Влияние прионизации белка Sup35 [PSI+] на частоту генетических нарушений, учитываемых в альфа-тесте у дрожжей Saccharomyces cerevisiae
- Авторы: Андрейчук Ю.В.1, Жук А.С.1, Инге-Вечтомов С.Г.2, Степченкова Е.И.3,4, Ширяева А.А.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный университет»
- Санкт-Петербургский государственный университет
- Санкт-Петербургский филиал Учреждения Российской академии наук Института общей генетики им. Н. И. Вавилова РАН
- Санкт-Петербургский государственный университет.
- Выпуск: Том 13, № 4 (2015)
- Страницы: 22-24
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 30.03.2016
- Статья опубликована: 15.12.2015
- URL: https://journals.eco-vector.com/ecolgenet/article/view/2433
- DOI: https://doi.org/10.17816/ecogen13422-24
- ID: 2433
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Причиной таких заболеваний человека, как болезнь Альцгеймера, болезнь Паркинсона, болезнь Хантингтона и болезнь Луи-Герига, характеризующихся специфическими нейродегенеративными симптомами, является переход белков в амилоидную форму в нервных тканях. У пациентов, страдающих болезнью Альцгеймера, увеличена частота нервных клеток с аномальным числом хромосом, однако прямое влияние прионов на стабильность генома не исследовано в достаточной мере. В нашей работе мы изучили влияние приона [PSI+] на стабильность генома у дрожжей S. cerevisiae в системе альфа-тест. Мы показали, что прион [PSI+] снижает частоту «незаконной» гибридизации как в скрещиваниях а × а, так и в скрещиваниях α × α, и приводит к снижению частот потерь хромосом и генных мутаций.
Ключевые слова
Полный текст
Введение Прионы - амилоидные агрегаты белков с измененной третичной структурой, обладающие инфекционными свойствами и способные индуцировать переход других молекул белка из нативной в прионную форму. Амилоидизация белков у млекопитающих приводит к развитию ряда заболеваний, характеризующихся нейродегенеративными симптомами, таких как болезнь Альцгеймера, болезнь куру, болезнь Кройцфельда-Якоба, губчатые энцефалопатии мозга и другие. Моделью для изучения прионов млекопитающих служит дрожжевой фактор [PSI+] - прионизованная форма фактора терминации трансляции Sup35. В клетках [PSI+] дрожжей S. cerevisiae большинство молекул Sup35 образует агрегаты и теряет свою функциональность. Прионизации белка Sup35 приводит к тому, что в клетках [PSI+] происходит нарушение терминации трансляции, поскольку на фоне отсутствия функционального Sup35 рибосомы прочитывают нонсенс-кодоны в мРНК как значащие. Прионизация Sup35 может быть выявлена по супрессии нонсенс-мутаций в различных генах. У пациентов, страдающих болезнью Альцгеймера, выявлено 10-кратное увеличение частоты нерасхождения 21 хромосомы (происходит как гаплоидизация, так и гиперплоидия) (Yourov et al., 2009). Обнаружена способность прионной формы белка PrP млекопитающих связываться с микротрубочками цитоскелета. Такое связывание приона препятствует полимеризации тубулина (Nieznanski et al., 2006), что, возможно, приводит к нарушению расхождения хромосом в митозе. У дрожжей S. cerevisiae с мутацией в генах SUP45 и SUP35 повышена частота потерь третьей хромосомы, такой фенотип коррелирует с чувствительностью к беномилу, который блокирует расхождение хромосом в анафазе (Borchsenius et al., 2000). Материалы и методы Для изучения влияния приона [PSI+] на стабильность генетического материала мы использовали разработанную нами ранее тест-систему альфа-тест. Альфа-тест - удобная тест-система, позволяющая одновременно учитывать изменение частот разных типов генетических повреждений. В альфа-тесте могут быть учтены следующие генетические события: потери хромосом, генные мутации, конверсия гена, потеря плеча хромосомы и рекомбинация. Альфа-тест основан на использовании механизма переключения типа спаривания у гетероталличных штаммов дрожжей S. cerevisiae (Inge-Vechtomov et al., 1986). Тип спаривания у дрожжей регулирует локус МАТ, расположенный в III хромосоме. Локус МАТ представлен двумя идиоморфами - МАТа и МАТalpha, определяющими а- и альфа-типы спаривания соответственно. В норме спариваться могут только клетки противоположных типов спаривания, поэтому в «незаконных» скрещиваниях (α × α) при смешивании двух штаммов одинакового типа спаривания (α) возникающие гибриды появляются в результате слияния родительских клеток, одна из которых перед гибридизацией переключила тип спаривания на противоположный (α → а). Такое переключение типа спаривания возможно в результате генетических