9,61 | 2,42 | 0,52–4,60 0,30–5,11 | |
КТ-2 | 1,65 | 0,29–3,29 0,00–5,89 | 1,26 | 0,66–3,99 0,00–5,75 | 1,10 | 0,00–2,17 0,00–7,90 | |
КТ-3 | 0,95 | 0,70–1,17 0,63–1,44 | 0,32 | 0,00–1,46 0,00–1,86 | 1,20 | 0,31–2,07 0,00–3,72 | |
IL-10 (0–31 пг/мл) | Б/С | 2,21 | 0,97–3,60 0,96–4,35 | 1,47 | 0,71–2,84 0,17–3,11 | 0,84 | 0,11–2,88 0,00–4,05 |
КТ-1 | 4,23 | 3,75–5,68 1,21–7,32 | 3,90 | 3,43–4,81 1,94–5,95 | 5,11 | 3,44–6,34 3,15–7,54 | |
КТ-2 | 6,46 | 4,05–8,02 1,18–13,26 | 4,35 | 3,18–7,99 1,36–12,89 | 3,55 | 2,26–4,75 1,03–10,74 | |
КТ-3 | 6,55 | 3,61–14,41 0,00–22,88 | 6,03 | 5,21–10,56 2,17–24,35 | 5,49 | 3,56–6,42 2,51–9,73 |
Индивидуальный уровень IL-4, превышающий нормальные значения, при поступлении в стационар отмечен только у двоих обследованных из группы КТ-2 (5,35 и 5,89 пг/мл), причем у одного из них превышение референсных значений сохранялось вплоть до выписки из стационара. При этом статистически значимых различий между группами не зафиксировано. При наблюдении в динамике значительных колебаний уровня показателя не было.
Медианный уровень IL-10 при поступлении в стационар также находился в пределах должного интервала, однако был значимо выше в группах с клинически выраженными признаками заболевания. Статистическая значимость различий между группой бессимптомных больных и группами с клинически выраженными признаками заболевания составила р = 0,046, р = 0,008 и р = 0,025 по сравнению с группами КТ-1, КТ-2 и КТ-3 соответственно.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
У всех обследованных групп установлено низкое содержание провоспалительных цитокинов TNF и IFN-γ, ведущих в ходе реализации противовирусного иммунитета при классическом иммунном ответе; а также низкое содержание IL-1, модулирующего активность нейтрофилов, и низкое содержание IL-2, провоцирующего клональную экспансию клеток адаптивного иммунитета. Уровень провоспалительного цитокина IL-6, считающегося одним из ведущих в патогенезе тяжелых форм СOVID-19, во всех группах в течение всего времени наблюдения находился в пределах нормы, с многократным превышением уровня у отдельных обследованных. Статистически значимой разницы между группами не зафиксировано. Такие результаты, на наш взгляд, объясняются выборкой обследованного контингента. Наши исследования цитокинового профиля проведены у молодых военнослужащих мужчин, не попадающих в группу риска тяжелого развития заболевания. Ни у одного из обследуемых не было таких отягощающих заболеваний, как ожирение, сахарный диабет, хронические болезни сердца и дыхательных путей. Даже в группе КТ-3 не отмечено клинически тяжелого протекания COVID-19. И это еще раз подтверждает как индивидуальность каждого живого организма, так и роль общего состояния иммунитета в возможности противостоять инфекции.
В группах с 50 и 75 % поражением легочной ткани показано увеличение концентрации IL-8, формирующего градиент концентрации для привлечения активированных нейтрофилов. Уровень IL-8 в этих группах был выше нормального, а различия с уровнем, отмеченным в группе с бессимптомной формой инфекции, были значимыми.
Показано, что величина IL-1 ниже 3,58 пг/мл является значимым фактором риска тяжелого течения заболевания.
Во всех группах показано низкое содержание противовоспалительных цитокинов IL-4 и IL-10, при этом значимой разницы между группами не отмечено.
Таким образом, на основании полученных нами данных можно сказать, что у обследованного контингента на фоне выраженных клинических признаков заболевания не выявлено достоверной активации цитокинового звена адаптивного противовирусного иммунитета. Уровни провоспалительных и противовоспалительных цитокинов в сыворотке крови находились в пределах нормальных значений и не имели значимых межгрупповых различий. При сопоставлении полученных данных степень поражения легочной ткани положительно коррелировала с уровнем провоспалительных цитокинов IL-6 (0,169), IL-2 (0,241) и IL-8 (0,228). Отрицательные значимые корреляционные связи выявлены между степенью поражения легочной ткани и концентрацией провоспалительного цитокина IL-1 (–0,459) в сыворотке крови. Увеличение IL-8 в группах с клинически выраженными признаками инфекции косвенно указывает на активацию показателей, характеризующих врожденный иммунитет.
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ
Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
Этическая экспертиза. Проведение исследования одобрено локальным этическим комитетом ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова» (протокол от 07.05.2020).