изменений, нарушающих экспрессию идиоморфа МАТalpha, которые могут быть учтены в альфа-тесте. Использование специально сконструированных штаммов позволяет определить генетическую активность различных факторов, общий уровень стабильности генома, а также выявить молекулярную природу генетических изменений, вызванных разными мутагенами. Результаты Мы показали, что у штаммов, несущих прионную форму белка Sup35, происходит снижение частоты «незаконной» гибридизации в скрещиваниях α × α и а × а в 2 раза, тогда как в скрещиваниях α × а прионизация Sup35 не влияет на частоту гибридизации. Мы также сравнили спектр генетических повреждений, возникающих на фоне прионизации Sup35 по сравнению со спектром в контрольном штамме [psi-]. У штамма [PSI+] частоты потерь хромосом и генных мутаций снижены в 2 раза и в 5 раз увеличена частота конверсии. Результаты, полученные в альфа-тесте, согласуются с результатами теста на индукцию прямых мутаций устойчивости к канаванину, в котором мы также наблюдали снижение частоты мутагенеза в 2 раза (табл. 1). Обсуждение Мы исследовали влияние приона [PSI+] на стабильность генома с использованием альфа-теста и теста на индукцию прямых мутаций устойчивости к канаванину. Мы впервые показали, что наличие приона [PSI+] приводит к снижению частоты генных мутаций и потерь хромосом, а также увеличению частоты генной конверсии. Механизм влияния приона на стабильность генома остается неизвестным. Мы предполагаем, что возможный механизм снижения частоты генных мутаций в штамме [PSI+] заключается в следующем: поскольку Sup35 в прионизованной форме теряет функциональные свойства, спонтанные нонсенс-мутации начинают прочитываться как значащие, поэтому в использованных нами тестах на мутагенность не проявляются. Известно, что Sup35 участвует в сегрегации хромосом в мейозе, возможно, с этой функцией белка связано влияние фактора [PSI+] на частоту потерь хромосом, снижение которой мы обнаружили в альфа-тесте у штамма [PSI+]. Возможно также, что влияние фактора [PSI+] на стабильность генома может быть косвенным и опосредовано изменением всего протеома, в том числе белков репарации. Так, нарушение терминации трансляции может приводить к удлинению пептидов за счет трансляции кодонов, расположенных в мРНК после стоп-кодона. Очевидно, такое изменение протеома не может не отразиться на функции целого ряда белков, контролирующих процессы мутагенеза или репарации ДНК. Роль прионов в поддержании стабильности генома требует дальнейшего изучения.Об авторах
Юлия Вячеславовна Андрейчук
ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный университет»
Email: Yullinnabk@yandex.ru
младший научный сотрудник, Институт трансляционной биомедицины
Анна Сергеевна Жук
ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный университет»
Email: ania.zhuk@gmail.com
младший научный сотрудник, кафедра генетики и биотехнологии, биологический факультет
Сергей Георгиевич Инге-Вечтомов
Санкт-Петербургский государственный университет
Email: ingevechtomov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2832-6825
заведующий кафедрой генетики и биотехнологии, биологический факультет
РоссияЕлена Игоревна Степченкова
Санкт-Петербургский филиал Учреждения Российской академии наук Института общей генетики им. Н. И. Вавилова РАН; Санкт-Петербургский государственный университет.
Автор, ответственный за переписку.
Email: stepchenkova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5854-8701
заведующая лабораторией, лаборатория мутагенеза и генетической токсикологии
Анна Александровна Ширяева
ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный университет»
Email: annabiologic@gmail.com
Список литературы
- Borchsenius A. S., Tchourikova A. A., Inge-Vechtomov S. G. (2000) Recessive mutations in SUP35 and SUP45 genes coding for translation release factors affect chromosome stability in Saccharomyces cerevisiae. Curr. Genet. V. 37: P. 285-291.
- Inge-Vechtomov S. G., Repnevskaia M. V., Karpova T. S. (1986) Hybridization of cells of the same mating type in Saccharomyces yeasts. Genetika. V. 22: P. 2625-2626.
- Iourov I. Y., Vorsanova S. G., Liehr T., Yurov Y. B. (2009) Aneuploidy in the normal, Alzheimer’s desease and ataxia-telangesia brain: Differential expression and pathological meaning. Neurobiology of desease. V. 34: P. 212-220.
- Nieznasnski K., Podlubnaya Z. A., Nieznasnski H. (2006) Prion protein inhibits microtubule assembly by inducing tubulin oligomerization. Biochemical and Biophysical Res. Com. V. 349: P. 391-399.