Вклад авторов. Все авторы внесли существенный вклад в проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией
Об авторах
Олег Вячеславович Протасов
Военно-медицинская академия
Автор, ответственный за переписку.
Email: olegprotasov025@gmail.com
SPIN-код: 8452-9089
Scopus Author ID: 881632
канд. мед. наук, подполковник мед. службы старший научный сотрудник НИЛ (военной терапии) НИО (экспериментальной медицины) научно-исследовательского центра
Россия, Санкт-ПетербургАнна Владимировна Болехан
Военно-медицинская академия
Email: a.bolekhan@gmail.com
SPIN-код: 5182-8600
Scopus Author ID: 572884
канд. биол. наук, старший научный сотрудник НИЛ (лекарственной и экологической токсикологии) НИО (экспериментальной медицины) научно-исследовательского центра
Россия, Санкт-ПетербургЛейла Гусейновна Аржавкина
Военно-медицинская академия; Северо-Западный государственный медицинский университет имени И. И. Мечникова
Email: vanadzor_@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0001-5198-874X
SPIN-код: 8359-4200
Scopus Author ID: 881269
канд. биол. наук, старший научный сотрудник НИЛ (военной терапии) НИО (экспериментальной медицины) научно-исследовательского центра
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургЕлена Геннадиевна Богданова
Военно-медицинская академия
Email: belena-san@bk.ru
SPIN-код: 7726-8614
Scopus Author ID: 881510
канд. биол. наук, научный сотрудник НИЛ (военной терапии) НИО (экспериментальной медицины) научно-исследовательского центра
Россия, Санкт-ПетербургАлександр Алексеевич Чугунов
Военно-медицинская академия
Email: alexandrchugun@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2532-6133
SPIN-код: 3839-7619
Scopus Author ID: 1077745
адъюнкт при 1 кафедре (терапии усовершенствования врачей)
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Азаров И.И., Овчинников Д.В., Кузин А.А., и др. Оценка поствакцинального коллективного иммунитета против новой коронавирусной инфекции (COVID-19) среди военнослужащих Вооруженных сил Российской Федерации // Вестник Российской военно-медицинской академии. 2022. Т. 24, № 2. С. 267–276.
- Ивченко Е.В., Котив Б.Н., Овчинников Д.В., Буценко С.А. Результаты работы научно-исследовательского института проблем новой коронавирусной инфекции Военно-медицинской академии за 2020–2021 гг. // Вестник Российской Военно-медицинской академии. 2021. Т. 23, № 4. С. 93–104.
- Крюков Е.В., Тришкин Д.В., Салухов В.В., Ивченко Е.В. Опыт военной медицины в борьбе с новой коронавирусной инфекцией // Вестник Российской академии наук. 2022. Т. 92, № 7. С. 699–706.
- Крюков Е.В., Тришкин Д.В., Иванов А.М., и др. Эпидемиологическое исследование коллективного иммунитета против новой коронавирусной инфекции среди разных групп военнослужащих // Вестник Российской академии медицинских наук. 2021. Т. 76, № 6. С. 661–668.
- Миннуллин Т.И., Степанов А.В., Чепур С.В., и др. Иммунологические аспекты поражения коронавирусом SARS-COV-2 // Вестник Российской Военно-медицинской академии. 2021. Т. 2, № 74. С. 187–198.
- Chen N., Zhou M., Dong X., et al. Epidemiological and clinical characteristics of 99 cases of 2019 novel coronavirus pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study // Lancet. 2020. Vol. 395, No. 10223. P. 507–513. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30211-7
- Huang C., Wang Y., Li X., et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China // Lancet. 2020. Vol. 395, No. 10223. P. 497–506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5
- Биличенко Т.Н. Факторы риска, иммунологические механизмы и биологические маркеры тяжелого течения COVID-19 (обзор исследований) // Медицинское обозрение. 2021. № 5. С. 237–244.
- Channappanavar R., Fehr A., Vijay R., et al. Dysregulated type I interferon and inflammatory monocyte-macrophage responses cause lethal pneumonia in SARS-CoV-infected mice // Cell Host Microbe. 2016. Vol. 19, No. 2. P. 181–193. doi: 10.1016/j.chom.2016.01.007
- Huang K.J., Su I.J., Theron M., et al. An interferon-gamma-related cytokine storm in SARS patients // J. Med. Virol. 2005. Vol. 75, No. 2. P. 185–194. doi: 10.1002/jmv.20255
- Xu Z., Shi L., Wang Y., et al. Pathological findings of COVID-19 associated with acute respiratory distress syndrome // Lancet Respir. Med. 2020. Vol. 8, No. 4. P. 420–422. doi: 10.1016/S2213–2600(20)30076-X
- Qin C., Zhou L., Hu Z., et al. Dysregulation of immune response in patients with COVID-19 in Wuhan, China // Clin. Infect. Dis. 2020. Vol. 71, No. 15. P. 762–768. doi: 10.1093/cid/ciaa248
Дополнительные файлы
